Revista del Museo de Historia Natural y Cultural | UNIVERSIDAD PRIVADA ANTENOR ORREGO ISSN: 1815 - 8242 E 21(1) TRUJILLO enero - junio 2014 REPÚBLICA DEL PERÚ MH ARNALDOA es una publicación de la Universidad Privada Antenor Orrego de Trujillo, Perú, editada se- mestralmente por el Museo de Historia Natural. Es norma de la revista que los artículos que se publican sean juzgados previamente por árbitros que dictami- nen sobre sus merecimientos. ARNALDOA acepta manuscritos originales e inédi- tos en idioma español o inglés, que deben seguir los lincamientos establecidos en Instrucciones a los Autores, las que aparecen al final de cada volúmen. Se envía en canje con publicaciones similares en botánica, sistemática y evolución, ecología, diversi- dad biológica y cultural, o temas afines a la historia natural. La Revista ARNALDOA se reserva todos los dere- chos legales de reproducción de su contenido. ARNALDOA se encuentra indizada en LATINDEX (Sistema Regional de Información en Línea para Re- vistas Científicas de América Latina, el Caribe, Espa- ña y Portugal); SciELO (Scientific Electronic Library Online) y PERIODICA (Indice de Revistas Latinoame- ricanas en Ciencias), BHL (Biodiversity Heritage Li- brary). Las opiniones expresadas por los autores son de su exclusiva responsabilidad y no reflejan necesaria- mente los criterios del Comité Editorial de ARNAL- DOA El Museo de Historia Natural y Cultural, es la unidad que conserva, educa, investiga y difunde los conocimientos que generan sus colecciones científicas paraimpulsarla valoración y comprensión de la diversidad biológica y cultural de nuestro país, a favor del desarrollo de la comunidad. ISSN: 1815-8242 TRUJILLO REPÚBLICA DEL PERÚ UNIVERSIDAD PRIVADA ANTENOR ORREGO Dr. Víctor Raúl Lozano Ibáñez Rector Dr. Luis Cerna Bazán Vicerrector Académico Dr. Julio Chang Lam Vicerrector de Investigación Segundo Leiva González Director Mario Zapata Cruz Biólogo Guillermo Gayoso Bazán Arqueólogo Luis Chang Chávez Arquitecto Segundo Leiva González Director Mario Zapata Cruz Editor Michael 0. Dillon Editor Asociado Toda correspondencia relacionada a la Revista ARNALDOA deberá ser dirigida a: Revista ARNALDOA Museo de Historia Natural y Cultural Universidad Privada Antenor Orrego Casilla Postal 1075 Trujillo - PERÚ Telef: (+051) 044 - 604462 museoOupao.edu.pe Carátula: Fotografía de Arnaldoa weberbaueri (Asteraceae) Copyright: Segundo Leiva Hecho el Depósito Legal en la Biblioteca Nacional del Perú: N* 2014-15257 ISNN: 1815 - 8242 Registro de la Propiedad Intelectual Editado por: O 2014 Universidad Privada Antenor Orrego Av. América Sur N*3145 Urb. Monserrate, Trujillo - Perú Telef. (51) 44 - 604462 Impreso en: Impresiones Gráfica G 4 M S.A.C. Jr. San Martín N* 674 Trujillo, La Libertad Impreso en Perú - Printed in Peru Comité Editorial Michael 0. Dillon Department of Botany, The Field Museum, 1400 South Lake Shore Drive, Chicago, IL. 60605-2496, U.S.A., dillonfieldmuseum.org Jorge V. Crisci Museo de La Plata, 1900 La Plata, Provincia de Bue- nos Aires, ARGENTINA. jcriscionetverk.com.ar Gabriel Bernardello Instituto Multidisciplinario de Biología Vegetal, (CO- NICET-Universidad Nacional de Córdoba), Av. Vélez Sarsfield 299 Córdoba (5000), ARGENTINA. bernar- deimbiv.unc.edu.ar Francisco Squeo Departamento de Biología, Universidad de La Sere- na, casilla 599, La Serena, CHILE. fsqueouserena. cl Inge Schjellerup Nationalmuseet, Forsknings-8 Formidlingsafdelin- gen, Etnografisk Samling, Frederiksholms Kanal 12 DK 1220 Copenhagen K, DENMARK. inge.schje- llerupConatmus.dk Lars P Kvist Institute of Biological Sciences, University of Aar- hus. Building 340. Munkegade, DK-8000, Aarhus C., DENMARK, lars.kvistobiology.au.dk Thomas Mione Department of Biological Sciences, Central Con- necticut State University, 1615 Stanley Street, New Britain, CT 06050-4010, U.S.A. mionetwWccsu.edu Blanca León Plant Resources Center, University of Texas at Aus- tin, 1 University Station FO404, Austin, TX 78712- 0471, U.S.A. blanca.leonOmail.utexas.edu Alina Freire Fierro Missouri Botanical Garden, PO. Box 299, St. Louis, Missouri 63166, U.S.A. alina.freirecomobot.org Susana Arrázola Rivero Centro de Diversidad y Genética, Facultad de Cien- cias y Tecnología, Universidad Mayor de San Simón, casilla de correo 538, Cochabamba, BOLIVIA. sarra- zolaotcyt.umss.edu.bo Maximilian Weigend Institut fúr Biologie Systematische Botanik und Pflanzengeographie, Freie Universitát Berlin, 14195, Berlin-GERMANY. weigendzedat.fu-berlin.de Anton Hotreiter Ludwig-Maximilians-Universitát, Department Bio- logie 1, Bereich Biodiversitátsftorschung, Abtei- lung Systematische Botanik, Menzingerstrañe 67, D-80638 Múnchen, GERMANY. hofreitercofreenet.de Sandra Knapp Department of Botany, The Natural History Museum, Cromwell Road, London, SW7 5BD,UK. s.knappy Reynaldo Linares Palomino Department of Systematic Botany, Albrecht-von- Haller-Institute for Plant Sciences, University of Góttingen, Untere Karspúle 2, 37073-Góttingen, GERMANY. Eric Rodríguez Rodríguez Herbarium Truxillense (HUT), Universidad Nacional de Trujillo, Jr. San Martín 392, Trujillo, PERU, efrrí» unitru.edu.pe Pedro Lezama Asencio Departamento Académico de Ciencias, Universidad Privada Antenor Orrego, Trujillo, PERÚ. lezama_ao hotmail.com Pablo Chuna Mogollón Departamento Académico de Ciencias, Universidad Pri- vada Antenor Orrego, Trujillo, PERU. pchunamupao. edu.pe Jorge Vidal Fernández Departamento Académico de Ciencias, Universidad Pri- vada Antenor Orrego, Trujillo, PERÚ. jvidalf+upao.edu. José González Cabeza Departamento de Ciencias, Universidad Privada Antenor Orrego, Trujillo, PERU. gonzalezbioteciohotmail.com Víctor Quipuscoa Silvestre Herbario HUSA, Universidad Nacional de San Agustín, Av. Daniel A. Carrión s/n, La PampillaArequipa, PERU. vquipuscoasohotmail.com Hamilton Beltrán Santiago Museo de Historia Natural Javier Prado, Av. Arenales 1256, Jesús María, Lima, Apartado 14-0434, Lima 14, PERU. wilmersantiagooHhotmail.com Mario Benavente Palacios Museo de Historia Natural Javier Prado, Av. Arenales 1256, Jesús María, Lima, Apartado 14-0434, Lima 14, PERU. mjibenaventepyahoo.com Eloy López Medina Departamento de Fisiologia Vegetal, Universidad Nacio- nal de Trujillo, Jr. San Martín 392, Trujillo, PERU, elmt unitru.edu.pe Luis Chang Chávez Museo de historia Natural y Cultural, Universidad Privada Antenor Orrego, Trujillo, PERÚ. IchangcVupao.edu.pe Guillermo Gayozo Bazán Museo de historia Natural y Cultural, Universidad Privada Antenor Orrego, Trujillo, PERU. ggayosoba2upao.edu. pe Pág. Volumen 21 (1) enero - junio, 2014 CONTENIDO / CONTENTS Artículo Originales Browallia amicora y Browallia coalita (Solanaceae) dos nuevas especies del Departamento Cajamarca, Perú/Browallia amicora and Browallia coalita (Solanaceae), two new species from Cajamarca Department, Peru SEGUNDO LEIVA GONZÁLEZ Jaltomata angasmarcae y Jaltomata pauciseminata (Solanaceae) dos nuevas especies del Norte del Perú/Jaltomata angasmarcae and Jaltomata pauciseminata (Solanaceae) two new species of from Northern Peru SEGUNDO LEIVA GONZÁLEZ, THOMAS MIONE 8 LEON YACHER Géneros de Verbenáceas J. St.-Hil. en el Departamento La Libertad, Perú/Genus Verbenaceae J. St.- Hil. the Libertad Departament, Peru ROSALYNN YOHANNA RIVERA LÓPEZ Histología de Macrocystis pyrifera (Linnaeus) C. Agardh 1820 (Phaeophyceae: Laminariales) en la costa centro del Perú/Histology of ea pyrifera (Linnaeus) C. Agardh 1820 (Phaeophyceae: Laminariales) in the central coast of Per ERIKA ERAN P, MARIO BENAVENTE P 8. PATRICIA GIL KODAKA Metabolitos secundarios y efecto antibacteriano ¡n vitro del extracto hidroetanólico de las flores de Cantua buxifolia Juss. ex Lam. (Polemoniaceae) “Flor Sagrada de los Incas”/ Secondary metabolites and /n vitro antibacterial effect of hydroethanolic extract of the flowers of Cantua buxifolía Juss. ex Lam. (Polemoniaceae) “Sacred Flower of the Incas” MARILÚ ROXANA SOTO VÁSQUEZ, KARINA SOTO VÁSQUEZ 8, ALEJANDRA SERRANO BRINGAS Estudio fitoquímico de las hojas, flores y frutos de $o/anum multifidum Lam. y Lycianthes lycioides (L.) Hassl. (Solanaceae) procedentes del Cerro Campana, Región La Libertad-Perú/ Phytochemical study of the leaves, flowers and fruits of Solanum multifidum Lam. and Lycianthes lycioides (L.) Hassl. (Solanaceae) from the Cerro Campana, Región La Libertad-Per MARILÚ ROXANA SOTO VÁSQUEZ 105 119 127 165 179 187 221 241 Patrones Electroforéticos de proteínas solubles de semillas de Prosopis pallida y Prosopis juliflora “algarrobos” de la Costa del Departamento de La Libertad, Perú/Electrophoretic patterns of soluble proteins from dd of Prosopis pallida and Prosopis juliflora “*carob” of the Coast Department of the Liberty, Pe DORIS ME CADO PAREDES, CARLOS NOMBERTO RODRÍGUEZ, CARLOS LEÓN TORRES 8. CECILIA BETZABET BARDALES VÁSQUEZ Used Ethnobotany of medicinal plants by inhabitants of Al-Mafraq, Jordan/Uso Etnobotánico de las plantas medicinales por los habitantes de Al-Matraq, Jordania SALEH AL-QURAN Primer catálogo de los árboles y afines de la Reserva Comunal El Sira, Perú/First Catalogue of Tree species of the Communal Reserve Sira, Peru ABEL L. MONTEAGUDO MENDOZA, LUIS VALENZUELA GAMARRA, RODOLFO VÁSQUEZ MARTÍNEZ, ROCÍO DEL PILAR ROJAS GONZÁLES, OLIVER L. PHILLIPS 8 GABRIELA LOPEZ-GONZALEZ Composición florística, estructura y endemismo en una parcela permanente de bosque seco en Zapotillo, provincia de Loja, Ecuador/Floristic composition, structure and endemism in permanent plot of dry forest in Zapotillo, Loja province, Ecuador ZHOFRE AGUIRRE MENDOZA, DIEGO BURI SIVISACA, YNOCENTE BETANCOURT 8. GRETEL GEADA LÓPEZ Mones . Al A I hal la Quahrada (Párdaha EU UV CUWU0O (uv UUNDO y Argentina)/ Spatial and temporal variations of autotrophic organisms in the reservoir La Quebrada (Córdoba, Argentina) INÉS CLAUDIA DAGA 8. MARCELO JAVIER PIEROTTO Diversidad Florística de la Loma Cerro Campana, Provincia Trujillo, Departamento La Libertad-Perú/ Floristic Diversity of the Loma Cerro Campana, Province, Department La Libertad Trujillo-Peru SEGUNDO LEIVA GONZÁLEZ, MARIO ZAPATA CRUZ, GUILLERMO GAYOSO BAZÁN, LUIS CHANG CHÁVEZ, MICHAEL O. DILLON 8 VÍCTOR QUIPUSCOA SILVESTRE Vertebrados del Sistema lomal “Cerro Campana”, Trujillo-La Libertad, Perú/Vertebrates of the Cerro Campana lomal system, Trujillo-La Libertad, Peru WILLIAM ZELADA ESTRAVER; LUIS POLLÁCK VELÁSQUEZ; CÉSAR MEDINA TAFUR 8 HOMAN CASTILLO BENITEZ Evaluación del daño de ADN de linfocitos humanos expuestos a cipermetrina y extracto etanólico de semillas de Vitis vinifera L. (Vitaceae) “uva”/ Evaluation of DNA damage in human lymphocytes exposed to cypermethrin and ethanolic extract of A dE vinifera L. (Vitaceae) “grape” ENDOZA AVALOS, CARLOS LEÓN TORRES, CARLOS NOMBERTO oia 8, CECILIA BETZABET BARDALES VÁSQUEZ Arnaldoa 21 (1): 9 - 24, 2014 ISSN: 1815-8242 Browallia amicora y Browallia coalita (Solanaceae) dos nuevas especies del Departamento Cajamarca, Perú Browallia amicora and Browallía coalita (Solanaceae) two new species from Cajamarca Department, Peru Mad Segundo Leva González Museo de Historia Natural; Universidad Privada Antenor Orrego. hn Casilla Postal 10%5, Trujillo, Perú, segundo_leivarohotmail.com cleivatdupao.edu.pe 21 (1): Enero - Junio 2014 | 9 S. Leiva.: Browallía amicora y Browallía coalita (Sol ) dos ¡es del Perú Resumen Se describen e ilustran en detalle Browallia amicora S. Leiva y B. coalita S. Leiva (Solanaceae) dos nuevas especies del Departamento Cajamarca, Perú. Browallia amicora es propia de la travesía Guzmango-La Pampa, alrededor de los 2571 m de elevación y B. coalita habita entre el Puente San Benito-Travesía de Yetón, entre los 1352-1691 m de elevación, ambas en el Distrito Guzmango, Prov. Contumazá, Dpto. Cajamarca, Perú. Browallia amicora se caracteriza principalmente por la disposición de las flores solitarias, el indumento de sus órganos florales, estilo incluso, cápsula oblonga con 43-48 semillas con el epispermo reticulado-foveolado. Browallia coalita se caracteriza por ser una hierba de (3-) 5-10 (-50) cm de alto que presenta el tubo del cáliz largo, limbo de la corola con los dos lóbulos laterales y los dos lóbulos inferiores redondeados y ligeramente apiculados en el ápice, 130-140 semillas por cápsula. Se incluyen datos sobre su distribución geográfica y ecología, fenología, estado actual y sus relaciones con otras especies afines. Palabras clave: Browallia, especies nuevas, Solanaceae, Cajamarca, Perú Abstract Two new species, B. amicora S. Leiva and B. coalita S. Leiva (Solanaceae) from Cajamarca Departament, Peru are described and illustrated. Browallia amicora inhabits Guzmango-La Pampa track, around 2571 m elevation, while B. coalita inhabits between San Benito bridge and Yetón track, around 1352-1691 m elevation; both belonging to Guzmango District, Contumazá Province, Cajamarca Department, Peru. Browallia amicora is characterized by its solitary flowers, its floral indumentums, included style, oblong capsule with 43-48 seeds, which have reticulate-foveolate testa. Browallia coalita is characterized by being a herb of (3-) 5-10 (-50) cm high, and having a long calyx tube, corolla limb with its two lateral lobes and its two nether lobes rounded and slightly apiculate on the apex, and 130-140 seeds per capsule. Data regarding geographic distribution, ecology, phenology, conservation status, and its similarities with other species are included. Key words: Browallia, new species, Solanaceae, Cajamarca, Peru. Introducción consta de pocas especies que han sido estudiadas aisladamente por varios autores El género Browallia L. fue fundado por C. Linné en Sp. Pl. 2: 631. 1753; Gen. Pl. ed. 5: 278. 1754. con la especie tipo: B. americana, y entre los que destacan: Macbride (1962), al tratar la familia Solanaceae en su obra: “Flora of Peru”, así como, Dios (1977) en ilia S subfamilia pertenece a la f DA ] Ñ su trabajo: “Especies peruanas del género Cestroideae Burnett, tribu Browallieae . Pa A ' h o Browallia (Solanaceae)” donde se describen 7 Kustel, según Hunziker 2001; ratificado en . . . . . especies. Engler (1964) considera 8 taxones, las recientes filogenias moleculares de la i Ñ Ss 4% mientras que Soukup (1977) menciona: ”... familia propuesta por Olmstead et al. (2008) E o ; de pequeño género con 5-6 especies de América Central y del sur del Perú dos”. Hunziker (1979) reconoce para el mundo dos especies: y Sárkinen et al. (2013), ya que este género junto con Streptosolen Miers quedan dentro de un pequeño clado que conforma la tribu Browallieae, tal como Olmstead et al (2008) indica: ”...the molecular analysis confirms this view uniting Browallia and Streptosolen in a well-supported clade (100%)”. B. americana L. y B. speciosa Hook. Más tarde, Sagástegui 6 Dios (1980) incrementan una especie más: B. acutiloba Sagást. « O. Dios. Finalmente, D' Arcy (1991) sostiene que el género solamente consta de las tres Browallia es un género neotropical que últimas especies. Años después, Bracko éz 10 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 S. Leiva.: Browallía amicora y Bi / Zarucchi (1993) en su obra: “Catálogo de las Angiospermas y Gimnospermas del Perú”, nombran 4 especies para Perú, a saber: B. abbreviata Benth., B. acutiloba Sagást. € O. Dios, B. americana L. y B. speciosa Hook. Ese mismo año, Van Devender € Jenkins (1993) publican B. eludens Van Devender éz Jenkins, que habita en Santa Cruz, Arizona, al sureste de los Estados Unidos y noroeste de México. Dos años después, Leiva (1995) inicia sus estudios en el género, y publica una nueva especie: B. mirabilis S. Leiva, que habita en ruta al Bosque El Chaupe y Estrella del Oriente, Prov. San Ignacio, Dpto. Cajamarca, Perú, siendo nombrada en la pág. 194 de la obra titulada: Diez años de adiciones a la flora del Perú: 1993-2003, publicada por Ulloa et al. (2004). Hunziker (2001) en su obra: “Genera Solanacearum “...possibly it has six species...” y nombra 4, a saber: B. americana L., B. demissa L., B. grandiflora Graham «z B. speciosa Hook. Luego, Limo et al. (2007) dan en la pág. 88 indica: a conocer una nueva especie: B. dilloniana Limo, K. Lezama € S. Leiva, que habita en el Distrito Salpo, Prov. Otuzco, Dpto. La Libertad, Perú. Recientemente, Leiva et al. (2010) publican una nueva especie: B. sandrae S. Leiva, Farruggia € Tepe, que habita en el lugar denominado El Balconcito, ruta El Algarrobal-San Benito, Distrito San Benito, Prov. Contumazá, Dpto. Cajamarca, Perú. Finalmente, S. Leiva (2013) publica B. salpoana S. Leiva, propia del Cerro Ragash, arriba del pueblo de Salpo, Prov. Otuzco, Dpto. La Libertad, Perú. Por estos antecedentes, considero que el género necesita más observaciones de campo, estudios citogenéticos y moleculares, para poder delimitar las especies y preparar una monografía integral. El género se distribuye desde el Sur de Arizona (U.S.A.), México, América Central, así como Las Antillas y los Andes de Sudamérica hasta Bolivia (Hunziker, 2001). Las especies del Norte de Perú, habitan desde los 20 m hasta los 3750 m de elevación en las altas montañas, formando parte del estrato herbáceo asociadas con arbustos y árboles. Recientes excursiones al Norte del territorio peruano, especialmente al Dpto. Cajamarca, puso una vez más en evidencia poblaciones de dos especies de Browallia que llamaron mi atención por sus particularidades floríferas y fructíferas y que difieren de las especies ya conocidas. Dar a conocer estas nuevas entidades, es el principal aporte y objetivo de este trabajo. Material y métodos El material estudiado corresponde a las recolecciones efectuadas en estos últimos años por S. Leiva € M. Leiva (HAO), J. Jara (MOL) y S. Knapp (NHM) en las diferentes expediciones realizadas a la ruta desde el Puente San Benito hacia el pueblo de Guzmango, pasando por la Travesía de Yetón, Contumazá, Dpto. Cajamarca, Perú, a fin Distrito Guzmango, Prov. de obtener colecciones botánicas intensivas para la realización de la monografía del género Browallia. Las colecciones se encuentran depositadas principalmente en los Herbarios: BM, CCSU, CORD, F, HAO, HUT, MO, NHM, NY, USM. Se fijó material en líquido (alcohol etílico al 70% o AFA), para realizar estudios en detalle de los órganos vegetativos y reproductivos; asimismo, para la elaboración de las ilustraciones respectivas. Las descripciones están basadas en caracter O : 1 hiá que se t É presertitarll tambiér 1, fotografías, datos de su distribución geográfica y ecología, fenología, estado actual y su discusión con las especies afines. Los acrónimos de los herbarios son 21 (1): Enero - Junio 2014 | 11 S. Leiva.: Browallía amicora y Browallía coalita (Sol ) peci erú pi pl dl ES! i an ls a qe y Fig. 1. Browallia amicora S. Leiva. A. Antera isomórfica en vista lateral; B. Fruto; C. Flor en antésis; D. Semilla; E. Antera heteromórfica en vista dorsal; F. Rama florífera; G. Antera isomórfica en vista ventral; H. Antera heteromórfica en vista lateral; 1. Cápsula; J. Antera isomórfica en vista dorsal; K. Corola desplegada; L. Antera heteromórfica en vista lateral; M. Gineceo. (Dibujado de S. Leiva , S. Knapp 5697, HAO y NHM). 12 |ARNALDOA 21 (1): Enero - Junio, 2014 S. Leiva.: Browallía amicora y Browallía coalita (Solanaceae) dos nuevas especies del Perú Fig. 2. Browallia amicora S. Leiva. A. Rama florífera en su hábitat; B-D. Ramas florífera con flores en antésis; C. Flor en antésis; F. Cápsula. (Fotografías de S. Leiva € S. Knapp 5697, HAO y NHM). 21 (1): Enero - Junio 2014 | 13 S. Leiva.: Browallia amicora y Browallia citados según Thiers (2013). Resultados y discusión 1. Browallia amicora S. Leiva sp. nov. (Fig. 1-2) TIPO: PERÚ. Dpto. Cajamarca, Prov. Contumazá, Distrito Guzmango, Desvío Guzmango-La Pampa. 7% 23” 42,0"S, 780 54 07,7” W. 2571 m, 1-VI-2014. S. Leiva, S. Knapp € E. McAlister 5697 (Holótipo: HAO; Isótipos a ser enviados: CORD, F, HAO, MO, NHM, USM) Diagnosis. It differs from B. dilloniana Limo, K. Lezama éz S. Leiva in being smaller herbs (10-30 cm vs. 30-50 cm high in B. dilloniana), having a bigger corolla limb (23- 24 mm between the major lobe and the two nether lobes, and 20-21 mm between lateral lobes vs. 14-15 mm between the major lobe and the two nether lobes, and 8-9 mm between lateral lobes in anthesis), a style wrinkled only in the distal quarter (vs. style entirely wrinkled), and a capsule oblong with 43-48 seeds (vs. capsule obconic with 53-60 seeds in B. dilloniana). Hierba anual, 10-20 (-30) cm de alto, tallos únicos o laxamente ramificados. Tallos viejos rollizos, verdes, suculentos, compactos, sin lenticelas, ciliados rodeados por una densa cobertura de pelos eglandulares transparentes, sin agrietamientos longitudinales, 2,5-3 mm de diámetro en la base; tallos jóvenes rollizos, verdes, compactos, sin lenticelas, ciliados rodeados por una cobertura de pelos eglandulares y algunos pelos glandulares (transparente el pie y amarillo-intenso la cabeza glandular). Hojas alternas; peciolo semirrollizo, verde-cremoso, verde-oscuro los bordes en la superficie adaxial, ciliado rodeado por una cobertura de pelos eglandulares transparentes multicelulares, 1,5-1,6 mm de longitud; lámina anchamente 14 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 lanceolada, membranácea, verde-oscuro la superficie adaxial, verde-claro la superficie abaxial, glabrescente rodeado por algunos pelos eglandulares transparentes en ambas superficies, mayor densidad sobre las nervaduras principales y secundarias en la superficie abaxial, aguda en el ápice, ligeramente redondeada en la base, entera en los bordes, 3,5-3,8 cm de largo por 2,6-2,7 cm de ancho. Flores solitarias, a veces 2-3 ' E Deia pedúnculo rollizo o filiforme ampliándose ligeramente hacia el área distal, morado- claro, pubescente con una densa cobertura de pelos glandulares (transparente el pie, amarilla la cabeza glandular) y algunos pelos eglandulares transparentes, erectos, 3-5 (-15) mm de longitud. Cáliz tubular ampliándose gradualmente hacia el área verde verdoso istal, externamente, interiormente, pubescente con pelos glandulares (transparente el pie, amarilla la cabeza glandular) externamente, glabro interiormente, suculento , erecto, abruptamente sobresalientes las nervaduras principales y secundarias, limbo 4-5 mm de diámetro en la antésis; 5-lobulado, lóbulos triangulares, a veces ligeramente oblongos, verde externamente, verdoso interiormente, pubescentes con pelos glandulares ' on as ciliados con pelos glandulares en los bordes, erectos y ligeramente rotados, sobresalientes las nervaduras principales, 2,5-2,7 mm de largo por (1-) 1,2-1,3 mm de ancho; tubo 5-5,2 mm de largo por 3-4 mm de diámetro. Corola hipocrateriforme con una joroba en el Ys distal del tubo corolino al nivel longitudinal del lóbulo mayor, ligeramente urceolado en el Y basal, zigomorfa, morado-intenso los Y distales, cremoso el Y basal externamente, cremoso interiormente, ciliado con pelos eglandulares transparentes externamente, piloso con pelos simples transparentes los S. Leiva.: Browallia amicora y B Y distales, glabro el Ys basal interiormente, membranácea a veces ligeramente suculenta, sobresalientes las nervaduras principales, 23-24 mm (entre el lóbulo mayor y los lóbulos inferiores) y 20-21 mm (entre los lóbulos laterales) de diámetro del limbo en la antésis; 5-lobulado, lóbulos heteromórficos, rotados; un lóbulo mayor o superior rectangular o angostamente oblongo, ampliamente emarginado en el ápice, membranáceo, amoratado o morado externa e interiormente, sobresalientes las nervaduras principales externamente, ciliado con pelos eglandulares transparentes externamente, glabro interiormente, 9-10 mm de largo por 7,5-8 mm de ancho; dos lóbulos lat 8 8 oblongos, ampliamente emarginados o escotados en el ápice, membranáceos, amoratados con las nervaduras principales morado-intenso externa e interiormente, y y rhira donaelaa pelos y eglandulares transparentes externamente, glabro bordes, membranáceos, aplanados nunca interiormente, glabro en los reflexos, nunca revolutos, sobresalientes las nervaduras principales externamente, 9-10 mm de largo por 5-55 mm de ancho; dos lóbulos inferiores ligeramente oblongos, ampliamente emarginados o escotados en el ápice, amoratados o morados externa e interiormente, ciliados rodeados por una cobertura de pelos eglandulares transparentes externamente, glabros interiormente, glabros en los bordes, membranáceos, aplanados, nunca reflexos, nunca revolutos, sobresalientes las nervaduras principales, 6-6,2 mm de largo por 6-6,2 mm de ancho; tubo corolino 17-17,5 mm de largo por 12-13 mm de diámetro al nivel de la garganta. Estambres 4, didínamos, inclusos, conniventes dos a dos, insertos en los Y distales del interior del tubo corolino, dos estambres superiores con anteras heteromórficas, las fértiles sub- reniformes, amarillentas, blanquecinas las suturas y amarillo el conectivo, sin mucrón apical, glabras, 0,8-1 mm de largo por 0,4- 0,5 mm de diámetro; anteras estériles o abortadas sub-reniformes, blancas, blanco cremosas las suturas, amarillo el conectivo, sin mucrón apical, glabras, 0,2-0,3 mm de largo por 0,2-0,3 mm de diámetro; filamentos estaminales libres compresos, curvados, espatulados disminuyendo gradualmente hacia el área basal, cremosos, isomórficos, rodeados por una densa cobertura de pelos toda su longitud externamente, glabros eglandulares transparentes en interiormente, 2-2,3 mm de largo por 1-1,2 mm de ancho; área soldada semirrolliza o aplanada, cremosa, ciliado con pelos eglandulares transparentes en toda su longitud, 13-14 mm de longitud; dos fértiles, oblongas, amarillas, blanco-cremoso las suturas, amarillo-intenso el conectivo, sin mucrón apical, glabras, 0,8-1 mm de largo por 1-1,3 mm de diámetro; filamentos estaminales libres homodínamos, depresos, ligeramente torcidos, geniculados el área distal, verdo-amarillentos, rodeados por una densa cobertura de pelos eglandulares transparentes los Y distales externamente, glabro interiormente, 2-2,3 mm de largo por 0,2-0,3 mm de ancho; área soldada semirrolliza O aplanada, amarillenta- verdosa, ciliado rodeado por una cobertura de pelos eglandulares transparentes en toda su longitud, 10-13 mm de longitud. Ovario obovado, verde-claro, sin disco nectarífero, suculento, rodeado por una densa cobertura de pelos eglandulares transparentes rígidos o erectos la Y distal, néctar transparente, 2-2,3 mm de largo por 1,55-1,7 mm de diámetro; estilo incluso, filiforme los Y basales, arrugado y geniculado el Y distal, erecto, cremoso amarillento, glabro, 9,8-10 21 (1): Enero - Junio 2014 | 15 S. Leiva.: Browallia amicora y Browallia mm de longitud; estigma umbraculífero, tetralobulado, 4 cavidades (dos en la superficie adaxial y dos en la superficie abaxial), verde-oscuro el área media, amarillenta el área marginal o bordes la superficie adaxial, verdosa la superficie abaxial, glabro, 1,5-1,7 mm de largo por 1,8- 2 mm de diámetro. Cápsula erecta, oblonga, verde a la inmadurez, 4-valvada, rodeada por una cobertura de pelos eglandulares transparentes rígidos el Y. distal, 5-5,2 mm de largo por 2,8-3 mm de diámetro; cáliz fructífero persistente, acrescente que envuelve ajustadamente a la cápsula hasta el 90-95 % de su longitud basal, lóbulos 5,5-9,8 mm de largo por 4-4,5 mm de diámetro. erectos ligeramente estrellados, Semillas 43-48 por cápsula, poliédricas, a veces oblongas, frágiles, cremosas a la inmadurez, glabras, epispermo reticulado- foveolado, 0,8-0,9 mm de largo por 0,6-0,7 mm de diámetro. Material adicional examinado PERÚ, Prov. Contumazá, Dpto. Distrito Guzmango, Cajamarca, cruce Guzmango-La Pampa, (cerca de 500 m), 7" 23 12”5S, y 78%54' 16”W. 2353 m, 1-VI-2014, S. Knapp, E. Gamboa, D. Hall, S. Leiva és E. McAlister 10710 (BM, USM); 7* 23' 12”S, y 7854" 16”"W. 2353 m, 1-VI-2014, S. Knapp, E. Gamboa, D. Hall, S. Leiva €é+ E. McAlister 10713 (BM, USM); 7% 23” 42,0"S, y 78* 54! 07,7”W. 2571 m, 19-IV-2014. S. Leiva é M. Leiva 5635 (CORD, F. HAO, MO, NHM, NY, USM); 7* 23 42,0"5S, y 7854 07,7"W. 2571 m, 1-VI-2014. S. Leiva, S. Knapp € E. McAlister 5697 (BM, CORD, F. HAO, MO, NHM, NY, USM); R Mi; S Teiva estárelaci 4 con su especie hermana B. dilloniana Limo, K. Lezama éz S. Leiva (ver Limo et al., 2007) propia de arriba del lugar denominado San Andrés de Cárcel (ruta Salpo-Casmiche) 16 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 y arriba de Murañe (ruta Salpo-Pagash; Distrito Salpo, Prov. Otuzco, Dpto. La Libertad, Perú), porque ambas tienen las flores solitarias, pedúnculo morado o morado-claro rodeado por una cobertura de pelos glandulares (transparente el pie, amarilla la cabeza glandular), cáliz tubular pubescente rodeado por una cobertura de pelos glandulares externamente, corola hipocrateriforme con la joroba morado- intenso, ciliada con pelos eglandulares transparentes los Y distales externamente, piloso con pelos eglandulares transparentes en toda su longitud interiormente, lóbulos de la corola ampliamente emarginados o escotados en el ápice, morado o amoratado externa e interiormente, semillas con la testa reticulado-foveolado, hierbas con tallos únicos O a veces laxamente ramificados. Pero, se diferencian porque B. amicora tiene el limbo de la corola 23-24 mm (entre el lóbulo mayor y los lóbulos inferiores) por 20-21 mm (entre los lóbulos laterales) de diámetro en la antésis, estilo con el Y4 distal arrugado, filiforme los Y basales, cápsula oblonga con 43-48 semillas, hierbas 10-20 (-30) cm de alto. En cambio, B. dilloniana tiene 14-15 mm (entre el lóbulo mayor y los lóbulos inferiores) y 8-9 mm (entre los lóbulos laterales) de diámetro en la antésis, estilo arrugado en toda su longitud, cápsula obcónica con 53-60 semillas, hierbas (30-) 40-50 cm de alto. Distribución y ecología: Especie con distribución restringida y aparentemente endémica en la zona de recolección en donde es relativamente abundante. A pesar de haberse efectuado recolecciones en áreas aledañas solamente se ha encontrado en los alrededores del pueblo de Guzmango y, especialmente en la travesía de Guzmango- La Pampa, Distrito Guzmango, Prov. Dpto. alrededor de los 2571 m de elevación y Contumazá, Cajamarca, Perú, S. Leiva.: Browallía amicora y Bi / a 7%23'42,0"S, y 78%54'07,7”W como un integrante de la vegetación herbácea y arbustiva en los bordes de las carreteras, caminos, chacras y acequias; prefiere suelos arcillosos con tierras negras y con abundante humus, asociada con: lochroma stenanthum S, Leiva, Quip. £ N. W. Saywer, lochroma cornifolium (Kunth) Miers “campanilla”, lochroma rubicalyx S. Leiva €: Jara “lusaque”, Lycianthes jelskii (Zahlbr.) Bitter, Jaltomata cajamarca Mione “canamuela” (Solanaceae), Eucalyptus amigdalina Labill. “eucalipto” (Myrtaceae), Zea mays L. “maíz” (Poaceae), Viguiera weberbaueri S. F. Blake “zuncho”, “cadillo” Calceolaria utricularioides Benth. “globitos” Bidens pilosa L. (Asteraceae), o “zapatitos” (Calceolariaceae), entre otras. Fenología: Es una especie herbácea, que brota después de las lluvias de invierno, para luego florecer y fructificar desde el mes de abril hasta junio. Estado actual: Utilizando los criterios del IUCN (IUCN 2012), B. amicora es considerada en peligro crítico (CR). La extensión de su rango de distribución es de un radio menor a 100 km? alrededor del pueblo de Guzmango, siendo ésta la única localidad donde se ha recolectado (Criterio B1). Asimismo, se han encontrado menos de 100 individuos maduros en la población (Criterio D), siendo influenciada directamente por el centro urbano de Guzmango. Sin embargo, no se ha evaluado si existe una declinación del rango de distribución y del área de ocupación, siendo de necesidad un estudio en profundidad de la ecología, estructura poblacional y distribución de esta especie para esclarecer su estado de conservación. Etimología: El epíteto específico hace alusión a la amistad, cooperación y armonía entre los botánicos, especialmente los que estudian la familia Solanaceae. 2. Browallia coalita S. Leiva sp. nov. (Fig. 3-4) PERÚ. Contumazá, TIPO: Prov. Dpto. Distrito Guzmango, Cajamarca, ruta pasando el Puente San Benito hacia Guzmango, 7” 25 25,2”S, 78% 55” 29,0"W. 1352 m, 31-V-2014. S. Leiva, S. Knapp € E. McAlister 5691 (Holótipo: HAO,; Isótipos, a ser enviados: CORD, F., HAO, MO, NHM, USM). Diagnosis. Browallia coalita differs from B. salpoana S. Leiva in its slightly pubescent stems (vs. sericeous stems in B. salpoana), its membranaceous leaves ovate or slightly triangular and pubescent abaxially (vs. fleshy leaves obovate, spatulate or rhomboid and, glabrous abaxially), its flowering calyx color and pubescence (green with dark green veins and glabrescent vs. lilac basally with green distally and strigose), its corolla green and lilac distally, and cream basally externally (vs. corolla deep purple with a few yellowish green ribs externally), its corolla limb with the two lateral and nether lobes slightly apiculate on the apex (vs. corolla limb with these lobes emarginated on the apex), and in its more numerous seeds per capsule (130-140 vs. 48-60). Hierba anual, 5-10 (-50) cm de alto, tallos únicos o laxamente ramificados, a veces ampliamente ramificada. Tallos viejos rollizos, morados o lila intenso la superficie adaxial, verde la superficie abaxial, compactos, sin lenticelas, ciliados rodeados por una densa cobertura de pelos eglandulares transparentes, sin agrietamientos longitudinales, 4-5 mm de diámetro en la base; tallos jóvenes rollizos, verdes, lila intenso los nudos, compactos, sin lenticelas, ciliados con pelos eglandulares transparentes, inclinados. Hojas alternas; semirrollizo o peciolo abruptamente aplanado la superficie adaxial, verde claro, 21 (1): Enero - Junio 2014 | 17 S. Leiva.: Browallia amicora y Browallía coalita (Sol ) dos ies del Perú Pl , A CEM ET EN - a Ed a pm A P= a " A E al a Li Fig. 3. Browallia coalita S. Leiva. A. Antera isomórfica en vista dorsal; B. Semilla; C. Fruto; D. Antera isomórfica en vista lateral; E. Flor en antésis; F. Antera heteromórfica en vista lateral; G. Antera isomórfica en vista ventral; H. Rama florífera; 1. Antera heteromórfica en vista lateral; J. Antera heteromórfica en vista dorsal; K, Gineceo; L. Corola desplegada; M. Cápsula. (Dibujado de S. Leiva, S. Knapp 5691, HAO y NHM). 18 |ARNALDOA 21 (1): Enero - Junio, 2014 S. Leiva.: Browallía amicora y Browallía coalita (Solanaceae) dos nuevas especies del Perú Fig. 4. Browallia coalita S. Leiva. A. Plantas en su hábitat; B-C-D. Ramas con flores en antésis; E. Flor en antésis; E. Cápsula y hoja. (Fotografías de S. Leiva éz S. Knapp 5691, HAO y NHM). 21 (1): Enero - Junio 2014 | 19 S. Leiva.: Browallia amicora y Browallia verde oscuro los bordes en la superficie adaxial, ciliado rodeado por una cobertura de multicelulares, 1,7-18 mm de longitud; pelos eglandulares transparentes lámina ovada a veces ligeramente triangular, membranácea, verde-oscuro la superficie adaxial, verde-claro la superficie abaxial, ciliada con pelos eglandulares transparentes en ambas superficies, mayor densidad sobre las nervaduras principales y secundarias en la superficie abaxial, acuminada en el ápice, cortamente cuneada y a veces ligeramente truncada en la base, entera en los bordes, 6,1-6,6 cm de largo por 4,7-5,2 cm de ancho. Flores solitarias por nudo; pedúnculo rollizo o filiforme ampliándose ligeramente hacia el área distal, verde, ciliado rodeado de inclinados, por una densa cobertura pelos eglandulares transparentes erectos, suculentos, 3-6 mm de longitud. Cáliz tubular ampliándose gradualmente hacia el área distal, verde, verde-oscuro las nervaduras primarias y secundarias externamente, verdoso interiormente, glabrescente con pelos eglandulares transparentes inclinados externamente, glabro interiormente, suculento o papiráceo, erecto, abruptamente sobresalientes las nervaduras principales y secundarias, 2,2-2,3 mm de diámetro del limbo en la antésis; 5-lobulado, lóbulos triangulares, verde externamente, verdoso interiormente, ciliado rodeados por una cobertura de pelos eglandulares transparentes externamente, glabros interiormente, ciliados con pelos eglandulares transparentes en los bordes, suculentos O papiráceos, ligeramente rotados, nunca reflexos, nunca revolutos, sobresalientes las nervaduras principales, 2,8-3,1 mm de largo por 1,5-1,6 mm de ancho; tubo calicino 7-7,5 mm de largo por 24-25 hipocrateriforme con una joroba en el Ys mm de diámetro. Corola distal del tubo corolino al nivel longitudinal 21 (1): Enero - Junio, 2014 del lóbulo mayor, ligeramente urceolado en el Y% basal, zigomorfa, verdoso y lilacino el Y distal, cremoso los Y basales externamente, cremoso en toda su longitud, blanco en la base y amarillo en el área distal de la garganta interiormente, ciliado con pelos eglandulares transparentes los % distales, glabro el Y. basal externamente, ciliado rodeado por pelos eglandulares transparentes cortos en toda su longitud interiormente, membranácea a veces ligeramente suculenta, sobresalientes las nervaduras principales, 8-8,2 mm (entre el lóbulo mayor y los lóbulos inferiores) y 9-10 mm (entre los lóbulos laterales) de diámetro del limbo en la antésis; 5-lobulado, lóbulos heteromórficos, rotados; un lóbulo mayor o superior ligeramente oblongo, ligeramente emarginado en el ápice, morado intenso o azulado los Y distales, blanco y amarillo respectivamente el Y basal externa e interiormente, blanco y amarillo-intenso el área basal interiormente, sobresalientes las nervaduras principales externamente, ciliado con pelos simples transparentes las nervaduras sobre principales externamente, glabro interiormente, membranáceo, 3,5-4 mm de largo por 4,7- 48 mm de ancho; dos lóbulos laterales ligeramente oblongos, redondeados con un ligero apículo en el ápice, membranosos, morado intenso o azulados externa e interiormente, sobresalientes las nervaduras externamente, principales glabrescentes con pelos eglandulares transparentes externamente, glabros interiormente, glabros en los bordes, membranosos, 2,7-2,8 mm de largo por 3-3,2 mm de ancho; dos lóbulos inferiores ligeramente oblongos, redondeados con un ligero apículo en el ápice, externa e morado-intenso O azulado interiormente, glabrescente con pelos eglandulares transparentes las nervaduras principales externamente, S. Leiva.: Browallía amicora y Bi / glabro interiormente, membranáceos, sobresalientes las nervaduras principales externamente, 2-2,2 mm de largo por 3-3,2 mm de ancho; tubo corolino 11-11,2 mm de largo por 3-3,5 mm de diámetro al nivel de la garganta. Estambres 4, didínamos, inclusos, conniventes dos a dos, insertos en los Y% distales del interior del tubo corolino; dos estambres superiores con anteras heteromórficas, las fértiles sub-reniformes, amarillentas, blanquecinas las suturas y amarillo el conectivo, sin mucrón apical, glabras, 0,7-0,8 mm de largo por 0,4-0,5 mm de diámetro; anteras estériles o abortadas sub-reniformes, blancas, blanco-cremoso las suturas, amarillo el conectivo, sin mucrón apical, glabras, 0,2-0,3 mm de largo por 0,2- 0,3 mm de diámetro; filamentos estaminales libres compresos, curvados, espatulados disminuyendo gradualmente hacia el área basal, cremosos, isomórficos, rodeados por una densa cobertura de pelos eglandulares transparentes en toda su longitud externamente, glabros interiormente, 1,3-1,5 mm de largo por 0,5-0,6 mm de ancho; área soldada semirrolliza o aplanada, cremosa, ciliado rodeado por una cobertura de pelos simples transparentes en toda su longitud, 13-14 mm de longitud; dos estambres inferiores con anteras isomórficas, fértiles, oblongas, amarillas, blanco-cremosas las suturas, amarillo intenso el conectivo, sin mucrón apical, glabras, 0,9-1 mm de largo por 1,1-1,2 mm de diámetro; filamentos estaminales libres homodínamos, depresos, ligeramente torcidos, geniculados el área distal, verdo-amarillentos, rodeados por una densa cobertura de pelos eglandulares transparentes los Y distales externamente, glabros interiormente, 1,5-1,7 mm de largo por 0,2-0,3 mm de ancho; área soldada semirrolliza O aplanada, cremosa, ciliada con pelos eglandulares transparentes en toda su longitud, 7,5-8 mm de longitud. Ovario oblongo, verde-intenso, sin disco nectarífero, suculento, rodeado por una densa cobertura de pelos eglandulares transparentes rígidos O erectos la Y distal, néctar transparente, 2-2,2 mm de largo por 1-1,2 mm de diámetro; estilo incluso, filiforme los Y basales, arrugado y geniculado el Y distal, erecto, cremoso, glabro, 8,8-9 mm de longitud; estigma umbraculífero, tetralobulado, 4 cavidades (dos en la superficie adaxial y dos en la superficie abaxial), verde-oscuro el área media, amarillento el área marginal o bordes la superficie adaxial, verdoso la superficie abaxial, glabra, 1-1,2 mm de largo por 1,9-1 mm de diámetro. Cápsula erecta, oblonga, verde a la inmadurez, 2-valvada, con pelos eglandulares transparentes rígidos el Y distal, 7-74 mm de largo por 3-3,2 mm de diámetro; cáliz fructífero persistente, acrescente que envuelve ajustadamente a la cápsula hasta el 90-95 % de su longitud basal, lóbulos erectos ligeramente estrellados, 10-10,2 mm de largo por 3,2- 3,3 mm de diámetro. Semillas 130-140 por cápsula, poliédricas, a veces oblongas, algunas reniformes, frágiles, marrón- oscuras, glabras, epispermo reticulado- foveolado, 0,8-0,9 mm de largo por 0,6-0,8 mm de diámetro. Material adicional examinado PERÚ, Dpto. Prov. Contumazá. Distrito Guzmango, quebrada Cajamarca, entre San Benito-Contumazá (ca. 70 km de la panamericana), 7% 25' 25”S, y 78% 59 29W. 1671 m, 7-V-2013, S. Knapp, T. Sárkinen, H. M. Baden € P. Gonzáles 10559 (BM, USM); pasando el Puente San Benito hacia la Travesía de Yetón, 7” 25” 21,0"S, y 78 54 53,5”W. 1423 m, 19-IV-2014. S. Leiva és M. Leiva 5643 (CORD, F. HAO, MO, NHM, NY, USM); 5644 (CORD, F, HAO, MO, NHM); arriba de San Benito (ruta Yetón- 21 (1): Enero - Junio 2014 | 21 S. Leiva.: Browallia amicora y Browallia Guzmango), 7725' 28”S, y 7854' 16”"W.1671 m, 1-VI-2014, S. Knapp, E. Gamboa, D. Hall, S. Leiva és E. McAlister 10704 (BM, USM); Browallia coalita S. Leiva está relacionada con su especie hermana B. salpoana S. Leiva (ver Leiva 2013) propia del Cerro Ragash (Arriba de Salpo; Distrito Salpo, Prov. Otuzco, Dpto. La Libertad, Perú) porque ambas tienen las flores solitarias, cáliz tubular con las nervaduras principales y secundarias abruptamente sobresalientes, corola hipocrateriforme ciliada rodeada por una cobertura de pelos eglandulares transparentes los Y distales, glabro el Y basal externamente, lóbulos de la corola ciliados rodeados por una cobertura de pelos eglandulares transparentes externamente, glabros interiormente, lóbulo mayor o superior emarginado en el ápice, ovario oblongo, verde-intenso, tallos viejos rodeados por una cobertura de pelos eglandulares transparentes especialmente la superficie adaxial, peciolo semirrollizo o aplanado, ciliado rodeado por una cobertura de pelos simples transparentes, estigma umbraculífero verde-intenso. Pero, se diferencian porque B. coalita tiene el cáliz verde, verde-oscuro las nervaduras principales y secundarias externamente, 151 Lares 1 1 O o O transparentes inclinados externamente, corola verde y lilacina el 1/4 distal, cremosos los Y4 basales externamente, limbo de la corola tiene los dos lóbulos laterales y los dos lóbulos inferiores redondeados y ligeramente apiculados en el ápice, semillas 130-140 por cápsula con la testa reticulado- foveolado, tallos jóvenes ciliados con pelos eglandulares transparentes inclinados, hojas alternas, lámina de la hoja ovada a veces ligeramente triangular, membranácea, ciliada rodeada por una densa cobertura de la superficie abaxial. pelos eglandulares transparentes En cambio, B. 21 (1): Enero - Junio, 2014 salpoana tiene el cáliz lila en el área basal disminuyendo hacia el área distal, verde intenso el área distal disminuyendo hacia el área basal externamente, rodeado por una densa cobertura de pelos glandulares (morado-intenso el pie, amarillo-intenso la cabeza glandular) rígidos largos externamente, corola vinoso-intenso con algunas franjas longitudinales verdo- amarillentas externamente, limbo de la corola con los dos lóbulos laterales y los dos lóbulos inferiores emarginados en el ápice, semillas 48-60 por cápsula, semillas lisas a veces levemente reticuladas, tallos jóvenes pilosos rodeados por una densa cobertura de pelos eglandulares y glandulares (morado- intenso el pie, amarillo-intenso la cabeza glandular) erectos la superficie adaxial, hojas alternas las distales, arrosetadas o brevicaules las basales, lámina de la hoja obovada a veces espatulada o romboidea, rara vez lanceolada, suculenta, glabra la superficie abaxial. Distribución y ecología: Especie con distribución restringida y aparentemente ] 1 endémica en la zona nadande es abundante. A pesar de haberse efectuado recolecciones en áreas aledañas solamente se ha encontrado en la ruta desde el Puente San Benito hasta la travesía de Yetón (Distrito Guzmango, Prov. Contumazá, Dpto. Cajamarca, Perú), entre los 1352-1691 m de elevación y a 7” 25” 25,2”-7%25'27,4”S y 78% 35'29,0”-78% 54'15,6”"W, como un integrante de la vegetación herbácea y arbustiva en los bordes de las carreteras, caminos, chacras y acequias; prefiere suelos arcillosos con tierras negras y con abundante humus, asociada con: Acnistus arborescens (L.) Schltdl. “chimulala”, Solanum arcanum Peralta, Solanum habrochaites S. Knapp € D. M. Spooner “tomate de zorro”, Nicotiana glutinosa L. “tabaco silvestre” (Solanaceae), Senecio arnaldi Cabrera, Baccharis salicina Torr S. Leiva.: Browallía amicora y Bi / $ A. Gray “chilco”, Verbesina saubinetioides S. F. Blake, Caxamarca sanchezii M. O. Dillon $ Sagást. (Asteraceae), Acacia macracantha Willd. “espino”, Caesalpinia spinosa (Molina) Kuntze “taya” o “tara” (Fabaceae), Asclepia curassavica L. “flor de seda” (Apocynaceae), entre otras. Fenología: Es una especie herbácea, que brota después de las lluvias de invierno, para luego florecer y fructificar desde el mes de abril hasta junio. Estado actual: Utilizando los criterios del IUCN (IUCN 2012), B. coalita es considerada en peligro crítico (CR). La extensión de su rango de distribución es de un radio menor a 100 km” desde el Puente de San Benito hasta la travesía de Yetón, siendo ésta la única localidad donde se ha recolectado (Criterio B1). Asimismo, se han encontrado menos de 100 individuos maduros en la población (Criterio D), siendo influenciada directamente por el centro urbano de Guzmango y San Benito. Sin embargo, no se ha evaluado si existe una declinación del rango de distribución y del área de ocupación, siendo de necesidad un estudio en profundidad de la ecología, estructura poblacional y distribución de esta especie para esclarecer su estado de conservación. Etimología: El epíteto específico hace alusión al compañerismo que debemos promover practicar entre todos. Agradecimientos Mi reconocimiento a las autoridades de la Universidad Privada Antenor Orrego de Trujillo, Perú, por su constante apoyo y facilidades para la realización de las expediciones botánicas. También, expreso mi agradecimiento a la Biól. Rocío Deanna y a la Dra. Gloria E. Barboza del Museo Botánico de la Universidad Nacional de Córdoba, Argentina, por su apoyo en la redacción del abstract, diagnosis de la descripción y revisión del manuscrito. Asimismo, mi gratitud a la Dra. Sandra Knapp del Natural History Museum de Londres, Inglaterra, por haber financiado y haberme permitido participar en una de las expediciones al área de estudio, el cual me permitió la culminación de este trabajo. Literatura citada Brako, L. € J. Zarucchi. 1993. Catálago de las Angios- permas y Gimnospermas del Perú. Monobr.Syst. Bot. Missouri Bot. Garden.Vol 45. D'Arcy, W. 1991.The Solanaceae since 1976. With a review of its biography /n J. G. Hawkes, R. N. Lester, M. Nee and Estrada (Eds), Solanaceae !Il. Taxonomy Chemistry, Evolution 75-137. Royal Bo- tanical Gardens Kew Richmond, Surrey. Uk for The Linnean Society of London. Dios, 0. 1977. Especies peruanas del Género Browallia L. (Solanaceae). Bol. Soc. La Libertad. IX (1-2); 5-24. Hengler, A. 1964.Sylabus der Planzen familien XII, Ed. (I). Gebruder Boemtraeger, Berlin-Niklas-see.666 Hunziker, A. 1979. South American Solanaceae: a Sy- noptic Survey. /nJ. G. Hawkes, N. R. Lester € A. D. Shelding (edis.). 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Arnaldoa 14 (1): 15-21 Macbride, J. 1962. Solanaceae. Field Mus. Nat. Hist. Bot. Ser. 13 part. V-B, No 1. Olmstead, R.; L. Bohs; H. Migid; E. Santiago-Valentin; V. García €. S. Coller. 2008. A molecular phylogeny of the Solanaceae. Novon 57 (4): 1159-1181. Sagástegui, A. € 0. Dios. 1980. Una nueva especie del género Browallia (Solanaceae). Hickenia | (39): 215-218. Sárkinen, T.; L. Bohs; R. G. Olmstead € S. Knapp. 2013. A phylogenetic framework study of the nightshades (Solanaceae): a dated 1000-tip tree. BMC Evolutionary Biology 13: 214. http://dx.doi. org/10.1186/1471-2148-13-214 Soukup, J. 1977. Las Monoporáceas, Caliceraceas, Calitricáceas, Balsamináceas, Columeliáceas, No- lanáceas y Solanáceas del Perú, su género y lista de especies. Biota. XI (87): 53-96. Ulloa, C.; J. Zarucchi €: B. León. 2004. Diez años de adiciones a la flora del Perú: 1993-2003. Arnaldoa. Edición Especial, pp 242. Van Devenderé P Jenkins. 1993. 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Connecticut 06050-4010, U.S.A. mionetwWccsu.edu Leon Yacher Department of Geography, Southern Connecticut State University, New Haven, Connecticut 06515-1355, U.S.A. yachertosouthernct.edu ARNALDOA 21 (1): Enero - Junio 2014 | 25 + 7 Pa TN | Leiva. ef al. Jaltomata angasmarcae y Jalt Resumen Se describen e ilustran en detalle Jaltomata angasmarcae S. Leiva £ Mione y Jaltomata pauciseminata S. Leiva €£ Mione (Solanaceae) dos nuevas especies del Norte del Perú. Jaltomata angasmarcae es propia de los alrededores de la ciudad de Angasmarca en la ruta hacia Tulpo, Distrito Angasmarca, Prov. Santiago de Chuco, Dpto. La Libertad, Perú, a los 08* 08” 044” S y 78* 03” 012” W, alrededor de los 2880 m de elevación, presenta (3-) 4 (-5) flores por nudo, corola tubular-rotada, blanco-cremosa con una anillo púrpura en la hemialtura y 10 manchas verdes en el área basal interiormente, pubescente rodeada por una cobertura de pelos eglandulares transparentes externamente, área libre de los filamentos estaminales rodeados por pelos eglandulares transparentes que ocupan el 50-60 % del área basal, 39-45 semillas por baya, arbustos (0,40-) 0,60-0,80 m de alto y Jaltomata pauciseminata S. Leiva £ Mione habita en los alrededores de las aguas termales arriba de la Ciudad de Cachicadán, alrededor de los 3050 m de elevación y en la ruta Algallama-Angasmarca, Distrito Cachicadán, Prov. Santiago de Chuco, Dpto. La Libertad, Perú, a los 08% 07' 57,0” S y 78% 04 50,7” W alrededor de los 3232 m de elevación tiene el cáliz campanulado a veces ligeramente aplanado, verde, rodeado por una densa cobertura de pelos ramificados transparentes externamente, corola crateriforme o campanulada-crateriforme, cremosa con un anillo púrpura-intenso o lila-intenso con 10 manchas verdes en el área basal interiormente, ciliada rodeada por una cobertura de pelos ramificados transparentes externamente, 5-7 mm de diámetro en la antésis, 10-lobulado, estambres nunca conniventes, inclusos, homodínamos, anteras sin mucrón apical incipiente, 4-6 semillas por baya, arbustos 0,70-1,20 m de alto. Adicionalmente a las descripciones se presentan las ilustraciones correspondientes, se discuten sus relaciones con otras especies afines e incluyen datos sobre etnobotánica, distribución geográfica y ecología, fenología, estado actual y usos de cada especie. Palabras clave: Jaltomata, especies nuevas, Solanaceae, Perú. Abstract Tm . f +1 1D) TrT4 S Teiva + Mioneand In!f 1wWO new Species OL t S. Leiva £ Mione (Solanaceae), are described and illustrated in detail. Jaltomata angasmarcae grows near the city of Angasmarca (en route to Tulpo), Dept. La Libertad, Prov. Santiago de Chuco, District Angasmarca, at 08” 08” 044” S and 78” 03' 012” W, near 2880 m of elevation; it is a shrub (40 -) 60-80 cm high, having (3-) 4 (-5) flowers per inflorescence; the corolla is short-tubular with a rotate limb, (15-) 17-20 mm in diameter, white-cream with a purple ring where the tube meets the limb, and 10 green maculae proximal to the purple ring, externally with a pubescence of simple transparent hairs; the staminal filaments are surrounded by simple transparent hairs along the proximal 50-60 % of their length; there are 39-45 seeds per orange berry. Jaltomata pauciseminata S. Leiva £ Mione grows in the area surrounding the thermal waters above the town of Cachicadan, around 3050 m of elevation, near the path Algallama-Angasmarca, Dept. La Libertad, Prov. Santiago de Chuco, District Cachicadán, at 08% 07' 57.0” S and 78” 04' 50.7 “ W, near 3232 m of elevation, it is a shrub 70 -120 cm high, having (6-) 8-10 flowers per inflorescence; the corolla is crateriform or campanulate- crateriform, 5-7 mm in diameter, 10-lobed, cream-colored with an intense purple/lilac ring and 10 green maculae proximal to the purple ring, externally with a pubescence of transparent branched hairs; the staminal filaments are pubescent along the proximal 10-20% of their length; there are 4 -6 seeds per berry. In addition to the descriptions and illustrations, we discuss relationships with other species and include data on ethnobotany, geographical distribution, ecology, phenology, and current status. Key words: Jaltomata, new species, Solanaceae, Peru. 26 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 Leiva. ef al: Jaltomata angasmarcae y Jaltomata Introducción El género Jaltomata fue descrito por Schlechtendal en 1838, posteriormente algunas especies fueron tratadas como Hebecladus creado por Miers en 1845. Hunziker (1979) y Nee (1986), reconocen que ambos géneros deben ser tratados como uno solo, es decir como Jaltomata, trabajos contemporáneos de Davis (1980) y D'Arcy (1986; 1991), sostienen que ambos géneros deben mantenerse independientes; adoptando ese criterio, Mione (1992) unificó Hebecladus y Jaltomata con el epíteto genérico de Jaltomata, siendo ratificado por Mione, Olmstead, Jansen £z Anderson en 1994. Jaltomata (incluyendo Hebecladus) de la lia Sn] GQ ] 51 A A | TribuSolaneae, (Hunziker, 2001), y ratificado recientemente en la filogenia molecular de la familia propuesta por Olmstead et al. (2008), quienes sostienen, que Jaltomata comparte la filogenia en un clado solamente con el género Solanum. Está representado por unas 67 especies herbáceas o subarbustos plenamente determinadas y publicadas, casi todas con bayas comestibles (Leiva, Mione € Quipuscoa, 1998; Leiva, et al., 2007; 2008; 2010 a y b, 2013; Mione, et al., 1997; 2000; 2004; 2007; 2011; 2013). Se distribuyen desde el suroeste de los Estados Unidos hasta Bolivia y el Norte de Argentina y en las Antillas (Cuba, Jamaica, Haití, República Dominicana, Puerto Rico), con una especie en las islas Galápagos (Mione, Anderson £ Nee, 1993; Mione, Olmstead, Jansen éz Anderson, 1994; Mione € Coe, 1996; Mione € Leiva, 1997; Mione, Leiva € Yacher 2000; 2004; 2007; 2011; 2013). Considerándose, que el género tiene dos centros de diversidad: México con unas 10 especies y oeste de Sudamérica con unos 57 taxones. En el Perú, crecen aproximadamente 48 especies, desde la costa desértica hasta los 4000 m de elevación, y, es la zona norte la que presenta mayor diversidad con cerca de 37 especies, y todas con frutos comestibles. Jaltomata se caracteriza por: 1) pedicelos basalmente articulados, 2) filamentos estaminales insertos en la superficie ventral de las anteras, 3) ovario con disco nectarífero basal. 4) corola con 5 ó 10 lóbulos de prefloración valvar y 5) fruto con cáliz acrescente y mesocarpo jugoso, entre otros caracteres; asimismo, las bayas maduras son consumidas como frutas por los pobladores rurales, las cuales son agradables y exquisitas. Además, de los recientes trabajos taxonómicos acerca de este género en el Perú (Knapp, Mione é Sagástegui; 1991; Mione € Coe, 1996; Mione éz Leiva, 1997; Leiva, 2006); Leiva, Mione € Quipuscoa, 1998; Leiva € Mione, 1999; Leiva, Mione « Yacher, 2007; 2008; 2010 a y b, 2013; Mione, Leiva éz Yacher, 2000; 2004; 2007; 2000; 2004; 2007; 2011; 2013; y, ante nuevos viajes de campo efectuados en estos últimos años, se han encontrado poblaciones de dos especies de Jaltomata, que nos llamó la atención por sus particularidades referidas a sus tallos, forma de sus flores, bayas rodeadas por el cáliz acrescente, indumento de sus Órganos vegetativos y órganos florales, número de semillas por baya, entre otros. Estas diferencias morfológicas que las distinguen del resto de las especies descritas hasta ahora, motivan sus descripciones como nuevas, y como consecuencia, dar a conocer estas entidades es el principal aporte y objetivo de este trabajo. Material y métodos El material estudiado corresponde a las recolecciones efectuadas desde el año 1999 hasta la actualidad por S. Leiva (HAO), T. Mione éz L. Yacher (CCSU), entre otros, en las 21 (1): Enero - Junio 2014 | 27 Leiva. ef al. Jaltomata angasmarcae y Jalt diversas expediciones en el Norte del Perú, especialmente al Dpto. La Libertad, Prov. Santiago de Chuco, Distrito Angasmarca, en los alrededores de la ciudad y en la ruta hacia Tulpo, alrededor de los 2880 m de elevación, y arriba de la Ciudad de Cachicadán (alrededor de aguas termales) y en la ruta Algallama-Angasmarca, entre los 3050-3232 m de elevación, a fin de efectuar colecciones para sistemática del botánicas extensivas realizar la monografía: “Revisión género Jaltomata Schlechtendal (Solanaceae) en el Perú”. Las colecciones se encuentran registradas principalmente en los herbarios CCSU, CORD, F, HAO, HUT, MO. Paralelo a las recolecciones de herbario se fijó y conservó material en alcohol etílico al 30% o AFA, para realizar estudios en detalle de los órganos vegetativos y reproductivos y para la elaboración de las ilustraciones Las basadas en caracteres exomorfológicos, que respectivas. descripciones están se tomaron ín situ; se presentan también, de geográfica y ecología, fenología, estado fotografías, datos su distribución actual, nombres vulgares y usos de cada especie. Los acrónimos de los herbarios son citados según Thiers (2013). Resultados y discusión 1. Jaltomata angasmarcae S. Leiva é Mione sp.nov. (Fig. 1-2). TIPO: PERÚ. Dpto. La Libertad, Prov. Santiago de Chuco, Distrito Angasmarca, a 1 km en la ruta Angasmarca-Tulpo, 8* 08' 044” S y 78” 03' 012” W, 2880 m, 25-11-2013, S. Leiva, T. Mione > L. Yacher 5420 (Holótipo: HAO, Isótipos, a ser enviados: CCSU; CORD, F; HAO; HUT; MO). Diagnosis Shrub; leaf blades to 4,8-6,4 cm long; 21 (1): Enero - Junio, 2014 inflorescence 3-5 flowered; corolla whitish, short-tubular with a rotate limb and 10 green maculae in throat and a purple ring where the tube meets the limb; stamens exserted, the filaments villous along 50-60% of their length; fruits orange Arbusto perenne (0,40-) 0,60-0,80 m de alto; ampliamente ramificado. Tallos viejos rollizos, marrón-claro, compactos, rodeados por una cobertura de lenticelas blanco- cremosas, glabros, con agrietamientos 9-12 mm de en la base; tallos jóvenes 4-5 angulosos, longitudinales, diámetro morado-intenso la superficie adaxial, verde la superficie abaxial, compactos, sin lenticelas, pubescentes rodeados por una densa cobertura de pelos ramificados ad cortísimos. Hojas alternas; illent pl 1Ibescente odo por una densa cobertura de pelos ramificados transparentes cortísimos, (0,4- ) 0,6-0, E cm de Mois OEA io a veces |l te lan (o) a veces ligeramente suculenta, verde-oscuro y Opaca la superficie adaxial, verde-claro y Opaca superficie abaxial, pubescentes rodeadas por una densa cobertura de pelos ramificados transparentes cortísimos en ambas superficies, aguda en el ápice, largamente cuneada en la base, entera en los bordes, 4,8-6,4 cm de largo por 2,4- 3,2 cm de ancho. Flores 3-5 por nudo, no sincronizadas; pedúnculo filiforme, verde con pintas púrpuras longitudinales el área distal en la superficie adaxial, verde la superficie abaxial, ciliado rodeado por una densa cobertura de pelos ramificados transparentes cortísimos, curvado, 3-4,1 mm de longitud; pedicelos 5-angulosos el área distal disminuyendo hacia el área basal, púrpura o morado-intenso el área distal disminuyendo hacia el área basal, pubescente rodeado por una densa cobertura de pelos ramificados Leiva. ef al: Jaltomata angasmarcae y Jaltomata transparentes cortísimos, péndulos, 8-10 mm de longitud. Cáliz campanulado, morado-intenso el área basal disminuyendo hacia el área distal externamente, verdoso interiormente, pubescente rodeado por una densa cobertura de pelos ramificados transparentes externamente, glabro a veces suculento paf sobresalientes las nervaduras principales, 7-9 mm de diámetro del limbo en la antésis; 5-lobulado, lóbulos triangulares, morado- intenso, verde los márgenes externamente, verdoso interiormente, pubescentes rodeados por una densa cobertura de pelos ramificados transparentes externamente, glabros interiormente, ciliados rodeado por una cobertura de pelos ramificados transparentes en los bordes, suculentos, sobresalientes 3-3,2 mm de largo por 3-3,2 mm de ancho; tubo rectos nunca revolutos, las nervaduras principales, calicino 2-2,2 mm de largo por 4,8-5 mm de diámetro. Corola tubular-rotada, cremoso- blanquecino con un anillo púrpura en la hemialtura y con 10 máculas verdes una a cada lado de las nervaduras principales en el Ya basal externa e interiormente, pubescente rodeado por una cobertura de pelos eglandulares transparentes externamente, glabro interiormente, suculenta, sobresalientes las nervaduras principales, (15-) 17-20 mm de diámetro del limbo en la antésis; 10-lobulado, 5 lóbulos mayores que alternan con otros 5 menores; lóbulos triangulares, blanco-cremosos externa e interiormente, pubescentes rodeados por pelos eglandulares transparentes externa e interiormente, ciliados rodeados por una cobertura de pelos eglandulares transparentes en los bordes, suculentos, rectos, nunca revolutos, sobresalientes las nervaduras principales, 6-7 mm de largo por 4-5 mm de ancho; tubo corolino 5-6 mm de largo por 8-10 mm de diámetro. Estambres 5, nunca conniventes, inclusos a veces ligeramente exertos, insertos a 0,2-0,3 mm del borde basal interno del tubo homodínamos; área libre de los filamentos corolino; filamentos estaminales filiformes ampliándose ligeramente hacia el área basal, cremosos, pubescentes rodeados por una cobertura de pelos eglandulares transparentes que ocupan el 50-60% de su longitud basal, 4-4,2 mm de longitud; área soldada púrpura-intenso el área distal, cremoso el área basal, glabrescente rodeado por algunos pelos eglandulares distal; oblongas, púrpura-intenso o vinoso-intenso, transparentes el área anteras cremoso las suturas y el conectivo, sin mucrón apical, glabras, 2,3-2,5 mm de largo por 1,8-2 mm de diámetro. Ovario ovado, verde, disco nectarífero notorio amarillo- intenso que ocupa el 60-70% de su longitud basal del ovario, 5-anguloso, 2,5-2,7 mm de largo por 3-3,2 mm de diámetro; estilo exerto, filiforme ampliándose ligeramente hacia el área distal, cremoso, glabro, 7,4- 7,6 mm de longitud; estigma capitado, bilobado, 1-12 mm de diámetro. Baya péndula, globosa achatada verde-oscuro, por los polos, anaranjado a la madurez, sin estilo persistente, 7-9 mm de largo por 7-9 mm de diámetro; cáliz fruticoso persistente, acrescente envuelve hasta cerca de la mitad de la baya, verde, 10-12 mm de diámetro. 39-45 coriáceas, parduzcas, epispermo reticulado- Semillas por baya, reniformes, foveolado, de 2-2,4 mm de largo por 1,6-1,8 mm de diámetro. Material adicional examinado PERÚ. Dpto. La Libertad, Prov. Santiago de Chuco, Distrito Angasmarca, 2,900 m, 111-1916, A. Weberbaueri 7197 (US); a 1 km en la ruta Angasmarca-Tulpo, 8* 08' 044” S y 78” 03 012” W, 2880 m, 25-111-2013, T. Mione, L. Yacher €s S. Leiva 827 (CCSU; 21 (1): Enero - Junio 2014 | 29 Leiva. et al: Jaltomata angasmarcae y Jaltomata O AGÍA FAA aaa y E FÑ ñ y! , ER ME » a Fig. 1. cad palas S. Leiva 8 Mione. A. e en antésis; B. es C. Semilla; D. Antera en vista dorsal; E. Rama florífe n vista lateral; G. Estambre en vista ventral; H. Gineceo; I. Sección transversal del ovario; J. Corola o o de S. Leiva, T. Mione é L Yacher ee HAO y CCSU). 30 |ARNALDOA 21 (1): Enero - Junio, 2014 Leiva. et al. Jaltomata angasmarcae y Jaltomat: iseminata (Sol ) dos pecies del Perú Fig. 2. Jaltomata angasmarae S. Leiva 8 Mione. A. Planta en su hábitat; B. Rama con flores; C. Tallo; D-E Flores en antésis mostrando las anteras; F. Bayas. (Fotografías por S. Leiva, T. Mione 8 L. Yacher, 5420, HAO y CCSU). 21 (1): Enero - Junio 2014 | 31 Leiva. et al. Jaltomata angasmarcae y Jalt HAO); Dpto. Ancash, Prov. Cabana, borde del río Tablachaca, 8” 16' 44,1” S y 78% 02 087” W, 1667 m, 18-V-2008, T. Mione, L. Yacher €> S. Leiva 780 (CCSU); 8” 16' 44,1” S y 78% 02 087” W, 1667 m, 18-V-2008, S. Leiva, T. Mione > L. Yacher 4425 (HAO); 8 12' 35,3” S y 77% 56" 50,4” W, 2453 m, 18-V-2008, T. Mione, L. Yacher é> S. Leiva 781 (CCSU); 8" 12” 53,3" S y 77 56' 50,4” W, 2453 m, 18-V-2008, S. Leiva, T. Mione € L. Yacher 4427 (HAO). Jaltomata angasmarcae S. Leiva £: Mione es afín a su especie hermana Jaltomata lanata S. Leiva € Mione (ver Mione, Leiva 6: Yacher, 2007), propia del caserío El Sangal, en los alrededores de la Ciudad de San Pablo y en la ruta El Sangal-San Pablo, Dpto. Cajamarca, Perú, entre los 1850-2400 m de elevación porque ambas tienen cáliz campanulado, rodeado por una densa cobertura de pelos ramificados transparentes externamente, corola tubular-rotada, blanco-cremoso con un anillo púrpura en la hemialtura y 10 manchas verdes en el área basal interiormente, pubescente rodeada por una cobertura de pelos eglandulares o ramificados transparentes externamente, glabra interiormente, estambres nunca filamentos estaminales soldada de filamentos blanco-cremoso a veces púrpura conniventes, homodínamos, área los en el área basal, pubescentes rodeados por una cobertura de pelos eglandulares transparentes que ocupan 30-50% del área basal, anteras oblongas, sin mucrón apical, tallos jóvenes 4-5 angulosos, pubescentes o lanosos rodeados por una densa cobertura de pelos ramificados transparentes; pero, Jaltomata angasmarcae se caracteriza por presentar 3-5 flores por nudo, cáliz con lóbulos morado-intenso el área central verde en los bordes externamente, limbo de la corola (15-) 17-20 mm de diámetro en la antésis, limbo de la corola 10-lobulado 5 lóbulos mayores que alternan con otros 5 21 (1): Enero - Junio, 2014 menores, 6-7 mm de largo por 4-5 mm de ancho, tubo corolino 5-6 mm de largo por 8-10 mm de diámetro, anteras púrpura- intenso o vinoso-intenso, 39-45 semillas por baya, limbo de las hojas 4,8-6,4 cm de largo por 2,4-3,2 cm de ancho. En cambio, Jaltomata lanata tiene (4-) 7-8 (-13) flores por nudo, cáliz con lóbulos verdes externamente, limbo de la corola 7-11 (-13) mm de diámetro en la antésis, limbo de la corola 5-lobulado, 3,5-4 mm de largo por 3-3,2 mm de ancho, tubo corolino 4,5-5 mm de largo por 6-7 mm de diámetro, anteras blanco-cremosas, semillas 14-21 por baya, limbo de las hojas 8,5-9,5 (-12,5) cm de largo por 4,4.4,7 (-8,9) cm de ancho. Distribución y ecología: Especie con distribución limitada y aparentemente endémica a la zona de recolección en donde es abundante. A pesar de haberse efectuado colecciones aledañas, solamente a sido encontrada a 1 km en la ruta Angasmarca- Tulpo, Distrito Angasmarca, Prov. Santiago de Chuco, Dpto. La Libertad, Perú, a los 8 08' 044” S y 78% 03 012” W, 2880 m de elevación, como un integrante de la vegetación herbácea y arbustiva de los bordes de carreteras, caminos, cercos de chacras, acequias, prefiere suelos húmedos, profundos, arcillosos, a veces pedregosos, con abundante humus, y vive asociada con plantas de: Toc] bellat (Ruiz € P y ( av) Hunziker ex D'Arcy “shiraque” Dunalia spinosa (Meyen) Dammer (Solanaceae), Phytolacca bogotensis Kunth (Phytoccaceae), Minthosthachys (Benth.) Griseb. “chancua” (Lamiaceae), Eucalyptus mollis globulus Labill. “eucalipto” (Myrtaceae), (Muehlenpf.) Agave Austrocylindopuntia subulata Backeb. americacna L. “penca” (Asparagacae), entre “shulgón” (Cactaceae), otras. Fenología: Es una especie perenne, que brota con las primeras lluvias de noviembre Leiva. ef al: Jaltomata angasmarcae y Jaltomata o diciembre, para luego florecer y fructificar desde el mes de febrero hasta el mes de abril o mayo. Estado actual: Utilizando los criterios del IUCN (IUCN 2012) Jaltomata angasmarcae es considerada en peligro crítico (CR). La extensión de su rango de distribución es de un radio menor a 100 km*en la ruta Angasmarca-Tulpo, y el río Tablachaca, siendo éstas las únicas localidades donde se ha recolectado (Criterio B1). Asimismo, se han encontrado menos de 100 individuos maduros en la población (Criterio D), siendo influenciada directamente por el centro urbano de Angasmarca, Tulpo y la Pampa, y que transita por la carretera. Sin embargo, no se ha evaluado si existe una declinación del rango de distribución y del área de ocupación, siendo de necesidad urgente de un estudio en profundidad de la ecología, estructura poblacional y distribución de esta especie, para esclarecer su estado de conservación. Nombre vulgar: “sogorome” (En boleta, S. Leiva, T. Mione éz L. Yacher 5420, HAO) Etimología: El epíteto específico hace alusión al Distrito de Angasmarca en la Prov. Santiago de Chuco, Dpto. La Libertad, Perú, un hermoso y próspero Distrito, y que entre sus cerros, lagunas, valles y ríos guarda una diversidad biológica y cultural la cual requiere de más estudios. Usos: Las bayas maduras anaranjadas, son consumidas por los pobladores, especialmente los niños pastores, como frutas frescas, por ser agradables y exquisitas. 2. Jaltomata pauciseminata S. Leiva éz Mione — sp. nov. (Fig. 3-4). TIPO: PERÚ, Dpto. La Libertad, Prov. Santiago de Chuco, Distrito Cachicadán, ruta Algallama-Angasmarca. 08” 07' 57,0” S y 78 04 50,7” W, 3232 m, 25-I11-2013, S. Leiva, T. Mione € L. Yacher 5418 (Holótipo: HAO, Isótipos, a ser enviados: CCSU, CORD, F, HAO, HUT, MO). Diagnosis Shrub; leaf blades to 2,5-2,7 cm long; inflorescence 6-10 flowered; corolla whitish, crateriform, with 10 green maculae in throat and a purple ring fading in intensity proximal to distal, 5-7 mm in diameter, 10-lobed; the stamens very short, included, purple where the filaments meet their expanded bases Arbusto perenne 0,70-1,20 m de alto, ampliamente ramificado. Tallos viejos rollizos, marrón-claro, compactos, rodeados por algunas lenticelas blanco-cremosas dispersas, 10-13 mm de diámetro en la base; tallos jóvenes rollizos, verdes a veces marrón-claro o marrón-oscuro, compactos, sin lenticelas, ciliados rodeados por una densa cobertura de pelos ramificados transparentes. Hojas alternas; pecíolo semirrollizo, verde, verde-oscuro los bordes en la superficie adaxial, ciliado rodeado por una densa cobertura de pelos ramificados transparentes, (2-) 5-7 mm de longitud; lámina lanceolada, membranácea a veces ligeramente coriácea, verde-oscuro la superficie adaxial, verde-claro la superficie abaxial, opaca y ciliada rodeadas por una densa cobertura de pelos ramificados transparentes en ambas superficies, aguda en el ápice, cuneada en la base, entera en los bordes, (1,2-) 2,5-2,7 cm de largo por (0.7-) 1,2-1,4 cm de ancho. Flores (6-) 8-10 por nudo; no sincronizadas; pedúnculo filiforme, verde, ciliado rodeado por una densa cobertura de pelos ramificados 4-7 mm de pedicelos rollizos o filiformes ampliándose transparentes, longitud; ligeramente hacia el área distal, púrpura o morado-intenso el área distal disminuyendo 21 (1): Enero - Junio 2014 | 33 Leiva. et al: Jaltomata angasmarcae y Jaltomata iseminata (Sol ) dos pecies del Perú Fig. 3. oda pr pe pa £ Mione. A. Antera en vista dorsal; ha Baya; C. Flor en antésis; D. Cáliz; Sección transversal del n vista lateral; G. Estambre en vista ventral; H. Rama florífera; 1. Semilla; E Gineceo; K. ae dd Sn de S. Leiva, T. Mione € L. Yacher, 5418, HAO y CCSU). 34 | ARNALDOA 21 (1): Enero - Junio, 2014 Leiva. ef al: Jaltomata angasmarcae y Jaltomata 5 En == == [3 Ll sh. ad -.-. Pq AS Fig. 4. Jaltomata pauciseminata S. Leiva 8% Mione. A. Planta; B-C. Ramas foríferas mostrando tallosy fores; D-E Flores F. Bayas y goja. (Fotografías de S. Leiva, T. Mione W L. Yacher, 5418, HAO y C 21 (1): Enero - Junio 2014 | 35 + Leiva. et al. Jaltomata angasmarcae y Jalt hacia el área basal donde es verde, ciliados rodeados por una densa cobertura de pelos ramificados transparentes, péndulos, 2-4 mm de longitud. Cáliz campanulado a veces ligeramente aplanado, verde-oscuro externamente, verdoso interiormente, ciliado rodeado por una densa cobertura de externamente, pelos ramificados transparentes glabro interiormente, suculento, sobresalientes las nervaduras principales, 3-35 mm de diámetro del 5-lobulado, triangulares, verde-oscuro externamente, limbo en antésis; lóbulos verde-claro (verdoso) interiormente, ciliado rodeado por una densa cobertura de pelos ramificados transparentes externamente, glabro interiormente, ciliado rodeados por una cobertura de pelos ramificados transparentes en los bordes, aplanados nunca revolutos, ligeramente sobresalientes las nervaduras principales, 0,8-1 mm de largo por 0,8-1mm de ancho; tubo calicino 0,5-0,7 mm de largo por 1,3-1,/4 mm de diámetro, a veces aplanado. Corola crateriforme o campanulada-crateriforme, cremoso con un anillo lila o púrpura en la hemialtura y 2 máculas verdes una a cada lado de las nervaduras principales externamente, cremoso con un anillo púrpura-intenso o lila-intenso en la hemialtura con 10 máculas verdes en el área basal interiormente, ciliado rodeado por una cobertura de pelos ramificados transparentes externamente, glabro interiormente, suculentos, sobresalientes las nervaduras principales, 5-7 mm de diámetro del limbo en la antésis; 10-lobulado, 5 lóbulos mayores que alternan con otros 5 menores, triangulares, blanco- cremoso externa e interiormente, ciliados rodeados por una cobertura de pelos ramificados transparentes en los bordes, sobresalientes las nervaduras principales, 1,5-2 mm de largo por 1,2-1,4 mm de ancho; tubo corolino 2,8-3 mm de largo por 5-5,5 21 (1): Enero - Junio, 2014 mm de diámetro. Estambres 5, nunca conniventes, inclusos, insertos a 0,1-0,2 mm del borde basal del tubo li estaminales homodínamos; área libre de £:1 F y MUAIMNCriitOs los filamentos filiformes ampliándose ligeramente hacia el área basal, púrpura- 1 4 1 An]1 TA distal, ciliados rodeados por una cobertura de pelos eglandulares transparentes que ocupan el 10-20% del área basal, 0,4-0,5 mm de longitud; área soldada de los filamentos púrpura el área distal, cremosa el área basal, glabra; anteras oblongas, cremosas, amarillentos los conectivos, sin mucrón apical, 0,5-0,6 mm de largo por 0,5-0,6 mm de diámetro. Ovario ovado, verde, disco nectarífero anaranjado a veces amarillo- intenso, notorio que ocupa el 40-50% de su longitud basal, 1-1,2 mm de largo por 0,4- 0,5 mmm de diámetro, 5-anguloso; estilo incluso, filiforme ampliándose ligeramente hacia el área distal, verdoso, glabro, recto, 1,2-1,/4 mm de longitud; estigma capitado, bilobado, verdoso, 0,2-0,3 mm de diámetro. Baya péndula, globosa, anaranjada a la madures, sin estilo persistente, 3-4 mm de largo por 3-4 mm de diámetro; cáliz fruticoso persistente, acrescente envuelve ajustadamente el Y4 basal de la baya, 5-6 mm de diámetro. Semillas 4-6 por baya, reniformes, débiles, parduzcas, epispermo reticulado-foveolado, 1,4-1,5 mm de largo por 0,9-1 mm de diámetro. Material adicional examinado PERÚ, Dpto. La Libertad, Prov. Santiago de Chuco, Distrito Cachicadán, ruta Algallama Angasmarca, 08” 07" 948”S y 787 04 845” W, 3232 m, borde de carretera entre Dunalia spinosa (Meyen) Damwmer, 25-11-2013, T, Mione, L. Yacher €s S. Leiva 824 (CCSU,HAO); Cachicadán, arriba de aguas termales, 3050 m, 13-VI-1999, S. Leiva, T. Mione € L. Yacher 2338 (CCSU, HAO); Leiva. ef al: Jaltomata angasmarcae y Jaltomata Cachicadán, arriba de aguas termales, 3050 m, 13-VI-1999, T. Mione, L. Yacher €> S. Leiva 644 (CCSU, HAO). Jaltomata pauciseminata S. Leiva £ Mione es afín a su especie hermana Jaltomata parviflora S. Leiva £z Mione (ver Leiva, et al., 2010) propia de la ruta San Miguel-Llapa y en los alrededores de la Ciudad de San Miguel, Prov. San Miguel de Pallaques, Dpto. Cajamarca, Perú, a 7"0010,8"S y 78%50'632” W, entre los 2460-2480 m de elevación porque ambas tienen 6-12 flores por nudo, cáliz campanulado pubescente rodeado por una densa cobertura de pelos ramificados transparentes externamente, corola blanco-cremoso con un anillo púrpura o morado-intenso interiormente, rodeado por una cobertura de pelos ramificados transparentes externamente, estambres inclusos, filamentos estaminales homodínamos, área libre de los filamentos lilacinos o púrpura-claro el área basal distal, pubescentes rodeados por una cobertura disminuyendo hacia el área de pelos eglandulares transparentes que ocupan el 10-60% de su longitud basal, anteras oblongas blanco-cremosas, ovario ovado con un disco nectarífero amarillo- anaranjado que ocupa 40-50% de su longitud basal, arbustos (0,70-) 1-1,20 (-1,80) m de alto; pero, Jaltomata pauciseminata tiene la corola crateriforme o campanulado-crateriforme, 10-máculas verdes en el área basal del tubo corolino interiormente, limbo de la corola 10-lobulado, 5 lóbulos may con otros 3 menores, estambres nunca que alternan conniventes, bayas 3-4 mm de largo por 3-4 mm de diámetro, semillas 4-6 por baya, tallos viejos rodeados por algunas lenticelas blanco-cremosas, tallos jóvenes rollizos, hojas con láminas (1,2-) 2,5-2,7 cm de largo por (0,7-) 1,3-1,4 cm de ancho; en cambio, Jaltomata parviflora posee corola tubular- campanulado, ligeramente ventricosa en el área basal, sin manchas verdes en el área basal del tubo corolino interiormente, limbo de la corola 5-lobulado, estambres conniventes, bayas 6-7 mm de largo por 6-7 mm de diámetro, semillas 18-25 por baya, tallos viejos sin lenticelas, tallos jóvenes 4-5 angulosos, hojas con láminas (4,7-) 8-8,5 cm de largo por (2,4-) 3,9-4 cm de ancho. Distribución y ecología: Es una especie que habita en la ruta Algallama- Angasmarca y arriba de las aguas termales de la Ciudad de Cachicadán, Prov. Santiago de Chuco, Dpto. La Libertad, Perú, entre los 7%00'10,8"S y 78%50'632” W, entre los 2460- 2480 m de elevación, como un integrante de la vegetación de las vertientes occidentales, prefiere terrenos arcillosos, pedregosos, tierras negras, en bordes de carreteras, cercos de chacras, compartiendo su hábitat con Alnus acuminata Kunth “aliso” (Betulaceae), lochroma umbellatum (Ruiz $ Pav.) Hunziker ex D'Arcy “shiraque” (Meyen) (Solanaceae), Eucalyptus globulus Dammer Labill. “eucalipto” (Myrtaceae), Bidens pilosa L. Dunalia spinosa “cadillo” (Asteraceae), Agave americana L. “penca” (Asparagaceae), entre otras, y los géneros Rubus L. (Rosaceae), Verbesina L., Senecio L., Baccharis L. (Asteraceae), Solanum L. (Solanaceae), entre otros. Fenología: Es una especie perenne, que brota con las primeras lluvias de noviembre o diciembre, para luego florecer y fructificar desde el mes de febrero hasta el mes de abril o mayo. Estado actual: Utilizando los criterios del IUCN (IUCN, 2012) Jaltomata pauciseminata es considerada en peligro crítico (CR). La extensión de su rango de distribución es de un radio menor a 100 km? alrededor de La Ciudad de Cachicadán y una localidad en la ruta Algallama-Angasmarca, siendo éstas las dos únicas localidades donde se 21 (1): Enero - Junio 2014 | 37 m7 Leiva. ef al. Jaltomata angasmarcae y Jalt ha recolectado (Criterio B1). Asimismo, se han encontrado menos de 50 individuos maduros en la población (Criterio D), siendo influenciada directamente por el centro urbano de Cachicadán y ruta hacia Angasmarca. Sin embargo, no se ha evaluado si existe una declinación del rango de distribución y del área de ocupación, siendo de necesidad un estudio en profundidad de la ecología, estructura poblacional y distribución de esta especie para esclarecer su estado de conservación. Por lo tanto, consideramos su conservación y protección, de tal forma de evitar su extinción. En la de recolección se le conoce como “tomatito” (en boleta S. Leiva, T. Mione é6z L. Yacher 5418, HAO). Nombre vulgar: zona Etimología: El epíteto específico hace alusión al números de semillas por baya, y hasta el momento es la especie con el menor número: 4-6 semillas por fruto. Usos: Las bayas amarillo-anaranjadas a la madures, son consumidas por los pobladores, especialmente los niños pastores, como frutas frescas, por ser agradables y exquisitas. Agradecimientos Nuestra gratitud a las autoridades de la Orrego de Trujillo, por su constante Universidad Privada Antenor apoyo y facilidades para la realización de las expediciones botánicas. A la Red Latinoamericana de Botánica (RLB) por la beca otorgada al primer autor (S.L.G.) para su viaje al Museo Botánico de la Universidad Nacional de Córdoba, Argentina, para realizar estudios de perfeccionamiento en la familia Solanáceas, bajo la tutoría de dos destacados maestros quien fuera el profesor Ing. Armando T. Hunziker y el Dr. Gabriel 21 (1): Enero - Junio, 2014 Bernardello. Literatura citada D'Arcy, W. G. 1986. The Genera of Solanaceae and their types. Solanaceae Newsletter 2 (4); 10-33. D'Arcy, W. G. 1991. The Solanaceae since 1976, with a Review of its Biogeography. /n J.G. Hawkes, R.N. Lester, M. Nee and N. Estrada (eds.). Solanaceae III. Taxonomy, Chemistry, Evolution, pp. 75-137. The Royal Botanic Gardens Kew, Richmond. Su- rrey, UK for The Linnean Society of London. 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Esta familia, no es muy estudiada en nuestro país y según algunos autores, es prometedora para la ciencia, en el aislamiento de los nuevos productos químicos con diferentes 1 af lA J”1 m4 Hand potenciales inci y Y Asimismo, a vienen realizando, existen problemas en la delimitación genérica y específica en la familia Verbenáceas. Esta, es la razón por la cual se ha realizado el trabajo, teniendo como objetivo la revisión sistemática de los géneros de esta familia. Además, presentar los resultados, tomando como base estudios in situ e información de Herbario. Resultado de este estudio, se describen e identifican 9 géneros en las diferentes Provincias del Dpto. La Libertad: Verbena, Glandularia, Phyla, Lantana, Lippia, Aloysia, Pitraea, Citharexylum y Duranta. Palabras clave: Verbenaceae, Verbena, Glandularia, Phyla, Lantana, Lippia, Aloysia, Pitraea, Citharexylum, Duranta, La Libertad. Abstract The Verbenaceae J. St.-Hil. Family in Peru, most of them are cultivated as ornamental and others provide valuable essential oils. This family was poorly studied in our country and according to some authors, is promising in the isolation of new chemical agents with different potentials, mainly pharmacological. Also in spite of the intense studies, still problems of the generic and specific boundaries in the Verbenaceae family. This is the reason of this research has been realized, is a systematic revision of the genera in this family. The results were taking from in situ studies and information from Herbarium. Nine genera from different provinces of La Libertad were described and identified: Verbena, Glandularia, Phyla, Lantana, Lippia, Aloysia, Pitraea, Citharexylum y Duranta. Key words: Verbenacene, Verbena, Glandularia, Phyla, Lantana, Lippia, Aloysia, Pitraea, Citharexylum, Duranta, La Libertad. Introducción Su distribución abarca las regiones tropicales y templadas de América, Áfri La Familia Verbenaceae J. St.-Hil., de E O ÓN La India. Los principales centros de amplia distribución geográfica, comprende Y 4 Ñ diversidad son: América del Sur, México y Andes (Sanders, 2001, Judd et al., 2002). Esta familia, es importante porque muchos de cerca de 35 géneros y 1150 especies (Mabberley, 2008); El APG Il Versión 13, sostiene que la familia consta de 31 géneros y unas 918 especies (APG III Versión 13, 2014). Para el Perú, Macbride (1960), reporta 19 géneros con 163 especies. En el “Catálogo de las Angiospermas y Gimnospermas del sus géneros se cultivan como ornamentales (Lantana L. y Glandularia J. F. Gmel., entre otros), poseer representantes aromáticos- Lippia L., Aloysia Paláu, propiedades a a _ . digestivas (Festeretal., 1961; Ratera € Ratera, Perú”, y en” Diez años de adiciones a la . on Ñ 1980; Gupta, 1995) y otros proporcionan Flora del Perú”, se da a conocer 23 géneros y 201 especies (Brako € Zarucchi, 1993; Ulloa et al., 2004), entre hierbas, arbustos y árboles, además de lianas y bejucos. León valiosos aceites esenciales (Prakash € Rao, 1997), dentro de la cuales, las más estudiadas son el género Lippia (Barriga, 1992; ' ] Stashenko et al., 2003). Además, este género, (2006) reporta 12 géneros con 38 especies y A en es el segundo más grande de la familia y el 16 variedades endémicas para nuestro país. : / más estudiado por presentar importantes 42 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú especies que se pueden utilizar con distintos propósitos. Entre estos, se distinguen por sus propiedades medicinales, efectos contra “malaria” (Gasquet et al., 1993), actividad citostática, (López et al., 1979; Slowing, 1992; Klueger et al., 1997), sedante, diurético, anti-reumáticas, anti-inflamatorio, y otros (Sousa, 2006). Históricamente, la familia Verbenaceae se clasifica dentro del orden Lamiales. En 1895, Briquet, dentro de la obra General Pflanzenfamilien, realizó una sinopsis y subdividió la familia en 7 subfamilias y 13 tribus. De las siete subfamilias, una de ella se encuentran dentro del área estudiada: Verbenoidene (5 Tribus) (Junell, 1934; Erdtman, 1945; Moldenke, 1959). La subdivisión Verbenoideae, que abarca 9 géneros, siempre en el área considerada, se han reunido en 5 tribus: Verbeneae, Priveae, Lantaneae, Citharexyleae y Duranteae. A pesar de los intensos estudios que se vienen realizando, existen problemas de la delimitación genérica y específica en la familia Verbenáceas, Olmstead (com. per., 2009). En tal sentido, el objetivo de esta Revisión Sistemática es diferenciar morfológicamente los géneros de la familia Verbenáceas en el Libertad, Perú. Departamento La Material y métodos El área de estudio Comprendió las doce Provincias del Dpto. La Libertad, Perú. El material estudiado corresponde a material fresco y en algunos casos material conservado procedente de los herbarios, y cuyos acrónimos de los Herbarios son citados según Thiers, 2013. Adicionalmente al trabajo de campo, las muestras botánicas se fijaron y conservaron en un líquido (alcohol etílico 70% o AFA), para analizar en detalle los órganos vegetativos y reproductivos para sus ilustraciones. Las caracteres exomorfológicos, que se tomaron descripciones se basaron en in situ; asimismo, se presentan fotografías, datos de su distribución, geografía y ecología. Resultados y discusión a. Ubicación sistématica de la familia Verbenaceae J. St.-Hil. El presente estudio, está realizado en base al Sistema APG 111-2014 Versión 13, y la posición sistemática de la familia es la siguiente: División: Magnoliophyta Cronquist, Takht. € Zimm. ex Reveal Clase: Magnoliopsida Brongn. Subclase: Lamiidae Takht. ex Reveal Superorden: Asteranae Takht. Orden: Lamiales Bromead Familia: Verbenaceae J. St.-Hil. b. CLAVE DICOTÓMICA PARA LA DE LAS TRIBUS 21 (1): Enero - Junio 2014 | 43 Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú A Esquizocarpo separándose a la madurez en 4 mericarpos uniseminados. Sufrútices a veces hierbas. Tribu 1: VERBENEAE A” Esquizocarpo separándose a la madurez en 2 mericarpos uniseminad d inad Arbustos a veces hierbas. B Esquizocarpo separándose a la madurez en 2 mericarpos uniseminad una pirena 2- locular y 2- seminada. "a d Mina drupa con Tribu 2: LANTANEAE B' Esquizocarpo separándose a la madurez en 2 mericarpos dos seminados o drupa con 2 6 4 pirenas dos seminados. C Esquizocarpo separándose a la madurez en 2 mericarpos dos seminados. Tribu 3: PRIVEAE C' Drupa con 2 ó 4 pirenas dos seminados. D Flores 9-12 dispuestas en inflorescencias axilares. Tribu 4: CITHAREXYLEAE D' Flores 20-31 dispuestas racimos axilares o terminales. Tribu 5: DURANTEAE c. Clave dicotómica para la identificación de los géneros TRIBU 1. VERBENEAE A Frutos esquizocarpos que a la madurez se separan en 4 mericarpo, excepto en Glandularia es drupáceo. B Anteras sin apéndices glandulares. Corola infundibuliforme. Estilo 2,8- 3 mm longitud. Hierbas erguidas. 1. Verbena B' Anteras con apéndices glandulares que superan las tecas en antésis. Corola hipocrateriforme. Estilo 4,2-4,5 mm longitud. Hierbas postradas o rastrera. 2. Glandularía TRIBU 2. LANTANEAE C Hierbas. Pubescencia malpigiácea en tallos, hojas, brácteas y pedúnculos. 3. Phyla C' Arbustos. Pubescencia variada nunca pubescencia malpigiácea D Fruto drupa 4. Lantana 44 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú D'Fruto esquizocarpo. E Corola zigomorfa. Ovario glabro. 5. Lippia E'Corola sub actinomorfa. Ovario rodeado de pelos simples unicelulares papilados transparentes no glandulares en el 1/3 distal. 6. Aloysia TRIBU 3. PRIVEAE F Hierbas de 0,10.0,60 m de alto. 7. Pitraea F' Arbustos 2-3 m de alto. A'Fruto drupa que a la madurez se separa en dos mericarpos. TRIBU 4. CITHAREXYLEAE G Ramas con braquiblastos. Racimos axilares. Estigma bífido o ligeramente capitado. Estambres insertos por encima de la 1/2 del tubo corolino. Fruto con dos pirenas. 8. Citharexylum TRIBU 5. DURANTEAE G'Ramas sin braquiblastos. Racimos terminales. Estigma capitado. Estambres insertos en la 1/2 del tubo corolino. Fruto con 4 pirenas. 9. Duranta d. SINOPSIS DE LAS SUBFAMILIAS, Tribu 5: DURANTEAE Bentham TRIBUS Y GENEROS 9. Duranta L. Subfam.I VERBENOIDEAE Briq. DESCRIPCIÓN DE LOS GÉNEROS Tribu 1. VERBENEAE Schauer. 1. Verbena L. aaa Sp. Pl. 1: 18, 1753 (1 mayo de 1753). (Fig 2. Glandularia J. F. Gmel. 1 y 10 A-B). Tribu 2. LANTANEAE Briq. Material examinado 3. Phyla Lour. PERÚ, Dpto. La Libertad, Prov. Sánchez Carrión, caserío El Molino, alrededores del 4. Lantana L. á poblado, 2800 m, 29-VII-2009, R. Rivera, S. 5. Lippia L. Leiva € F. Mejía 117 (HUT, HAO). 6.Aloysia Paláu Tribu 3. PRIVEAE Briq. Sufrútice 0,60-1,30 m alto, ampliamente DAA ramificado, Tallos viejos verde-oscuro, marcadamente cuadrangulares, Tribu 4. CITHAREXYLEAE Briq. agrietamientos longitudinales, 8. Citharexylum L. compactos, sin lenticelas, pelos simples 21 (1): Enero - Junio 2014 | 45 Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú Fig. 1. Verbena cuneifolia Ruiz € Pav. A. Gineceo; B. Cáliz; C. Bráctea; D. Antera en vista ventral; E. Antera en vista lateral; F. Rama florífera; G. Corola cerrada; H. Antera en vista dorsal; I. Corola desplegada. R. Rivera, S. Leiva és F. Mejía 001 (Dibujado por R. Rivera et al., 001, HAO). 46 | ARNALDOA 21 (1): Enero - Junio, 2014 Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú transparentes, 1-15 cm diámetro en la base; tallos jóvenes verde-oscuro, ligeramente cuadrados, glabros, algunos pelos simples transparentes dispersos. Hojas opuestas; peciolo rollizo, morado- verdoso, ligeramente cuadrados, rodeado por una densa cobertura de pelos simples transparentes en el área adaxial, menor densidad en el área abaxial; lámina palmatifída, escábrida, verde-oscuro en el área adaxial, verde-claro en el área abaxial, aguda en el ápice, cuneada en la base, dentado en el borde, rodeado por pelos ambas superficies, mayor densidad en la simples transparentes en superficie adaxial, 4,5-7,6 cm largo por 2,5- 3,5 cm ancho. Flores 35-40 dispuestas en espigas o racimos terminales; pedúnculos, ligeramente cuadrangulares, rodeado por pelos simples transparentes, 1-314 cm longitud. Bráctea ligeramente lanceolada, verde, rodeada ¡por pelos simples unicelulares papilados glanduloso y no glandulosos transparentes en la superficie adaxial, glabro en la superficie abaxial, 7,5-7,6 mm largo por 1,3-1,5 mm ancho. Cáliz tubular, suculento, morado, verde- oscuro externamente, morado-verdoso interiormente, rodeado por pelos simples unicelulares papilados glanduloso y no glandulosos transparentes externamente, 3-3,2 mm lobulado, morado a verde-oscuro externamente, borde ciliado, pubescente, rodeados por pelos glabro en interiormente, diámetro en la antésis; 5- morado-verdoso interiormente, simples unicelulares papilados glanduloso y no glandulosos transparentes externamente, glabrescente interiormente, 4-4,3 mm largo por 0,8-1mm ancho; tubo 5-5,1 mm largo por 0,8-1,1 mm diámetro. Corola infundibuliforme, suculenta, lila- morado-oscuro oscuro externamente, interiormente, pubescente el 1/3 distal, rodeado por pelos simples unicelulares papilados no glandulosos transparentes y en la Y distal, glabrescente, rodeado por pelos simples unicelulares papilados glandulosos transparentes externamente, área distal pubescente, rodeado por pelos simples unicelulares papilados no glandulosos transparentes y pubescente el 1/3 distal, rodeado por pelos simples unicelulares papilados glandulosos y no glandulosos transparentes interiormente, 7-10 mm diámetro en la antésis; limbo 5-lobulado, lóbulos oblongos, reflexos, pubescentes solo en la base del lóbulo, rodeado por pelos simples unicelulares papilados no glandulosos transparentes, interiormente; glabrescente, rodeados por pelos simples unicelulares papilados no glandulosos transparentes externa e interiormente, 4-4,2 mm largo por 4,5-4,7 mm ancho; tubo 9-10 mm largo por 1,2- 1,5 mm diámetro. Estambres 4, didínamos, inclusos, del tubo libre, glabro, 0,2-0,3 mm, área soldada, insertos en la mitad superior corolino; superiores, área glabrescente, rodeado por pelos simples unicelulares papilados glandulosos y no glandulosos transparentes, 5,1-5,2 mm; inferiores, área libre, glabro, 0,2-0,3 mm soldada, rodeado por pelos simples unicelulares papilados glandulosos y no glandulosos transparentes, 45-47 mm longitud; basifijas, longitud; área glabrescente, anteras amarillas, oblongas, sin apéndices glandulares, 0,9-1 mm de largo por 0,2-0,3 mm diámetro. Ovario, obovado, verde-claro, 0,8-1 mm largo; 2,8-3 mm longitud; estigma, verde-oscuro, bífido, estilo, verde-claro, incluso, lóbulo anterior papiloso estigmatífero, el posterior agudo, glabro, 0,6-0,8 mm diámetro. Esquizocarpo, con exocarpo delgado, ovoide-oblongo, cáliz persistente, con 4 mericarpos uniseminados. 21 (1): Enero - Junio 2014 | 47 Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú Fig. 2. Glandularia Gmel. A. Gineceo; B Bráctea.; C. Cáliz; D. Antera superior en vista ventral; E. Rama florífera; F. Antera superior en vista dorsal; G. Antera superior en vista lateral; H. Corola cerrada; l. Corola desplegada. R. Rivera, S. Leiva € F. Mejía 002 (Dibujado por R. Rivera 002, HAO). 48 | ARNALDOA 21 (1): Enero - Junio, 2014 Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú Material adicional examinado PERÚ, Dpto. La Libertad, Prov. Otuzco. Distrito Agallpampa. Terreno pedregoso 3200 m, 02-VI-1949; A. López. S.N (HUT- N? 1048). Prov. Patáz, Tingo (La Sabana- Huaylillas), en borde de camino, 3100 m, 23-V-1961, A. López és A. Sagástegui. Det Dr. H. Moldenke (HU'T-N* 3543). Distribución y ecología Género con 200 especies, de amplia distribución en América (Troncoso, 1974 $ Mabberley, 2008). En el Perú, habitan 36 especies, de las cuales 6 son endémicas, y para el Dpto La Libertad se reportan 11 especies (Brako € Zarucchi, 1993; Ulloa, Zarucchi € León, 2004). Se tiene a V. cuneifolia Ruiz $: Pav., es común en bordes de caminos, terrenos pedregosos y entre pajonales. Habita entre los 2700-3200 m de elevación, en La Libertad. (Colecciones, HU'D. Nombre vulgar: “azucena” (colección V. Medina, HUT); “azularia” (Mostacero, J., F. Mejía éz otros, HUT) 2. Glandularía J. F. Gmel. (Fig. 2 y 10 C) Syst. Nat. ...editio decima tertia, aucta, reformata 2: 886, 920, 1791 (1792). Material examinado PERÚ, Dpto. La Libertad, Prov. Virú, 250 m.; 13-XI-2009 R. Rivera, S. Leiva é F. Mejía 119 (HUT, HAO). de 0,30-0,50 m alto, ampliamente ramificado. Tallos viejos Subfrútice rastrero, verde a marrón-claro, sub leñosos en la base, agrietamientos longitudinales, compactos, ligeramente cuadrangulares con sin lenticelas, glabros, 5-6,5 mm diámetro de la base; tallos jóvenes, verde-oscuro en el área adaxial, verde-claro en el área abaxial, ligeramente cuadrados, sin lenticelas, compactos, rodeados por una densa cobertura de pelos largos simples transparentes. Hojas opuestas, decusadas, dividida trilobulada, membranosa, verde-oscuro en la superficie sésiles; lámina adaxial, verde-claro en la superficie abaxial, ligeramente agudas en el ápice, cuneadas en la base, enteras en el borde, pubescentes en ambas superficies, con mayor densidad de pelos simples transparentes en la nervadura principal; lóbulos desiguales, lóbulo medio, 11-12 mm largo por 1-1,2 mm ancho, lóbulos laterales, 7-9 mm largo por 1-1,2 mm ancho Flores 25-30, dispuestas en cabezuelas densas o laxas que se alargan en la madurez; pedúnculo, verde-oscuro, suculento, 1-2 mm longitud, el eje de inflorescencia terminal. Bráctea, ligeramente triangular, verde-oscuro en la superficie adaxial, verde-claro en la superficie abaxial, ciliado en el margen, rodeada por pelos simples unicelulares papilados glandulosos y no glandulosos transparentes en la superficie adaxial, glabro, rodeada por pelos simples unicelulares papilados glandulosos y no glandulosos transparentes en la superficie abaxial, 4-4,2 mm largo por 1-12 mm ancho. Cáliz tubular, verde-oscuro externa e internamente, pubescentes, rodeados por pelos largos simples unicelulares papilados glandulosos y no glandulosos transparentes externamente, glabro interiormente, 1,8- 2 mm diámetro en la antésis; 5-lobulado, lóbulos triangulares, morado externamente, verde-oscuro interiormente, borde ciliado, pubescente, rodeados por pelos largos simples transparentes, 5-3,7 mm largo por 2-2,3 ancho, tubo 5,2-5,5mm largo por 2-2,2 mm diámetro. Corola tubular, hipocrateriforme, suculenta, rosado-pálido externamente, crema interiormente, 1/3 distal pubescente, rodeados por pelos largos simples unicelulares papilados no glandulosos transparentes exteriormente; distal rodeados área glabrescente, 21 (1): Enero - Junio 2014 | 49 Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú por pelos largos simples unicelulares papilados no glandulosos transparentes -1/3 distal por pelos largos papilados glandulosos y no glandulosos 11-12 mm diámetro en la antésis; limbo 5-lobulado, glabrescente rodeados simples unicelulares transparentes interiormente, bífidos, suculento, lila externamente, lila- claro interiormente, glabrescente, rodeados por pelos simples unicelulares papilados no glandulosos transparentes externa e interiormente, pubescente solo en la base del lóbulo, rodeado por pelos simples unicelulares papilados no glandulosos 3,8-4 mm largo por 2,5-3 mm de ancho; tubo 8,8-9 mm transparentes, interiormente, largo por 1,5-1,7 mm diámetro. Estambres 4, didínamos, ligeramente exertos, insertos en la mitad distal del tubo corolino; 2 superiores: área libre, glabro, 0,3-0,4 mm, área soldada, glabrescente el 1/3 distal, rodeados por pelos simples unicelulares papilados glandulosos y no glandulosos transparentes, 7,3-7,5 mm, 2 inferiores: área libre 0,3-0,4 mm; área soldada, glabrescente el 1/3 distal, rodeados por pelos simples unicelulares papilados glandulosos y no glandulosos transparentes, 6-6,2 mm; anteras Oblongas, basifijas, amarillas; 2 superiores con apéndices glandulares que superan a las tecas durante la antesis. 0,8- 1, mm largo por 0,6-0,7 mm diámetro; Ovario, tetralobulado, verde-claro, estilo, incluso, verde, 4,2-4,5 mm longitud; estigma bífido, lóbulo anterior papiloso, el posterior agudo, glabro 0,5-0,7 mm diámetro. Esquizocarpo, seco dividiéndose a la madurez en 4 mericarpos cilíndricos. Cáliz fructífero persistente. Material adicional examinado PERÚ, Dpto. La Libertad, Prov. Bolívar. Balsas, 3450 m; 17-X-2000, M. Weigend, E. Rodriguez, H. Forther and N. Dostert 817 (HUT- N* 35780). 50 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 Distribución y ecología: Género con alrededor de 100 especies principalmente distribuidas en áreas templadas de América (Mabberley, 2008). En Perú se reportan 7 especies, de las cuales una sola especie habita en La Libertad Brako € Zarucchi, 1993; Ulloa, et al., 2004), crecen entre los 3450-4000 m (Mostacero et al., 2002). OS 3. Phyla Lour. (Fig. 3) Fl. Cochinch. 1: 63,66, 1790 (Septiembre 1790) Material examinado PERÚ, Dpto. La Libertad, Prov. Chepén. Caserío Casa Blanca, hierba postrada. 21-VI- 2009, R. Rivera, S. Leiva és F. Mejía 113 (HUT, HAO). Hierba 0,15- 0,75 ampliamente ramificada, rastrera. Tallos postrada m, viejos radicantes verde a marrón-claro, ligeramente teretes, con agrietamientos longitudinales, compactos, rodeados por lenticelas marrón-claro, rodeados por algunos pelos simples transparentes, 8-10 mm diámetro en la base; tallos jóvenes, verde-oscuro en la superficie adaxial y verde-claro en la superficie abaxial, sin lenticelas, ligeramente tetrágonos, compactos, glabros. Hojas opuestas, decusadas; peciolo semirrollizo, verde- claro, suculento, rodeada por pelos simples transparentes dispersos, 1-2 mm longitud; láminas obovadas, suculentas, verde- oscuro en la superficie adaxial, verde-claro en la superficie abaxial, ligeramente agudas en el ápice, largamente cuneadas en la base, dentadas la /2 distal en los márgenes, 4-5 dientes por margen, glabras en ambas superficies, mayor densidad en la nervadura principal, rodeada por pelos simples transparentes, 20-30 mm largo por 15-20 mm ancho. Flores dispuestas en cabezuelas Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú Fig. 3. Phyla nodiflora (L.) Greene. A. Gineceo; B Bráctea.; C. Cáliz; D. Corola desplegada; E. Corola cerrada; F. Rama florífera; G. Antera en vista ventral; H. Antera en vista dorsal; I. Antera en vista lateral. J. Pelo malpigiáceo. R. Rivera, S. Leiva € F. Mejía 004 (Dibujado por R. Rivera 003, HAO). ARNALDOA 21 (1): Enero - Junio 2014 | 51 Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú globosas, axilares. Pedúnculo filiforme ampliándose ligeramente hacia el área distal, verde-oscuro, suculento, 20-22 mm longitud. Bráctea externa anchamente oval- triangular, verde, sobresaliente la nervadura principal, rodeada por pelos simples transparentes externamente; Bráctea interna ligeramente triangular, verde, pubescente, rodeada por pelos simples unicelulares papilados no glandulosos transparentes, lila-intenso en los bordes, Y distal rodeada por pelos simples unicelulares papilados no glandulosos transparentes, glabro interiormente, 3-3,2 mm largo por 2,8- 3 mm ancho. Cáliz tubular-compreso, verde-oscuro preferentemente en las nervaduras, los bordes blanquecinos, suculentos, glabrescente, rodeados por pelos largos simples unicelulares papilosos transparentes, mayor densidad en las nervaduras principales externamente, glabro interiormente, 1-1,3 mm diámetro en la antésis; 2-lobulado, lóbulos triangulares conduplicados, verde, ciliado en el borde, glabrescente, rodeados por pelos largos simples unicelulares papilados transparentes, lila-intenso externamente, glabro interiormente, 0,6-0,9 mm largo por 0,4-0,5 mm de ancho; tubo 1,5-1,7 mm largo por 1-1,2 mm diámetro: Corola hipocrateriforme, suculenta, lila en el área distal, cremoso en las Y partes del área basal, algunos pelos simples unicelulares papilados transparentes en el área distal externamente, glabro interiormente, 0,8- 1 mm diámetro en la antésis; 4-lobulado, lóbulo mayor rectangular, suculento, lila en ambas superficies, algunos pelos simples unicelulares papilosos en el área basal externamente, glabro interiormente, 0,7-0,9 mm largo por 0,9-1 mm ancho; dos lóbulos laterales, oblongos, suculentos, lila en ambas superficies, glabrescente, rodeados por algunos pelos simples unicelulares papilados en el área basal externamente, 52 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 glabro internamente, 0,3-0,4 mm largo por 0,5-0,7 mm ancho; lóbulo inferior bífido, suculento, lila-intenso ambas superficies, glabro, 0,2-0,3 mm largo por 0,4-0,6 mm ancho; tubo 1,7-2 mm largo por 0,8-1 mm diámetro. Estambres 4, didínamos, adnatos en el tubo corolino, inclusos; filamento oblongas, basifijas, verdes, sin apéndices, 1-1,3 mm cortos; anteras ligeramente largo por 0,8-0,9 mm diámetro; Ovario, ovoide- globoso, verde-claro, 0,9-1 mm largo por 0,4-0,5 mm diámetro; estilo incluso, verde, 0,4-0,5 mm de longitud; estigma engrosado-capitado, 0,5-0,6 mm Esoni da la madurez en 2 mericarpios uniseminados, diámetro Seco Y Y cara dorsal convexa, lisa y la ventral plana. Material adicional examinado PERÚ. Dpto. La Libertad, Prov. Trujillo, Distrito Moche, campiña de Moche, terreno de cultivo 50 m, 21-VI-1985, J. Mostacero, S. Leiva, F. Mejía, EF. Peláez, J. Guevara € A. Zavaleta 737 (HUT-N* 22174) Distribución y ecología Li América pical y templada, con una especie cosmopolita: P. nodiflora (L.) Greene (Troncoso, 1974). Comprende alrededor de 11 especies (Mabberley, 2008), de las cuales, 4 crecen en nuestro país, prefiere suelos arenosos y campos de cultivo abandonados formando un denso césped (Sagástegui « Leiva, 1993). Nombre vulgar: “turre hembra” (colección: J. Mostacero, S. Leiva, F. Mejía, F. Peláez 8 J. Guevara, HUT). 4. Lantana L. (Fig. 4 y 10 E) Sp. Pl. 2: 626, 1753 (1 mayo 1753) Material examinado PERÚ, Dpto. La Libertad, Prov. Trujillo, Distrito La Esperanza, jardín, 55 m, 21-IX- 2009. R. Rivera, S. Leiva és F. Mejía 118 (HUT, Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú Fig. 4. Lantana camara L. A. Cáliz; B. Gineceo; C. Bráctea; D. Antera en vista ventral; E. Rama florífera; F. Antera en vista lateral; G. Corola cerrada; H. Antera en vista dorsal; I. Corola desplegada. R. Rivera, S. Leiva és F. Mejía 003 (Dibujado por R. Rivera 004, HAO). ARNALDOA 21 (1): Enero - Junio 2014 | 53 Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú HAO). Arbusto, con ligero aroma a limón, 0,80-1 m alto, ampliamente ramificado. Tallos cuadrangulares, viejos erguidos, verde-oscuro, con agrietamientos longitudinales, espinosos, compactos, sin lenticelas, glabros, 10-15 mm diámetro de la base; tallos jóvenes morado-oscuro en la superficie adaxial, verde-oscuro en la superficie abaxial, ligeramente cuadrados, espinosos, sin lenticelas, glabrescente, algunos pelos simples transparentes dispersos. Hojas opuestas; peciolo verde-oscuro, rollizo, glabrescente, 0,81 cm longitud; lámina ovada por lo general pelos simples transparentes, cortamente acuminada, escabrosas en la superficie adaxial, ligeramente pilosas en la superficie abaxial, verde-claro en la superficie adaxial, verde-claro en la superficie abaxial, agudo en el ápice, atenuada en la base, aserrado en los bordes, glabrescente, rodeada por pelos simples transparentes en ambas superficies, 3-3,4 cm largo por 2,1-2,4 cm ancho. Flores sésiles 20-40 dispuesta en cabezuelas axilares, largamente pedunculadas; pedúnculos, 3,5-4,5 cm longitud. Bráctea lanceolada, verde-oscuro, glabrescente, rodeada por pelos simples unicelulares papilados no glandulosos transparentes en la superficie adaxial, glabro en la superficie abaxial, 5,5-6 mm largo por 1,8-2 mm ancho. Cáliz tubular, membranáceo, verde-claro externa e interiormente, rodeado por una densa cobertura de pelos simples unicelulares papilados no glandulosos transparentes 1/3 distal rodeado por pelos simples unicelulares externamente, glabrescente, papilados no glandulosos y glandulosos transparentes interiormente, 1,5-1,7 mm diámetro en la antésis; 2-lobulado, lóbulo ligeramente triangular, verde, rodeados por una densa cobertura de pelos simples 21 (1): Enero - Junio, 2014 unicelulares papilados glandulosos y no glandulosos transparentes externamente, rodeados por pelos simples unicelulares papilados no glandulosos transparentes interiormente, 0,6-0,8 mm largo por 1,8-2 mm ancho; tubo 1,5-1,8 mm largo por 0,9-1 mm diámetro. Corola, hipocrateriforme, rojas, amarillas o anaranjadas, suculenta, pubescente, rodeado por pelos simples unicelulares papilados no glandulosos transparentes el 1/3 distal externamente, pubescente, rodeado por pelos simples unicelulares papilados no glandulosos transparentes el 1/3 distal interiormente, -8 mm diámetro en la antésis; 4-lobulado, ligeramente reflexos, amarillo-claro, glabrescente, rodeado por pelos simples unicelulares papilados no glandulosos glabro interiormente; lóbulo superior, ligeramente transparentes externamente, cuadrangular, 3-3,2 mm largo por 1,8-2 mm ancho; lóbulos laterales, ligeramente oblongos, 1,5-1,7 mm largo por 2,5-2,7 mm ancho; lóbulo inferior, ligeramente cuadrangular, ligeramente ondulado, 1,7-2 mm de largo por 4,7-4,9 mm ancho; tubo 8-8,5 mm largo por 1-1,3 mm diámetro. Estambres 4, didínamos, insertos en la 1/2 del tubo corolino, inclusos; superiores, área libre, glabro, 0,7-0,8 mm de longitud; área soldada, glabrescente, 5,9-6 mm, inferiores, área libre, glabros, 0,7-0,8 mm de longitud; área soldada, glabrescente, 5,2-5,5 mm de longitud; anteras ligeramente oblongas, amarillas, sin apéndices gl ] 3,5-3,6 mm de largo por 3,7-3,9 mm de diámetro. Ovario obovado, verde-claro, 0,8-1 mm largo por 0,4-0,6 mm diámetro; estilo filiforme, verde-claro, incluso, 2,8-2,9 mm longitud; estigma capitado, 0,3-0,4 mm diámetro. Drupáceo esférico, negro, a veces carnoso o sub seco, 4-7 mm de diámetro. Material adicional examinado ARGENTINA. Prov. De Entre Ríos. Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú Fig. 5. Lippia americana L. A. Rama florífera X 0,5; B. Bráctea X 12,5; C. Cáliz X 12,5; D. Corte transversal del cáliz X 25; E. Corola; F. Gineceo; G. Ovario, corte transversal X 25. JA 21 (1): Enero - Junio 2014 | 55 Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú Dpto. Colón, Ubajay, Estancia los Monigotes Otuzco, A. Cabrera € A. Sagástegui 19318 (HUT-N* 9212). Distribución y ecología Género de América Tropical y Subtropical, con algunos representantes en África y en Asia. Según Troncoso (1974), comprende unas 150 especies de las cuales alrededor de 40 fueron citadas para Argentina, Bolivia, Brasil austral, Paraguay y Uruguay. En Perú, se reportan 31 especies, de las cuales 11 especies están en La Libertad (Brako € Zarucchi, 1993; Ulloa, Zarucchi € León. 2004). Prefiere, terreno arenoso-pedregoso, de gran relieve y poca humedad. “hierba de la albaca”, Nombre vulgar: maestranza”, “tunchi “saccha orégano” (Mostacero éz col., 2002). 5. Lippia L. (Fig. 5) Sp. Pl. 2: 633, 1753. (1 mayo 1753). Material examinado PERÚ, Dpto. La Libertad Prov. Chepén, 08-111-1996, E. Rodríguez €: M. Mora 761. (HUT-N* 30962). Arbusto o subarbusto de variado porte o hierbas perennes, por lo común glandular- resinosos, glabros o pubescentes, de indumento variado de pelos simples de inserción basal; leños y ramas ligeramente débiles, campestres presentan raíz gruesa. Hojas herbáceas. Algunas especies opuestas O ternadas, raramente alternas, enteras O variadamente dentadas, lobadas o serradas, sésiles o pecioladas. Inflorescencias dispuestas en cabezuelas o espigas breves, contraídas, axilares, solitarias O numerosas, o en panojas terminales, — alargándose brevemente en la fructificación. Flores pequeñas, hermafroditas o por aborto dioicas, sésiles, 21 (1): Enero - Junio, 2014 brácteas generalmente imbricadas, a veces decusadas o seriadas, plegado-carenadas, libres o connatas en la base o acrescentes, membranáceas y corolinas. Cáliz breve, membranáceo, generalmente tubuloso- compreso, 2-4 dentado, bipartido o formado por dos hojitas diminutas, inconspícuas, que persisten muchas veces en el fruto, a veces 2 carenado, con las carenas por lo general largamente hirsutas. Corola zigomorfa, hipocrateriforme, limbo oblícuo, bilabiado, el labio anterior 3-lobado con el lóbulo medio mayor, el posterior reducido, entero o emarginado a bilobado, tubo breve cilíndrico o ligeramente ampliado hacia la garganta. Estambres 4, didínamos, insertos en la mitad distal del tubo corolino, inclusos o ligeramente exertos, sin apéndices glandulares; anteras ovoides, tecas paralelas (abortadas o ausentes en las flores femeninas de especies dioicas). Ovario ovoide globoso, monocarpelar, 2 locular; estilo breve, incluso; estigma capitado, oblícuo o lateral. Esquizocarpo incluido en el cáliz persistente, dividiéndose en 2 mericarpos. Distribución y ecología En el mundo cuenta con 200 especies (Mabberley, 2008), para el Perú se reportan 14, en el Dpto La Libertad habitan 4 especies (Brako €: Zarucchi 1993; Ulloa, Zarucchi éz León. 2004). 6. Aloysia Paláu (Fig. 6). Parte Práct. Bot. 1: 767-771, 1784. Material examinado PERÚ, Dpto. La Libertad, Prov. Patáz, Distrito Patáz, Anexo Zarumilla, terreno de sembrío, 2650 m, 29-VII-2009, R. Rivera, S. Leiva €s F. Mejía 115 (HUT, HAO) Arbusto ampliamente 15-2 mm alto, Tallos aromático, ramificado. viejos Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú A A A 104 Bud NO eu) [raro NI 0 Y ¡ Fig. 6. Aloysia triphylla (L'Hér.) Britton. Gineceo; B. Cáliz; C. Bráctea; D. Antera en vista ventral; E. Antera en vista lateral; F. Rama florífera; G. Antera en vista dorsal; H. Corola desplegada; I. Corola cerrada. R. Rivera, S. Leiva, 6 F. Mejía, 005 (Dibujado por R. Rivera 005, HAO) ARNALDOA 21 (1): Enero - Junio 2014 | 57 Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú marrón-claro, ligeramente cuadrados, agrietamientos longitudinales, compactos, sin lenticelas, glabros, 2-2,5 cm diámetro en la base; tallos jóvenes, morado-oscuro en la superficie adaxial, morado-claro en la superficie abaxial, ligeramente cuadrados, glabrescente, algunos pelos simples transparentes dispersos. Hojas opuestas o ternadas; peciolo verde-oscuro, rollizo, glabrescente, pelos simples unicelulares densidad superficie adaxial, 2-3 mm longitud; láminas transparentes mayor en la lanceoladas, ligeramente escabrosas, verde- oscuro la superficie adaxial, verde-claro la superficie abaxial, agudas en el ápice, atenuadas en la base, enteras en los bordes, glabrescentes, rodeada por algunos pelos simples transparentes, (17-) 59-64 mm de largo por 17-28 mm de ancho; Flores 12-16 dispuestas terminales O espigas paniculadas axilares; pedúnculos ligeramente cuatro angulados, morado- oscuro en la superficie adaxial, verde en la superficie abaxial, glabrescente, rodeado por algunos pelos simples transparentes, 43-45 mm de longitud. Bráctea ligeramente triangular, verde-oscuro, glabrescente, rodeada por pelos simples unicelulares papilados transparentes no glandulosos en la superficie adaxial, glabrescente en la superficie abaxial, 8,8-9,2 mm largo por 0,8-1 mm ancho. Cáliz tubular, verde- claro, verde-oscuro preferentemente las nervaduras, pubescente, rodeado por una densa cobertura de pelos simples unicelulares papilados transparentes no glandulosos externamente, menor densidad interiormente, 2-2,2 mm diámetro en la antésis; 4-lobulado, lóbulos ligeramente borde rodeado por una densa triangulares, verde, ciliado, glabrescente, cobertura de pelos simples unicelulares papilados transparentes no glandulosos densidad externamente, menor 21 (1): Enero - Junio, 2014 interiormente, 1-1,2mm largo por0,6-0,8mm ancho; tubo 3-3,2 mm largo por 1,3-1,5 mm diámetro. Corola tubular, hipocrateriforme, asimétrica, suculenta, lila-blanco externamente, lila-claro internamente, pubescente, 1/3 distal rodeado por una densa cobertura de pelos simples unicelulares papilados transparentes no glandulosos externamente, 1/3 distal rodeado por pelos simples unicelulares papilados transparentes glandulosos y no glanduloso interiormente, 5-7 mm diámetro en la antésis; 4-lobulado, lóbulos oblongos, lóbulo inferior bífido, reflexos, blancos, glabrescentes, rodeados por pelos simples unicelulares papilados transparentes no glandulosos externamente, menor densidad interiormente, 2,4-2,6 mm largo por 2,4-2,6 mm ancho; tubo 3-4 mm largo por 1,5-1,7 mm diámetro. Estambres 4, didínamos , insertos en la mitad distal del tubo corolino, inclusos o los superiores ligeramente exertos; superiores, filamento estaminal filiforme ampliándose ligeramente hacia el área basal, blanco, área libre, glabro, 0,2-0,3 mm longitud; área soldada, glabrescente, rodeados por pelos simples unicelulares glandulosos y no glandulosos, 3,7-38 mm longitud; papilados transparentes inferiores, filamentos estaminales filiformes ampliándose ligeramente hacia el área basal, blancos, área libre, glabros, 0,2-0,3 mm longitud; área soldada, glabrescente, rodeada por pelos simples unicelulares papilados transparentes glandulosos y no glandulosos, 2,4-2,5 mm longitud; anteras oblongas, basifijas, inclusas, las superiores ligeramente exertas, amarillas, 1,2-14 mm de largo por 0,7-0,9 mm de diámetro. Ovario ligeramente oblongo, verde-claro, rodeado de pelos simples unicelulares papilados transparentes no glandulosos en el 1/3 distal, 0,3-0,4 mm largo por 0,2-0,3 mm diámetro; estilo incluso, morado, filiforme Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú Fig. 7. Pitraea cuneato-ovata (Cav.) Caro,. A. Corola cerrada; B. Corola desplegada; C. Rama florífera; D. Gineceo. (Dibujado por R. Rivera 006, HAO). ARNALDOA 21 (1): Enero - Junio 2014 | 59 Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú ampliándose hacia el área distal, 1,5-1,6 mm longitud; estigma bífido, morado, 0,7- 0,8 mm de diámetro. Esquizocarpo, rodeado por el cáliz persistente, dividiéndose en 2 mericarpios a la madurez. Material adicional examinado PERÚ, Dpto. La Libertad, Prov. Otuzco, Distrito Otuzco, huerto urbano, 2600 m, 6-V-1994, J. Zavaleta 018 (HUT-N* 12298). Distribución y ecología distribuida Sudamérica. Comprende alrededor de 37 especies (Troncoso, 1974; Mabberley, 2008). En Perú habitan 16 especies, dos de ellas se Principalmente en registran para el Dpto. La Libertad (Brako € Zarucchi 1993; Ulloa, Zarucchi € León. 2003), se distribuye entre los 2200-2630 m de elevación en la Costa y Sierra (Mostacero et al., 2002). 7. Pitraea Turcz (Fig. 7) Bull. Soc. Imp. Naturalistes Moscou 35 (2): 328, 1863. Material examinado PERÚ, Dpto. La Libertad, Prov. Trujillo, campos de Mansiche, terreno arcilloso, cerca de una acequia, 11-XI1-1947, C. A. Ridoutt. Det. Por Sagástegui A. 1988. (HUT-N" 0233). Hierba, 0,10-0,65 m alto, ampliamente Tallos longitudinales, ramificada. con agrietamientos cuadrangulares, verdes. Hojas opuestas; peciolo, 15-20 mm, láminas ovadas o triangulares, agudas en el ápice, cuneadas en la base, glabras en ambas superficies, 55-753 mm largo por 22-25 mm ancho. Flores dispuestas en racimos espiciformes terminales; pedicelos 1-2,5 mm de longitud. Brácteas lanceoladas, 5-5,3 mm longitud. Cáliz cilíindrico-tubuloso, 2-3 mm diámetro en la antésis; 5-lobulado, lóbulo ligeramente triangular, 8-12 mm de largo. Corola hipocrateriforme, lila o blanca, 60 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 5-lóbulado, lóbulos ligeramente desiguales; tubo corolino 10-12 mm de longitud. Estambres 4, didínamos, estaminodio presente o ausente, inclusos, insertos en la mitad distal del tubo corolino; filamentos breves; anteras sub cordadas, basifijas, tecas sub paralelas, conectivo de las anteras superiores, gruesas. Ovario oblongo, glabro; estilo filiforme, incluso, recurvo en el ápice; estigma recurvo, papiloso. Esquizocarpo- sub carnoso, presenta un mesocarpio delgado. Distribución y ecología Género con 20 especies, que se distribuye en América, África e Indias Orientales. En América templada: Perú, Bolivia y Argentina. Habita en regiones secas y áridas. Género monotípico, representado por una sola especie: P. cuneato-ovata (Cav.) Caro, (Mabberley, 2008). En Perú se reporta la única especie y que vive en La Libertad (Brako €: Zarucchi 1993). 8. Citharexylum L. (Fig. 8) Sp. Pl. 2: 625, 1753 (1 mayo 1753) Material examinado PERÚ, Dpto. La Libertad, Prov. Otuzco. José Balta (cerca de Agallpampa). Borde de carretera, 2250 m, 7" 35' 55,8” S78* 04 1,5”0; 04-IX-2009, R. Rivera, S. Leiva és F. Mejía 114 (HUT, HAO). Arbusto 22200. ampliamente ramificado, espinas axilares, aromático alto, braquiblastos. Tallos viejos marrón-claro, ligeramente cuadrados, con agrietamientos longitudinales, compactos, rodeados por lenticelas, glabros, 1,5-2 cm de diámetro en la base; tallos jóvenes, marrón-claro, ligeramente cuadrados, rodeados por lenticelas, glabros. Hojas simples opuestas, peciolo verde, rollizos, 4-4,2 mm longitud; coriáceas, verde- láminas espatuladas, Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú yo PARAS ' TA ENS Y RA LEÓN NS E e $ > — Fig. 8. Citharexylum flexuosum (Ruiz £Pav.) D. Don. A. Gineceo; B. Cáliz; C. Antera en vista ventral; D. Antera en vista lateral; E. Rama florífera; F. Antera en vista dorsal; G. Corola desplegada; H. Corola cerrada. R. Rivera, S. Leiva éz F. Mejía 006 (Dibujado por R. Rivera 007, HAO). ARNALDOA 21 (1): Enero - Junio 2014 | 61 Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú oscuro en la superficie adaxial, verde-claro en la superficie abaxial, redondeadas o truncadas en el ápice, cuneadas en la base, entero o dentadas en el tercio distal en los bordes, glabrescentes, pelos simples densidad superficie adaxial, 2,6-2,8 cm largo por 0,9-1 transparentes mayor en la mm ancho. Flores pequeñas 9-12 dispuestas en racimos axilares; pedúnculo, verde, ligeramente cuadrangular, glabrescente, 3-35 mm longitud; pedicelo verde, glabrescente, 0,25-0,3 mm de longitud. Sin brácteas. Cáliz tubular-campanulado, verde-oscuro externamente, verde-claro interiormente, pubescente, rodeado por pelos simples unicelulares papilados transparentes glandulosos y no glandulosos externamente, glabrescente, rodeado por pelos simples unicelulares papilados 1,8-2 mm diámetro en la antésis; ligeramente 5-lobulado, por pelos simples unicelulares papilados lóbulos verdes, rodeados glandulosos y no glandulosos transparentes externamente, glabrescentes, rodeados por pelos simples unicelulares papilados no glandulosos transparentes interiormente, 0,6-0,8 mm largo por 0,5-0,7 mm ancho; tubo 3,5-3,8 mm largo por 1,8-1,9 mm diámetro. Corola tubular, hipocrateriforme, suculenta, amarillo-verdosa, externa e interiormente, glabra externamente, 1/2 distal del tubo corolino pubescente, rodeado por pelos simples unicelulares papilados no glandulosos transparentes interiormente, 5,1-5,3 mm diámetro en la antésis; 5- lobulado, lóbulos oblongos, revolutos en los bordes, amarillo-claro externamente, amarillo-oscuro interiormente, glabro externamente, glabrescente la Y basal, rodeado por pelos simple unicelulares papilados no glandulosos interiormente al igual que en el borde, 2,7-3 mm largo por 2-2,1 mm ancho; tubo 6-6,3 mm largo por 21 (1): Enero - Junio, 2014 1-1,2 mm diámetro. Estambres 4, a veces 5 Ó 4, fértiles y un estaminodio, generalmente insertos casi a la misma altura o por arriba de la mitad distal del tubo corolino, ligeramente exertos; filamentos estaminales filiformes ampliándose ligeramente hacia el área basal, blanco; área libre, glabra, 0,4-0,6 mm; área soldada, glabrescente, rodeada por pelos simples unicelulares papilados glandulosos transparentes, 1,8- 19 mm de longitud; anteras oblongas, fijas dorsalmente, amarillas, sin apéndices, 1,2-1,5 mm largo por 0,3-0,5 mm diámetro. Ovario ovado, verde-claro, 0,3-0,4 mm largo por 0,2-0,3 mm diámetro; estilo terminal, incluso, morado, filiforme ampliándose hacia el área distal, 1,3-1,5 mm longitud; estigma, morado, capitado, ligeramente bífido, 0,6-0,8 mm diámetro. Drupa con mesocarpio carnoso con 2 pirenas óseas, 2- loculares y 2- seminadas. Material adicional examinado PERÚ, Dpto. La Libertad, Prov. Otuzco. José Balta (ruta hacia Agallpampa) 2300 m, 30-X-1993, S. Leiva € P. Lezama 944. Det N. Hensold, 2000 (HU'T-N* 28161) Distribución y ecología América tropical y subtropical, desde el Sur de Estados Unidos y México, Centro América e Indias Occidentales, hasta Argentina Central y Uruguay. Comprende unas 70 especies (Troncoso 1974; Mabberley, 2008). En el Perú, se habitan 24 especies, para La Libertad se registran 6 especies. (Brako €: Zarucchi 1993; Ulloa, Zarucchi éz León, 2003). Nombre vulgar: “chama”, “estrella”, “turucasa”, “huacrampi” (Mostacero, F. Mejía €£ Gamarra, 2002). 9. Duranta L. (Fig. 9 y 10 D) Sp. Pl. 2: 637, 1753. (1 de mayo 1753). Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú A ÁS TAPIA Ps YU Ñ SINN k EN MA E / udsfís Y, Y SN 08, y PUNTO ls PILA AY) , ENS paa a a a Peor Ep CN a A res > Fig. 9. Duranta L. A. Gineceo; B. Cáliz; C. Antera en vista lateral; D. Antera en vista ventral; E. Cáliz desplegado; F. Rama florífera; G. Corola desplegada; H. Antera en vista dorsal; 1. Fruto; J. Corola cerrada. R. Rivera S. Leiva, € F. Mejía 007 (Dibujado por R. Rivera 008, HAO). ARNALDOA 21 (1): Enero - Junio 2014 | 63 Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú Material examinado PERÚ, Dpto. La Libertad, Prov. Santiago de Chuco, alrededores de Cachicadán, 2800 m. de elevación; 24-IV-2009 R. Rivera, S. Leiva €s F. Mejía 116 (HUT, HAO). Arbusto 2-3 m alto, ramificado, conespinas axilares. Tallos viejos ampliamente marrón-claro, ligeramente cuadrados, con agrietamientos longitudinales, compactos, rodeados por lenticelas, glabros, 2-2,5 cm de diámetro en la base; tallos jóvenes, marrón-claro, ligeramente cuadrados, rodeados por lenticelas, glabros. Hojas simples opuestas; peciolo rollizo, verde, 3-5 mm longitud; láminas elípticas, coriáceas, verde-oscuro en la superficie adaxial, verde-claro en la superficie abaxial, agudas en el ápice, cuneadas en la base, enteras en los bordes, glabras en ambas superficies, 3,5-4,5 cm largo por 1,8-2 mm ancho. Flores 20-31 dispuestas en racimos axilares o terminales, pequeñas; pedúnculo verde- oscuro, ligeramente cuadrangular, glabro, 12-14 mm longitud; pedicelo, rollizo, verde- oscuro, glabro, 1-1,2 mm de longitud. Sin brácteas. Cáliz tubular, marrón-oscuro externamente, marrón-claro interiormente, glabrescente, rodeado por pelos simples unicelulares papilados glandulosos y no glandulosos transparentes externamente, pubescente, rodeado por pelos simples unicelulares papilados no glandulosos transparentes interiormente, 4,7-4,8 mm diámetro en la antésis; 5-lobulado, lóbulos ligeramente triangulares, marrón-oscuro externamente, marrón-claro interiormente, pubescentes, rodeados por pelos simples unicelulares papilados glandulosos y no glandulosos transparentes externamente, glabrescentes, rodeados por pelos simples unicelulares papilados no glandulosos 0,91 mm largo por 1-1,2 mm ancho; tubo 10-10,2 transparentes interiormente, mm largo por 3,6-3,7 mm diámetro. Corola 64 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 tubular, hipocrateriforme, levemente curvada, suculenta, cremoso-claro externa e interiormente, suculenta, pubescente la 1/2 distal, rodeada por pelos simples unicelulares papilados glandulosos y no glandulosos transparentes externamente, pubescente el 1/3 distal, rodeado por pelos simples unicelulares papilados no 5,6-5,7 mm de diámetro en la antésis; 5-lobulado, glandulosos transparentes, lóbulos ligeramente cuadrangulares, blanco-cremosos externa e interiormente, glabrescentes, rodeados por pelos simples unicelulares papilados no glandulosos transparentes externa e interiormente; lóbulo superior, ligeramente cuadrangular, 4-42 mm largo por 2,3-25 mm ancho; lóbulos laterales, ligeramente rectangulares, 4,5-4,8 mm largo por 1,9-2,11 mm ancho; lóbulo inferior, ligeramente oblongo, 4,3- 4,6 mm de largo por 2-2,3 mm ancho; tubo 13-14 mm largo por 0,9-1 mm diámetro. Estambres 4, didínamos, un estaminodio, generalmente insertos en la mitad del tubo corolino, inclusos; filamentos estaminales filiformes; superiores, área libre 0,2-0,3 mm de longitud; área soldada 5-5,2 mm de longitud; inferiores, área libre 0,2-0,3 mm de longitud; área soldada 4,3-4,5 mm de longitud; anteras alargadas, dorsifijas, verdes, sin apéndices, 1,1-1,2 mm de largo por 0,8-1 mm de diámetro. Ovario, oblongo, 1,11-1,3 mm largo por 0-1-1,1 mm diámetro; estilo, incluso, 3,2-3,5 mm longitud; , estigma, capitado, 0,6- 0,8 mm diámetro. Drupáceo, con mesocarpio carnoso, pirenas óseas 4 (-5), 2-loculares y 2-seminadas. Material adicional examinado PERÚ, Dpto. La Libertad, Prov. Otuzco, Distrito Santiago de Chuco, en pendiente, 3200 m, 26-V-1958, A. López € A. Sagúástegut S.N. (HUT-N* 2820) Distribución y ecología Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú América tropical y subtropical, se extiende desde México e Indias Occidentales hasta Bolivia N y NE de la Argentina. Género con 17 especies para el mundo, (Mabberley, 2008). En el Perú habitan 15 especies, para La Libertad se registran 3 especies (Brako €: Zarucchi, 1993). Agradecimientos Mi gratitud al Prof. Mg. Segundo Leiva González, de la Universidad Orrego de Perú, por brindarme la oportunidad de Privada Antenor Trujillo, conocer la Botánica y por el asesoramiento desinteresado de este valioso trabajo. Mi reconocimiento al Dr. Freddy Mejía Coico de la Universidad Nacional de Trujillo, Perú, por los aportes realizados para la culminación de esta investigación. Literatura Citada Barriga, G. 1992. Flora Medicinal de Colombia Tomo II. 2ed. Editorial Tercer Mundo, Bogotá, Colombia. 495 pp. Brako, L. €: J. Zarucchi. 1993. Catálogo de las Angiospermas y Gimnospermas del Perú. Monogr. Sys. Bot. Missouri Bot. Garden. Vol 45. Briquet, J. 1895. Verbenaceae. pp. 132- 182, en Engler, A. € K. Prantl (eds.). Nat. Pflanzenfam. IV, 3a. Wilhelm Engelmann: Leipzig. Erdtman, G. 1945. Pollen morphology and plant taxonomy. IV. Labiatae, Verbenaceae and Avicemniaceae. Svensk Bot. Tidsk. 39 (3): 279-285. Fester, G.; E. Martinuzzi; J. Retamar € A. Ricciardi. 1961. Aceites esenciales de la República Argentina. Academia Nacional de Ciencias, Córdoba. 113 pp. Gasquet, M.; E. Delmas; D. Timón; A. Keita; M. Guindo; N. Koita; D. Diallo € O. Doumbo. 1993 Evaluation in vitro and in vivo of a traditional antimalarial, Malarial-5. Fitoterapia, Milano, v. 64, p 423-426. Gupta, M. 1995. 270 Plantas medicinales iberoamericanas. Programa Iberoamericano de Ciencias y Tecnología para el Desarrollo, CYTEC, Colombia. 576- 558. Judd, W. et al. 2002. Plant systematics: a phylogenetic approach. 2. ed. Siauer Associates, 419 p. Junell, S. 1934. Zur Gynáceummorphologie and Systematic der Verbenaceae und Labiaten Symb. Bot. Upsal. 4,217 pp. Upsala. Klueger, P.; M. Daros; R. Silva; M. Farias; T. De Lima. 1997. Neuropharma- cological evaluation of crude and semipurified extracts from Lippia alba Will N. E. Br. (Verbenaceae). /n: International Joint Symposium: Chemistry, Biological and Pharmacological Properties of Medicinal Plants from the America. Poster Session, 2: López, A.; H. Rojas; M. Jiménez. 1979. Plants extracts withcytostatic properties growing in Cuba. Revista Cubana de Medicina Tropical, La Habana, v. 31, n. 2, p. 105-111. Mabberley. D. 2008. Plant-book. A portable dictionary of plants, their classification and uses. Third edition. Macbride, J. F. 1960. Verbenaceae. Pp. 609-721. Flora of Peru. Field Mus. Nat. Hist., Bot. ser. 13 (5/2). Moldenke, H. 1959. Resumen of the Verbenaceae, Avicenniaceae, Stilbaceae, Symphoremaceae and Eriocaulaceae Of the world as to valid taxa, geographic distribution and synonymy, 425 pp. Mostacero, J.; F. Mejia éz T. Gamarra. 2002. Taxonomía de las fanerógamas útiles 21 (1): Enero - Junio 2014 | 65 Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú del Perú. Concytec. Trujillo- Perú. Prakash, A. € J. Rao. 1997. Botanical pesticides entomology, Central Rice Research Institute. CRC. 461pp. in agriculture. Division of Ratera, E. £ M. Ratera. 1980. Plantas de la flora argentina empleadas en medicina popular: Hemisferio Sur, Buenos Aires. 189 Pp. Sagástegui, A. éz S. Leiva. 1993. Flora invasora de los cultivos del Perú. Concytec. Trujillo-Perú. Primera Edición. Sanders, R. 2001.The Verbenaceae in Southeastern United States genera of Harvard Papers in Botany, Harvard, v. 5, n. 2, p. 303-358. Slowing Barillas, K. V. 1992. Estudio de la Actividad Antiinflamatoria de Diversas Especies de la Flora de Guatemala. Faculdad de farmacia. Memoria Doctoral. Universidad Complutense de Madrid, Madrid. Sousa, S. M. 2006. Bandeamiento Cromosómico en Lippia alba. Stashenko, E. E.; B. E. Jaramillo €: J. R. Martínez. 2003. Comparación de la composición química y la actividad antioxidante ín vitro de los metabolitos secundarios volátiles de plantas de la familia Verbenaceae. Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales, Bogotá, v. 27, n. 105, p. 579-597. Thiers, B. 2013. actualizada]. Index Herbariorum: A global [continuamente directory of public herbaria and associated staff. New York Botanical Garden's Virtual Herbarium. http://sweetgum.nybg.org/ih/ (accedido en septiembre de 2013). Troncoso, N. S. 1974. Los Géneros de 21 (1): Enero - Junio, 2014 Verbenáceas de Sudamérica Extratropical. Darwiniana 18: 295-412. Ulloa, C.; J. Zarucchi € B. León. 2004. Diez años de adiciones a la flora del Perú: 1993-2003. Arnaldoa Edición Especial Nov. 2004: 1-242. Rivera: Géneros de Verbenaceae en el Departamento La Libertad, Perú ANEXO Fig. 10. A-B. Rama florífera e inflorescencia de Verbena cuneifolia Ruiz €: Pav. C. Rama florífera de Glandularia Gmel. D. Inflorescencia de Citharexylum flexuosum (Ruiz £Pav.) D. Don, E. Inflorescencia Lantana camara L. (Fotografías S. Leiva, HAO). 21 (1): Enero - Junio 2014 | 67 21 (1): Enero - Junio, 2014 Arnaldoa 21 (1): 69 - 80, 2014 ISSN: 1815-8242 Histología de Macrocystis pyrifera (Linnaeus) C. Agardh 1820 (Phaeophyceae: Laminariales) en la costa centro del Perú Histology of Macrocystis pyrifera (Linnaeus) C. Agardh 1820 (Phaeophyceae: Laminariales) in the central coast of Peru Erika ali Po . Secretaria Naciónal de Edicación superior Glencia, Tecnología e Fimovación SENÉSOYT- Universidad Estatal Península de Santa Elena. Ecuador. = eraoglavariacOhotmal o com. ' x Mario Benavente P. Herbario Saf Marcos (US AMseo de Historia Natural dela Universidad Nacional Mayor de San Marcos. : ima..Perú Ud Y e - * mibenaventepcSgmail.com. Patricia GiFKodaka Facultad de Pesquería. Universidad Nacional Agraria La Molina UNALM. Perú. pgilkodaka(olamolina.edu.pe. ARNALDOA 21 (1): Enero - Junio 2014 | 69 Salavarría ef al: Histología de Macrocystis pyrifera (Phaeophyceae) en la costa centro del Perú Resumen Se presenta la Histología de Macrocystis pyrifera (Linnaeus) C. Agardh 1820 (Phaeophyceae: Laminariales) en la costa centro del Perú. Una de las algas pardas más extensamente distribuidas en el mundo es Macrocystis pyrifera. Por las características morfológicas de los aerocistos, frondas y rizoide, se identificaron 4 ecomorfos: Macrocystis pyrifera, Macrocystis integrifolia, Macrocystis leavis y Macrocystis angustifolia. Actualmente, análisis moleculares determinaron una sola especie la más antigua: M. pyrifera. Este estudio tiene como objetivo presentar los resultados de un análisis histológico realizado en los ecomorfos de M. pyrifera y M. integrifolia de muestras colectadas en el centro del Perú. Se obtuvo muestras durante el mes de abril del 2012 en el Departamento de Ica, Distrito de Marcona. Fueron colectados porciones del rizoide, cauloide, filoide y neumatocistos de individuos juveniles, se hicieron cortes de aproximadamente 0,2 mm de muestras en fresco de los poor colectadas en los ecomorfos para posteriormente realizar observaciones al microscopio Óptico | lar. La estructura histológica de M. pyrifera y M. integrifolia son similares, los resultados obtenidos fueron comparados con dba os histológicos realizados de especies taxonómicamente cercanas a M. pyrifera. Palabras clave: Histología, Macrocystis pyrifera, costa centro del Perú. Abstract Present the Histology of Macrocystis pyrifera (Linnaeus) C. Agardh 1820 (Phaeophyceae: Laminariales) in the central coast of Perú. Macrocystis pyrifera is one of the most widely distributed brown algae in the world. Based on the morphological features of holdfast (rhizoid), fronds and aerocysts four ecomorphs namely Macrocystis pyrifera, Macrocystis integrifolia, Macrocystis leavis and Macrocystis angustifolia was identified. Recently, molecular analyses determined that the species M. pyrifera is the oldest one. In this study the histological analysis of ecomorphs M. pyrifera and M. integrifolia collected from central Peru is presented. Samples were obtained during the month of April 2012 from the Department of Ica, Marcona District. Lots of young rhizoids, cauloide, fronds, and aerocysts was collected, cut into pieces of about 0,2 mm and later observed in optical microscope. It was found that the histological structure of M. pyrifera and M. integrifolia are similar and the results obtained were com pared with taxonomically close species M. pyrifera. Key Words: Histology, Macrocystis pyrifera, central coast of Peru. Introdución semejan a hojas, que llegan a medir 70 cm de largo por 30 cm de ancho. En la parte basal Las grandes algas pardas o kelps se od : del filoide presentan a manera de peciolo caracterizan porque su cuerpo vegetativo ; j , . . s de una hoja un aerocistos o neumatocistos se encuentra diferenciado y es análogo a ad . , basal de forma piriforme llenas de aire las plantas superiores, en su morfología o ER que permiten que la gran masa de alga se distinguen claramente un rizoide en ne flote en la columna de agua. Los filoides o forma de disco o grampon que alcanza ds o frondas cercanas al disco basal de fijación hasta 40 cm de diámetro y 35 cm de altura ES l ES a 7 se dividen sin formar aerocistos de flotación que cumple la función de fijar el alga a un j EEN qa ] ni alargar el estípite; sin embargo, en su sustrato. Del rizoide surgen uno o varios o Ñ Ñ Ñ A Ñ superficie se formarán manchones extensos estipes o cauloides cilíndricos, flexibles, de E O O de esporangios. Las esporas darán origen a ramificación dicotómica, parecidos a tallos . 20 de ñ a talos microscópicos con sexos separados: los que dan origen a muchos filoides o frondas ae femeninos con un oogonio grande inmóvil generalmente aplanadas, lanceoladas, j y los masculinos con espermatozoides rugosas, con márgenes dentados que 70 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 Salavarría et al: Histología de Macroc ystiS py (Phaeophyceae) en la costa centro del Perú flagelados pequeños. Un organismo é González, 1994) y se adhiere fuertemente maduro puede tener 40 o más frondas en alos fondos rocosos mediante sus rizoides diferentes estados de crecimiento (juveniles, O discos de fijación formando extensas adultas, senescentes). Macrocystises de color praderas una vez que las frondas alcanzan café verdoso o amarillo parduzco. La planta la superficie. (Fig. 1). completa sobrepasa los 30 m (Hauenstein 1. Organismos adultos en estado natural: A. Macrocystis pyrifera y B. M. integrifolia. San Juan de Marcona y Bahía aa Ica. Una de las algas pardas más contínuos paralelos a la costa hasta 100 extensamente distribuidas en el mundo es metros, habitando en áreas protegidas y M. pyrifera Agardh (1820) y forma densos semi protegidas del oleaje. bosques tanto en el hemisferio norte como en L : as especies se caracterizan por formar el sur, comparables a los bosques terrestres. demos bésques ed bailarines (Cañaia abad 1979; Palacios £ Mancilla, 2003), crecen fijas al sustrato rocoso mediante un grampon Por las características morfológicas de los aerocistos, frondas y rizoide, se identificaron 4 ecomorfos: M. pyrifera, M. integrifolia, M. SÓ E o disco de fijación formando extensos leavis y M. angustifolia. Actualmente, análisis cinturones costeros en el sur de Argentina y Chile (Barrales éz Lobban, 1975; Santelices $ Ojeda, 1984; Dayton, 1985) constituyendo la mayor reserva mundial de alginatos, moleculares determinaron una sola especie: M. pyrifera (Demes et al., 2009; Macaya € Zuccarello, 2010; Astorga et al., 2012), la más antigua. M. pyrifera posee una distribución . o proporcionando importancia económica. que ha sido reportada principalmente Desde el punto de vista ecológico, Macrocystis puede dar soporte a 40 o más de 275 especies en común (Beckley éz Branch, 1992; Vásquez et al., 2001; Graham, 2004). Evidenciando su rol ecológico en los a lo largo de las costas del Pacífico de América del Norte (México, Norte de Baja California y Alaska) y del Sur (Perú hasta Cabo de Hornos) (Alveal, 1995), Sudáfrica, Australia, Nueva Zelanda (Druehl, 2000); en Chile se distribuye desde Tocopilla (285) (Levring, 1960) hasta el Cabo de Estudios anatómicos de otras Hornos (555) (Ramírez éz Santelices, 1991, Laminariales como Lessonia nigrescens, Hoffmann éz Santelices, 1997; Buschmannet en uno de sus cauloides muestran tres al., 2004), sus poblaciones forman cordones Zonas internas diferentes: a) meristodermo ecosistemas donde habita. A, 21 (1): Enero - Junio 2014 | 71 Salavarría ef al: Histología de Macrocystis pyrifera (Phaeophyceae) en la costa centro del Perú compuesto por pocas capas de células pequeñas, b) corteza con células parenquimatosas y poliédricas y c) médula compuesta por filamentos ramificados A ] 1 J 4 o S 1,1 ls: Los filamentos de la médula son de diversos tipos, entre ellos se han identificado hifas que se originan generalmente en sentido transversal y filamentos trompetas; estos últimos dispuestos en dirección longitudinal, ramificados y de mayor tamaño que las hifas (Scrosati, 1993). Acosta, 1976 realizó un estudio histológico en Macrocystis pyrifera y determinó en un corte transversal del rizoide algunas similitudes con los caracteres de Lessonia nigrescens; encontró que las células de la zona cortical son alargadas de aspecto rectangular. La presencia de gránulos pardos amarillentos era muy abundante en las primeras capas; observó inclusive en la primera hilera o células fotosintéticas y desde la primera hasta la tercera capa de células corticales. En la vista microscópica no observó la diferenciación de una zona medular. En un corte transversal del cauloide notó cuatro hileras de células meristodérmicas pequeñas de forma cúbica y simetría radial, con abundante cromatóforos pequeños, externamente protegidos por cutículas. Hacia la zona interna observó las células de la corteza externa de mayor tamaño y de contorno poligonal. Entre éstas se ubicaban en forma esparcida los canales o cavernas mucilaginosas de tamaño pequeño (Fig. 2) En la zona centro y sur del Perú los kelps se encuentran representados por la familia Lessoniaceae y Laminariaceae. Evaluación de la biomasa de poblaciones y distribución vertical de Lessonia trabeculata fuerealizada en llo Perú. (Benavente € Aguirre, 1991) En la actualidad, se evalúa la distribución, concentración estado de las poblaciones y las pesquerías de las principales especies 21 (1): Enero - Junio, 2014 de macroalgas pardas de esta zona. (Zavala, 2011). Estos estudios constituyen estrategias para la conservación de los kelp por su importancia ecológica debido a que otros recursos hidrobiológicos cohabitan en ellas, por su importancia ambiental a causa de su capacidad de absorción frente a metales pesados y por su importancia económica porque son el sustento de las comunidades costeras del centro, sur del Perú y norte de Chile. Este estudio tiene como objetivo presentar los resultados de un análisis histológico realizado en los ecomorfos de M. pyrifera y M. integrifolia de muestras colectadas en el centro del Perú. Estos resultados fueron comparados con trabajos histológicos realizados de especies taxonómicamente cercanas a Macrocystis pyrifera. Material y métodos Colecta y tratamiento de las muestras.- Como parte de las colectas no sistemáticas para una tesis de maestría en Ecología Aplicada de la Universidad Nacional Agraria La Molina UNALM, se obtuvo muestras durante el mes de abril del 2012 en el Departamento de Ica, Distrito de Marcona, en tres estaciones: Una en la zona intermareal ubicadas en Punta San Juanito (S 15%14'43.2” W 75%15'31.9) y dos estaciones submareales en Bahía San Nicolás (S 15%13'58.1” W 75%13'18.5””) y Los Bancos (S 15%14'59.0” W 75%13'18.4”). Las muestras de Macrocystis se identificaron de acuerdo a sus características morfológicas principalmente sobre la base del rizoide y frondas. Fueron colectados porciones del rizoide, cauloide, filoide y neumatocistos de individuos juveniles de los ecomorfos de M. pyrifera y M. integrifolia. Luego de su recolección, las muestras se limpiaron con agua de mar eliminando epífitas o Salavarría ef al: Histología de Macrocystis pyrifera (Phaeophyceae) en la costa centro del Perú epibiontes, se preservaron en agua de mar y almacenó en hielo hasta su traslado al Laboratorio del herbario en el Museo Natural de la Universidad Mayor de San Marcos, se hicieron cortes de Historia de aproximadamente 0,2 mm de muestras en fresco de los porciones colectadas en los ecomorfos, para posteriormente realizar observaciones al microscopio óptico binocular marca OHAUS. Resultados En un corte transversal del cauloide de Macrocystis integrifolia, se pudo reconocer cortical interna formada una zona por células de tipo parenquimáticas, cumpliendo la función de un parénquima de reserva, de forma poliédricas sin un patrón de distribución ordenado (Fig. 3a); otra zona, la medular que presentó una placa cribosa formada por tubos cribosos que se entrecruzan y se observaron más densos en el centro del corte debido a la abundante matriz intercelular. Al realizar un corte transversal del neumatocisto O aerocisto de M. integrifolia, se observó capas de células de mayor tamaño de forma poliédricas formando la zona cortical externa, así como la presencia de cavidades mucilaginosas a manera de poros dispuestos al azar. No se observó una zona medular (Fig. 3b). Al observar un corte transversal del filoide en Macrocystis pyrifera, se reconoció una parte externa, el meristodermo, constituido por capas delgadas de células pequeñas y con mayor número de pigmentos o gránulos café-amarillentos en abundantes cromatóforos; además, de una pared celular gruesa (Fig. 3c); a continuación se observó capas de células de mayor tamaño de forma rectangular y poligonales sin una disposición definida, éstas células presentaban paredes celulares más gruesas que las células de la capa del meristodermo y formaban la zona cortical o células corticales; seguido aparece la zona medular de menor grosor y conformada por estructuras filamentosas que proporcionan una apariencia entrelazada y compacta, son las hifas, formadas de las células corticales internas, éstas estructuras filamentosas comúnmente conocidas como otros filamentos son los llamados filamentos trompetas de mayor tamaño que las hifas, y constituyen áreas cribosas (Fig. 3d). Las observaciones con mayor aumento, 100x y 400x, permitieron identificar claramente la zona medular en un corte transversal del cauloide de Macrocystis integrifolia (Fig. 4a); las cavidades mucilaginosas en un corte transversal de un aerocisto de M. integrifolia (Fig. 4b) y tres zonas definidas: meristemo (Fig. 4c), zonas corticales y medular (Fig. 4d) en los cortes transversales de filoides en muestras de tejido de Macrocystis pyrifera. 21 (1): Enero - Junio 2014 | 713 dá Hi lnnía da 17 : 77 /D| , y 1 APD Salavarría et tolog lis (Phacophyceae) t t pEBA - - Mi y ri a PA ol codái ay DRÍALS EY $ a ¿a $e A E A : ¿PE E Er] EA, eE! a EA Fig. 2. Histología de Macrocystis pyrifera var. humboldtii (Benpl.) Hook $: Harvey. 9. Corte transversal de rizoide; 10. Corte transversal de cauloide, zona cortical externa; 11. Corte t l del loide, rtical int 2. Placa cribosa; 13. Corte transversal del cauloide, zona medular; 14. Corte longitudinal del cauloide; 15. Corte transversal del filoide; 16. Corte transversal del neumatocisto; 17. Corte t l de esporangio. (F 1976). . el canloide uente: Acosta > 74 |ARNALDOA 21 (1): Enero - Junio, 2014 Salavarría et al.: Histología de Macrocys. lis (Phaeophyceae) en la costa centro del Perú Ps PY V 10m AT nd J 1 fat f ] 4] Fig. 3. Cortes histológicos de na ei y Mpyrifera co: cél rtical; cm: ] r: gránulos; pc: placa cribosa. A. Corte transversal del cauloide de M. Ne zona cortical interna. Lente 10x; B. en transversal del neumatocisto de M. integrifo e Ox En na es del filoide de M. ibid 10x; D. Corte transversal de filoide de M. pyrifera. Lente 4 fresco. Escala aproximada 100um 21 (1): Enero - Junio 2014 | 715 Salavarría + al: Hictal gí a NJ + l DIH 4 y HACUPIIYULAL) IU a A1 Ad h] 1 Fat f A 18 | Fig. a Cortes histológicos ce inicgrniona y M. pyrifera *4 . E =1 ++ 1 zona medular. A. Corte transversal del cauloide, zona medular de M. Ln 100x; B. Corte transversal del neumatocisto de M. integrifolia. 400x; C. Corte transversal del filoide de M. ció 100x; D. Corte transversal de filoide de M. pyrifera. 400x. Observación en estado fresco. Escala aproximada 50um 76 | ARNALDOA 21 (1): Enero - Junio, 2014 Salavarría ef al: Histología de Macrocystis pyrifera (Phaeophyceae) en la costa centro del Perú Discusión y conclusiones La estructura histológica de M. pyrifera y M. integrifolia es similar a la analizada en otros géneros de Laminariales como Lessonia nigrescens (Scrosati, 1993); Laminaria saccharina (Smith, 1939). La pared con células en disposición concéntrica rodeadas poruña matriz intercelular amorfa, es definida como pared celular tipo III (Kloareg € Quantrano, 1988) reportada para L. nigrescens (Scrosati, 1993) y presente en este análisis. Este estudio confirma en M. pyrifera la alta organización de la zona medular, representada por una placa cribosa constituida por estructuras filamentosas (Parker $ Huber, 1965); reportada para Nereocystis (Nicholson, 1976) y Laminaria saccharina (Sideman é Scheirer, 1977). Las Laminariales presentan hifas que se originan a partir de células corticales internas, característica propia del orden (Sykes, 1908; Nicholson, 1976; Sideman éz Scheirer, 1977), lo cual se evidenció en este análisis. Se observó la presencia de filamentos trompeta que forman las placas o tubos cribosos, los cuales fueron definidos como filamentos cribosos medulares (Esau, 1969); están asociados al transporte de sustancias orgánicas e inorgánicas a lo largo del talo y característico del orden Laminariales (Smith, 1939; Schmitz, 1990; Penot, 1992). El sistema de filamentos de la zona medular, hifas y filamentos trompetas, cumplen la función de estructuras traslocadoras (Nicholson, 1976; Scrosati, 1993). Agradecimientos Al Ing. Gunter Villena, de Peruvian Seaweeds (PSW) y al Instituto del Mar del Perú IMARPE por la logística facilitada, durante la tesis de maestría, para la colecta de las muestras en San Juan de Marcona y Bahía Independencia, respectivamente. Al Herbario del Museo de Historia Natural de la Universidad Mayor de San Marcos UMSM en Lima. A la Secretaria Nacional de Educación Superior Ciencia, Innovación SENESCYT. Programa “Academia 2010” (Ecuador) por Tecnología e el financiamiento recibido como parte de una beca Doctoral en Ciencias e Ingeniería Biológicas PDCIB de la Universidad Nacional Agraria La Molina UNALM. Perú. Literatura citada Acleto, C. 1986. Algas marinas del Perú de importancia económica. Universidad Nacional Mayor de San Marcos. N*. 5. 107 p. (Serie de divulgación). Acleto, C. € R. Zúñiga. Introducción a las algas. 1998. Universidad Nacional Mayor de San Marcos. 1 Edición. Lima. Perú. 383 p. Acosta, J. 1976. 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Trujillo-Perú alesita_2cutesurhotmail.com 21 (1): Enero - Junio 2014 | 81 M. Soto. ef a/.: Metabolitos secundarios y efecto antibacteriano ín vitro del extracto hidroetanólico de Cantua buxifolia Resumen El presente trabajo estuvo orientado a determinar los metabolitos secundarios y el efecto antimicrobiano in vitro del extracto hidroetanólico de las flores de Cantua buxifolia Juss. ex Lam. (Polemoniaceae) “Flor Sagrada de los Incas”. El material vegetal fue recolectado de la Provincia de Otuzco, Región La Libertad, Perú. Se preparó el extracto hidroetanólico de las flores mediante maceración con etanol de 70% y se realizó el tamizaje fitoquímico del extracto. Los metabolitos secundarios encontrados fueron catequinas, lactonas, triterpenos y esteroides, saponinas, compuestos fenólicos, taninos, quinonas, flavonoides y antocianidinas. La actividad antibacteriana in vitro, se evaluó mediante el método difusión en pozos, a concentraciones de 0,5 mg/mL, 1,0 mg/ 1 y 5 mL y 1,5 mg/mL del extracto, las cuales i el crecimiento bacteriano de las cepas Escherichia coli ATCC 25922, Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853 y Staphylococcus aureus ATCC 25923, siendo la concentración de 1,5 mg/mL la que presentó mayor porcentaje de inhibición frente a las cepas estudiadas. Palabras clave: Extracto hidroetanólico, Cantua buxifolia, efecto antibacteriano. Abstract The present study was oriented to determine the secondary metabolites and in vitro antimicrobial effect of hydroethanolic extract of the flowers of Cantua buxifolia Juss. ex Lam. (Polemoniaceae) “Sacred Flower of the Incas”. The plant material was collected from the province of Otuzco, La Libertad Departament, Peru. The hydroethanolic extract of flowers was prepared by maceration qa o at e and A screening of e extract was performed. Ane ol saponins, É 1 tannins, quinones, flavonoids, and tocas The antibacterial activity in vitro, was od using the well diffusion method at concentrations of 0,5mg/mL, 1,0 mg/mL and 1,5 mg/mL of extract, which inhibited the growth of bacterial Escherichia coli strains ATCC 25922, Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853 and Staphylococcus aureus ACC 25923, the concentration of 1,5 mg/mL was the highest percentage of inhibition against the strains studied. Key words: hydroethanolic extract, Cantua buxifolia, antibacterial effect. Introducción Uno de los temas más preocupantes para antibióticos, el manejo de los mismos en la comunidad científica internacional, es la ambientes hospitalarios, entre otras; las constante emergencia de cepas bacterianas bacterias cada vez se hacen más resistentes refractarias a uno o más antibacterianos, lo que constituye, en la actualidad, un problema de salud pública de alcance mundial (OMS, 2001) La ascendente ocurrencia y diseminación de la resistencia bacteriana, ha generado un incremento en la mortalidad, morbilidad y asociados a la atención médica a pacientes que padecen infecciones, sobre todo de tipo intrahospitalario. No obstante, las medidas preventivas como el mejoramiento en cuanto a la prescripción y uso de los 82 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 a estos, creando Eb la ETE caia de buscar nuevas para el manejo de cepas acenanas resistentes a múltiples antibióticos (Ramírez € Mojica, 2014). En respuesta a la necesidad de conseguir alternativas eficaces para el control de las infecciones bacterianas, se ha recurrido a la fitoquímica y fitofarmacología, que a partir de fuentes naturales, han logrado ampliar el arsenal terapéutico encontrando nuevas M. Soto. ef al.: Metabolitos secundarios y efecto antibacteriano ín vitro del extracto hidroetanólico de Cantua buxifolia moléculas (Ávila et al., 2006). Así, a pesar del gran avance logrado por la síntesis química, las plantas continúan siendo una valiosa fuente de sustancias bioactivas con propiedades antibacterianas (Nascimento et al., 2000), esto debido a que éstas producen más de 100 000 metabolitos secundarios, muchos de los cuales pueden ser agentes antibacterianos (Domingo € López, 2003). Cantua buxifolia Lam. (Polemoniaceae) Juss. ex conocida comúnmente como “Flor Sagrada de los Incas”, “flor YM Ant , nacional del Perú”, “cantúa”, es una especie oriunda de los andes de Bolivia y Perú (León, 2003). Es un arbusto perenne muy ramificado y de aspecto muy vistoso que mide entre los 2 y 3 m de alto. Sus hojas son ásperas de forma lanceolada-elípticas, flores de forma tubular, muy llamativas por sus colores rusticas así como: blanco, amarillo, rosado y rojo-intenso, (ver anexo: Fig. 2). La C. buxifolia se desarrolla de manera silvestre o cultivada principalmente en las zonas andinas de Bolivia y Perú entre los 1200-3800 m de elevación. En la actualidad, existen plantaciones en diferentes partes del Perú como en Cuzco, Ancash, Cajamarca, Matucana, Huánuco, Puno, Apurímac, entre otros lugares del país (Brako € Zarucchi, 1995 Se usa en la medicina tradicional para combatir la diarrea, tos, ictericia y la inflamación de los ojos. Asimismo, se utiliza en infusión y decocción de las flores como un efectivo antidiarréico, antirreumático, febrífugo y antitusígeno (Macía et al., 2005; Huamantupa et al., 2011). Existen trabajos de investigación donde mencionan que los géneros Cantua, Huthia, Gilia, Langloisia, Navarretia y Linanthus de la familia Polemoniaceae presentan flavonoides comúnes (kaempferol, quercetina, miricetina), 6-metoxiflavonoles (patuletina, eupalitina, eupatolitina y C-glicosilflavonas (apigenina y luteolina base) (Smith et al., 1977). Asimismo, se han reportado investigaciones de la actividad antibacteriana, antimicótica y antifúngica (contra dermatofitos) en especies Ipomopsis aggregata var. aggregata y Loeselia mexicana (Lam.) Brand, que pertenecen a la misma familia de la Cantua buxifolia (Navarro et al,, 2011). No existe reportes, sobre la actividad antibacteriana de la planta en estudio, por lo que, se pretende validar científicamente el uso tradicional, para lo cual se planteó el objetivo de determinar los metabolitos secundarios y su efecto antimicrobiano in vitro del extracto hidroetanólico de las flores de Cantua buxifolia Juss. ex Lam. (Polemoniaceae) “Flor Sagrada de los Incas”. Material y métodos Recolección del material vegetal Las flores de Cantua buxifolia Juss. ex Lam. (Polemoniaceae) “Flor Sagrada de los Incas”, fueron recolectadas del Distrito de Otuzco, Provincia, Otuzco, Región La Libertad, Perú, a 2641 m de elevación, entre las coordenadas geográficas Latitud Sur: 705410” y Latitud Oeste de Greenwich: 78%34"20”. La identificación de la especie fue realizada por el Biólogo Eric Rodríguez Rodríguez, a quien le expresamos nuestro agradecimiento, y un ejemplar de la planta fue depositada en el Herbarium Truxillense (HUT), de la Universidad Nacional de Trujillo con número de depósito de 53463. Preparación del extracto Se pesó 50 g de flores de Cantua buxifolia “Flor maceraron Juss. ex Lam. (Polemoniaceae) Sagrada de los Incas” y se con 400 mL de etanol al 70% durante una semana a temperatura ambiente. El extracto hidroetanólico se filtró con papel Whatman N* 2. Luego se evaporó el solvente en 21 (1): Enero - Junio 2014 | 83 M. Soto. ef a/.: Metabolitos secundarios y efecto antibacteriano ín vitro del extracto hidroetanólico de Cantua buxifolia rotavapor a 40 *C hasta obtener una consistencia semisólida, la cual se secó en una estufa, con recirculación de aire a 40 *C. A continuación, se pesó el extracto seco y se guardó en refrigeración a 2 *C en frasco de vidrio de color ámbar estéril. Tamizaje fitoquímico Luego de la preparación del extracto, realizaron diferentes con de mediante cambios de color o formación de precipitados, presencia de catequinas, lactonas (Baljet), triterpenos (Liebermann-Burchard), se ensayos reacciones químicas identificación, para determinar la metabolitos secundarios: y esteroides saponinas (espuma), flavonoides (Shinoda), compuestos fenólicos (cloruro férrico), taninos (gelatina), alcaloides (Dragendortff, Mayer y Wagner), quinonas (Borntrager), antocianidinas (Rosemhein), cardenólidos (Kedde) presentes en el extracto (Miranda $ Cuellar, 2002). Evaluación del efecto antibacteriano Se empleó la técnica de difusión en pozos de agar basada en el método de Kirby-Bauer modificado. Microorganismos Se trabajó con tres cepas bacterianas patógenas tipificadas, dos bacterias Gram positiva: Staphylococcus aureus (ATCC 25923) y Pseudomonas aeruginosa (ATCC 27853) y una bacteria Gram negativa: Escherichia coli (ATCC 25922) proporcionadas por el Hospital Belén de Trujillo, Perú. Preparación de la muestra A partir del extracto hidroetanólico seco de las flores de Cantua buxifolia, se pesó por separado 5 mg, 10 mg y 15 mg y, se redisolvió con 10 mL de dimetilsulfóxido (DMSO), concentraciones 0,5 mg/mL, 1,0 mg/mL y obteniéndose las siguientes 21 (1): Enero - Junio, 2014 1,5 mg/mL. Reactivación de las cepas Las coli ATCC 25922, Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853, Staphylococcus aureus ATCC 25923, que estuvieron en reserva criogénica cepas Escherichia mantenidas a -80 *C fueron reactivadas en caldo triptisoya y se incubaron durante 16 horas a 37*C. Luego se tomó una asada de cada microorganismo y se ajustó con solución salina fisiológica al Patrón de Turbidez de Mac Farland N* 0.5 (10% UFC/mL) (Abad, 2009) Siembras en placas Se procedió a la siembra en tres placas de Petri para cada microorganismo. En cada una de estas, se colocó 20 mL de Agar Mueller-Hinton. Solidificado cada agar, se sembraron los microorganismos respectivos sobre la superficie de este, y se hisoparon uniformemente, girando cada placa 30 grados por 10 veces aproximadamente. Las placas recién sembradas fueron colocadas en una estufa a 37"C de temperatura durante 10 minutos. Preparación de los pozos de agar Sobre las placas sembradas, se realizaron 5 perforaciones de 11 mm de diámetro, con un sacabocado y se sellaron con 0,1 mL del mismo agar, para evitar la dispersión de los extractos. Aplicación de los extractos, del control y del blanco Posteriormente, se colocaron en cada pozo, con ayuda de una micropipeta 200 pL, el extracto hidroetanólico de Cantua buxifolia a diferentes concentraciones (0,5 mg/mL, 1/0 mg/mL y 15 mg/mL), el control (gentamicina 10 1g/mL) y el blanco (DMSO). Cada pozo fue marcado con su M. Soto. ef al.: Metabolitos secundarios y efecto antibacteriano ín vitro del extracto hidroetanólico de Cantua buxifolia respectiva identificación. Para lograr una mayor difusión de las muestras se dejó reposar por unos minutos a temperatura ambiente, se selló con parafilm y se incubó las placas a 37 *C, por un periodo de 24h. Evaluación del efecto del extracto hidroetanólico: (Diámetro de la muestra (mm)- Diámetro del blanco ) La evaluación del efecto antibacteriano, se realizó midiendo con una regla milimetrada los halos de inhibición de las bacterias tanto del control, de las muestras y del blanco. Y se determinó el porcentaje de inhibición de los extractos aplicando la siguiente fórmula (Carrillo et al., 2010; Villanova, 2011): X 100 % Inhibición= (Diámetro del control (mm)- Diámetro del blanco) Donde: Diámetro del blanco = Halo de inhibición de DMSO en mm Diámetro del control = Halo de inhibición de gentamicina en mm Análisis estadístico Los resultados correspondientes a 3 ensayos independientes se expresaron como el promedio + error estándar medio y analizados mediante análisis de varianza de una vía (ANOVA), seguido de Tukey post hoc para comparaciones múltiples. Valores de p< 0,05 se consideraron significativos. Resultados y discusión En la Tabla 1 se muestran los resultados + del t j 1 hidroetanólico de las flores de Cantua buxifolia Juss. ex Lam. (Polemoniaceae) “Flor Sagrada de los Incas”, donde se observa la alta variabilidad de compuestos presentes en la especie como: catequinas, lactonas, triterpenos y esteroides, saponinas, compuestos fenólicos, taninos, quinonas, flavonoides y antocianidina. resultados, concuerda con otro estudio, donde se realizó la identificación preliminar de metabolitos secundarios en los extractos acuoso, acuoso ácido, etanólico y diclorometano de las flores de Cantua buxifolia mediante la “Prueba de la Gota de Olga Lock Ugaz” encontrándose los mismos metabolitos (Sánchez Vega, 2012). Se pudo verificar que la diversidad de metabolitos secundarios presentes en la especie Cantua buxifolia pueden justificar el uso tradicional atribuido a dicha planta en la cura de diversas afecciones (Macía et al., 2005; Huamantupa et al., 2011). La alta y moderada presencia de saponinas, antocianidinas, compuestos fenólicos, flavonoides, quinonas y taninos, alertan sobre la posible actividad antibacteriana de la especie. En relación al efecto del extracto hidroetanólico, en la tabla 2, se observa que las concentraciones (0,5 mg/mL, 1,0 mg/ mL y 1,5 mg/mL) del extracto de las flores de Cantua buxifolia al difundir en el medio produce una gradiente de concentración, suprimiendo el crecimiento bacteriano en una zona circular alrededor del pozo, la medida del diámetro del halo se considera como poder inhibidor del extracto contra las bacterias P. aeruginosa, E. coli y S. aureus y que dicho efecto aumenta a medida que se incrementa la concentración. Al aplicar la prueba de Análisis de Varianza Unidireccional (ANOVA) y Tukey post hoc se encontraron diferencias estadísticas (p<0,05), es significativas decir, el 21 (1): Enero - Junio 2014 | 85 M. Soto. ef a/.: Metabolitos secundarios y efecto antibacteriano ín vitro del extracto hidroetanólico de Cantua buxifolia Tabla. 1: Metabolitos secundarios en el extracto hidroetanólico de fl Juss. ex Lam. (Polemoniaceae) “Flor Sagrada de los Incas”. Metabolitos maso Ensayo Identificación Intensidad Catequinas Catequinas + ++ Lactonas Baljet id + prono eS Liebermann-Burchard + ++ Saponinas Espuma + +++ Compuestos fenólicos Tricloruro Férrico ad E Taninos Gelatina + + Quinonas Borntrager E + Flavonoides Shinoda + ++ Cardenólidos Kedde - - Antocianidina Rosemhein + pta Alcaloides Dragendorff - - Mayer - E Wagner E me INTENSIDAD: (+): poca; (++): moderada; (+++): alta; IDENTIFICACIÓN: (+): presencia (-): ausencia Tabla. 2: Diámetro nan del halo de inhibición (mm) del extracto hidroetanólico de las flores de Cantua adas Juss. ex Lam. (Polemon al A Sa, a Ea se los Incas” y el control (gentamicina 10 ug/mL) frente a Pseudomona aeruginosa, Escherichia coli y Staphylo ureus, in vitro Halo de inhibición (mm) Microorganismo . Ñ Control Blanco Extracto hidroetanólico 0.5mg/mL 1.0mg/mL 1.5mg/mL Gentamicina DMSO 10ug/mL xD, E DIE, ED E: xD E Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853 12,0:0.5 15,310.6 21,3£0.6 25,0:£0.5 0 Escherichia coli ATCC 25922 13,310.6 16,310.8 21,750.03 31,3£0.7 0 Staphylococcus aureus ATCC. 25923 15,9£0.5 20,6£0.7 28,3£0.6 29,3£0.6 0 xi D.E: Promedio del halo de inhibición de 3 placas y desviación estándar. p<0,05 comparado con el grupo control positivo (test de ANOVA y Tukey post hoc). 86 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 M. Soto. ef al.: Metabolitos secundarios y efecto antibacteriano ín vitro del extracto hidroetanólico de Cantua buxifolia efecto es directamente proporcional a la concentración. Asimismo, el compuesto de referencia (Gentamicina 10 1g/mL) presentan halos de inhibición que, según, la NCCLS para estos compuestos frente a estos microorganismos Porcentaje de inhibición un 2 ensayados, estarían catalogados sensibles (National Committee for Clinical como Laboratory Standards, 1999); mientras que el blanco (DMSO) no presenta halos de inhibición, lo que indica la inocuidad del solvente frente a estos microorganismos. La Fig. 1, muestra los porcentajes de A P. ceruginosa Ml E. coli A S.aureus D.5mg'mL 1.0mgfmL 1.5mgfmL Concentración del extracto hidroetanólico de flores de €. buxifolia Fig. 1. Porcentaje de inhibición del extracto hidroetanólico de Cantua buxifolia Juss. ex Lam. (Polemoniaceae) “Flor Sagrada de los Incas” frente a Pseudomonas aeruginosa, Escherichia coli y Staphylococcus aureus, in vitro. inhibición del extracto hidroetanólico de las flores de Cantua buxifolia los cuales fueron de 48%, 61% y 85% para P. aeruginosa; 43%, 52% y 69% para E. coli.; y 52%, 70% y 97% para S. aureus, a las dosis de 0,3mg/mL, 1/0 mg/mL y 1,5 mg/mL respectivamente. Una acción antibacteriana se considera alta cuando su porcentaje de inhibición relativo es >70%, intermedia entre el 50-70% y baja cuando es <50% (Ramírez 6 Díaz, 2007). En consecuencia, a la dosis de 1.5 mg/mL el extracto presentó actividad alta para P. aeruginosa y S. aureus e intermedia para E. coli. Si bien es cierto, no existen trabajos previos de índole antibacteriana con respecto en Cantua buxifolia, existen otros trabajos de investigación de especies de plantas de la misma familia en estudio, donde se menciona que la especie Phlox maculata L. (Polemoniaceae) presentó actividad antibacteriana frente a E. coli y S. auriginosa con halos de inhibición de 14 mm y 19 mm respectivamente (Borchardt et al., 2009). Además, al estudiarse el extracto metanólico de Loeselia mexicana (Polemoniaceae), este presentó actividad antimicrobiana y antifúngica frente a Staphylococcus aureus, Streptococcus faecalis, 21 (1): Enero - Junio 2014 | 87 M. Soto. ef a/.: Metabolitos secundarios y efecto antibacteriano ín vitro del extracto hidroetanólico de Cantua buxifolia Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Salmonella typhi, Candida albicans, Trichophyton mentagrophytes y Trichophyton rubrum (Navarro et al., 2011), lo que podría corroborar el potencial antibacterial de esta familia vegetal. Es la presencia de los metabolitos secundarios, sobre todo de compuestos fenólicos flavonoides, quinonas, taninos y saponinas los que le confieren el efecto antibacteriano. Esto debido a que, los flavonoides por tener en su estructura química un número variable de grupos hidroxilo fenólicos penetran fácilmente a través de la membrana celular bacteriana, se combinan y precipitan las proteínas protoplasmáticas desnaturalizándolas y actuando como venenos protoplasmáticos (Puupponen et al., 2001). Asimismo, estos flavonoides provocan la muerte bacteriana al inhibir la síntesis de ADN o ARN, debido a que tienen una estructura plana similar a la de las bases púricas y pirimídicas; por lo tanto, se pueden intercalar formando puentes de hidrógeno con las bases de la doble hélice y de esta forma las flavonas alteran la estructura tridimensional de los ácidos nucleicos, impidiendo su adecuada síntesis de novo; además, de provocar errores de lectura durante la transcripción (Cushnie € Lamb, 2005). De igual manera, las quinonas presentan un rango amplio, actuando posiblemente sobre las adhesinas expuestas en la superficie de las bacterias, sobre los polipéptidos de la pared celular y sobre las enzimas unidas a membranas (Cowan, 1999). 5 | Asimismo, los taninos incluyen, la f | l ] microbianas extracelulares (Akiyama, 2001). Por otro lado, las saponinas son un grupo de sustancias glicosídicas que se disuelven en agua y poseen la propiedad de formar espuma al agitar la solución. Se cree, que la toxicidad de las saponinas es 21 (1): Enero - Junio, 2014 debido a su capacidad de formar complejos con esteroles de las membranas celulares produciendo grandes poros en las mismas que alteran su permeabilidad y la célula se lisa, ocasionando la ruptura de las membranas bacterianas (Díaz, 2009). Es así, que el presente trabajo se constituye en el primero en reportar el efecto antibacteriano de Cantua buxifolia (Polemoniaceae) “Flor Sagrada de los Incas”, contribuyendo así, a la necesidad mundial de encontrar nuevas fuentes naturales con potencial farmacológico. Literatura citada Abad, X. D. 2009. Determinación de la actividad antimicrobiana de los extractos totales de cuatro especies vegetales de las Provincias de Loja y Zamora Chinchipe: Piper ecuadorense” Matico”, Lepechinia mutica Benth “Turuyante”, Fuschia ayavacensis “Pena- Pena”, Niphogeton dissecta “Culantrillo del cerro”, empleando los métodos de Difusión en placa, Concentración Mínima Inhibitoria e Inhibición del Crecimiento Radial. Tesis. Universidad Técnica Particular de Loja. Ecuador. Akiyama, H.; K. Fuji; O. Yamasaki; T. Oono € K. Iwatsuki. 2001. Antibacterial action of several Staphylococcus aureus. — J. Chemother. 48 (4): 487-491. tannins against Antimicrob. Ávila, L.; E. Baquero; A. Viña éz E. Murrillo. 2006. 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Estudio Fitoquímico Preliminar de las Flores de Cantua buxifolia Juss. ex Lam. “Flor Sagrada de los Incas”. Tesis. Universidad Nacional de Trujillo. Perú. Smith, D. M.; C. W. Glenmnie; J. B. Harbone éz C. A. Williams. 1977. Flavonoid diversification in the polemoniaceae. Biochemical Systematics and Ecology. 5 (2): 107-115. Fig. 2. Cantua busxifolia Juss. ex Lam. (Polemoniaceae) “Flor sagrada de los Incas” (Foto S. Leiva, 5680, HAO). 21 (1): Enero - Junio, 2014 Arnaldoa 21 (1): 91 - 104, 2014 ISSN: 1815-8242 Estudio fitoquímico de las hojas, flores y frutos de Solanum multifidum Lam. y Lycianthes lycioides (L.) Hassl. (Solanaceae) procedentes del Cerro Campana, Región La Libertad-Perú Phytochemical study of the leaves, flowers and fruits of Solanum multifidum Lam. and Lycianthes lycioides (L.) Hassl. (Solanaceae) from the Cerro Campana, Región La Libertad-Peru sm € A va =, NW . | AS mi j : e y E , | I Marilú Roxana Soto Vásquez Laboratorio de Farmacognosia: Facultad de Farmacia y BioquimicaWUniversidad Naciónal de Trujillo. Av. Juan Pablo ll s/n. Trujillo-Perú msotoGunitru.edu.pe 21 (1): Enero - Junio 2014 | 91 M. Soto: Estudio fitoquímico de hojas, flores y frutos de Solanum multifidumn y Lycianthes lycioídes (Solanaceae) Resumen Con el propósito de contribuir al conocimiento científico de los componentes presentes en las especies Solanum multifidum Lam. y Lycianthes lycioides (L.) Hassl. (Solanaceae) y así establecer una potencial utilidad medicinal, se realizó el estudio fitoquímico de las hojas, flores y frutos de ambas especies, para lo cual fueron recolectadas las especies del Cerro Campana del Distrito Huanchaco, Región La Libertad-Perú. El ed fitoquímico se realizó mediante una extracción sucesiva con , etanol y agua), y del tipo lio haciendo uso de reactivos de coloración y precipitación. Se encontró en ambas especies una alta diversidad de metabolitos como alcaloides, compuestos fenólicos, flavonoides, antocianidinas, catequinas, taninos, triterpenos y esteroides, azúcares reductores, aceites y grasas, aminoácidos, saponinas sólo en hojas y flores de ambas especies y lactonas y cumarinas sólo fueron encontradas en los tres órganos de la especie de S. multifidum Lam. Palabras clave: Solanaceae, Solanum, Lycianthes, fitoquímica, Cerro Campana. Abstract In order to contribute to the scientific knowledge of the components present in the species Solanum multifidum Lam. and Lycianthes lycioides (L.) Hassl., (Solanaceae) and establish potentially medicinal use, phytochemical study of leaves, flowers and fruits of both species was performed, for which species were collected from Campana Hill in Huanchaco district, La Libertad region-Peru. Phytochemical screening was performed by successively extraction using solvents of ascending polarity (diethyl ether, ethanol and water), and proceeded to make the qualitative identification, using coloring and precipitation reagents. It was found a high diversity of metabolites such as alkaloids, phenolics, flavonoids, anthocyanidins, catechins, tannins, triterpenes and steroids, reducing sugars, oils and fats, amino acids, saponins only in leaves and flowers of both species, and lactones and coumarins were found only in the three organs of S. multifidum Lam. Keywords: Solanaceae, Solanum, Lycianthes, phytochemistry, Cerro Campana Introducción medicina tradicional, la agricultura, como plantas ornamentales, o por su alta toxicidad La O Solanaceae es un vasto grupo A ciiarantan (García, 2009), destacándose entre ellas, la —d uc 90 ee y 2600. especies de distribución cosmopolita, existiendo en mayor número “papa” (Solanum tuberosum L.), el “tomate” Solanum lycopersicum Lam.), la “berenjena” Sol l Lor ela to” en climas cálidos y cálido-templados como A e América del Sur (Mabberley, 2008), donde se han registrado cerca de 50 géneros ( ( (Physalis peruviana L.), el (Capsicum annuum L.), la “mandrágora” ( Era A q sd Mandragora officinalis L.), la “belladona” endémicos (D'Arcy, JETS (Atropa belladonna L.), el “chamico” (Datura a esta región un centro geográfico de Ñ 8 8508 stramonium L.), entre otras (Long, 2001). especialización de esta familia (Symon, 1981). En el Perú, la familia solanaceae es En esta familia se han encontrado una rica en especies, reconociéndose alrededor amplia gama de metabolitos secundarios, de 42 géneros y 600 especies (Ulloa et al, desde compuestos fenólicos como flavo- 2004). noides, cumarinas, estilbenos, taninos y , E lignanos, hasta alcaloides, glicoalcaloides, Numerosas especies de esta familia ] . esteroides, terpenos, esteroles, sapogeninas, son mundialmente conocidas, sea por su ] j e saponinas, esteres glicosilados y witanoli- importancia económica, sus usos en la 92 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 M. Soto: Estudio fitoquímico de hojas, flores y frutos de Solanum multifidumn y Lycianthes lycioídes (Solanaceae) dos, atribuyéndoseles diversas propiedades terapéuticas como: antioxidantes, antimi- crobianas, anticancerígenas, antiinflamato- rias, antinociceptivas, hepatoprotectoras, inhibidores de la re- sistencia de fármacos y también como base antiparkinsonianas, para la fabricación de hormonas esteroida- les (Long, 2001; García, 2009; Pandurangan et al., 2010; Nice, 2013). El Cerro Campana se encuentra situado al noroeste de la ciudad de Trujillo, donde debido a las lloviznas, propias del invierno o estación de las lomas, crecen en estas un interesante mosaico herbáceo (Sagástegui et al., 1988), donde alberga a Solanum multifidum Lam., especie endémica del Perú, la cual es una hierba anual, erecta o postrada que crece hasta 50 cm de altura, con tallos leñosos y carnosos, hojas pinnadas, bipinnadas o tripinnadas, con inflorescencias 4,5-20 cm de largo, y brotes axilares ramificados, cuyas flores son de color púrpura, azul o violeta, con estambres de color amarillo, de fruto verde y rojo cuando madura, sus semillas son obovadas y aplanadas de 1,0-1,1 x 1,1-1,2 mm, y de color marrón (Bohs, 2005; Bennet, 2008); y Lycianthes lycioides (L.) Hassl., que es un arbusto de hasta 140 cm de altura, de tallo ramoso y leñoso, con hojas lanceoladas, de pecíolo muy corto, enteras, y dispuestas en fascículos. Las flores son blanquecinas, actinomorfas, gamosépalas, gamopétalas e infundibuliformes; con androceo formado por 5 estambres epipétalos, anteras ditésicas y basifijas; gineceo con ovario súpero, bicarpelar, bilocular, de placentación parietal, estilo apical y estigma bífido. Su fruto es en baya, de color anaranjado, de ahí su nombre vulgar, “naranjito del campo” (Linares, 1995). Teniendo en cuenta, las diversas propiedades terapéuticas de las solanaceae, así como la ausencia de estudios sobre las especies antes mencionadas, se decidió realizar el estudio fitoquímico de las hojas, flores y frutos de Solanum multifidum Lam. y Lycianthes lycioides (L.) Hassl. Material y métodos Material biológico Las especies de Solanum multifidum Lam. y Lycianthes lycioides (L.) Hassl. fueron recolectadas de las lomas costeras del Cerro Campana en el área comprendida entre las coordenadas geográficas: 8% 00” 18.16” latitud sur - 79% 0618.34” longitud oeste y los 7% 58” 36.98” latitud sur - 79* 0616.18” longitud oeste, a una altitud entre los 244 y 700 m de elevación, del Distrito de Huanchaco, Provincia de Trujillo, región La Libertad-Perú (Fig. 1. A-F). Estas especies fueron identificadas por el biólogo- botánico Eric Frank Rodríguez Rodríguez curador del Herbarium Truxillense de la Universidad Nacional de Trujillo (HUT) y depositadas en el herbario con los códigos: N? 50979 y N* 50976. Tamizaje fitoquímico Fundamento: De acuerdo con este método para la marcha fitoquímica de Miranda « Cuellar (2002), cada muestra fue sometida a la acción extractiva de solventes de polaridad creciente: éter etílico, etanol y agua, modificando el pH del medio con el fin de obtener los metabolitos secundarios de acuerdo a su solubilidad. Luego de separar las fracciones se realizó la identificación de los metabolitos secundarios haciendo uso de reactivos de coloración y precipitación. Procedimiento: Las hojas, flores y frutos de las especies en estudio (Fig. 1. A-F) fueron seleccionadas, lavadas y desecadas en la estufa a 40”C por 3 días, luego fueron pulverizadas en un mortero y tamizadas por un tamiz de malla N* 20. 21 (1): Enero - Junio 2014 | 93 M. Soto: Estudio fitoquímico de hojas, flores y frutos de Solanum multifidum y Lycianthes lycioídes (Solanaceae) Se pesaron exactamente 50 g de cada una de las muestras y se procedió según los esquemas 1, II, Il y IV. (ver anexo). Resultados y discusión El tamizaje fitoquímico o “screening” fitoquímico es una de las etapas iniciales de la investigación fitoquímica, que permite determinar cualitativamente los principales grupos de presentes en una planta y, a partir de allí, constituyentes químicos orientar la extracción y/o fraccionamiento de los extractos para el aislamiento de los grupos de mayor interés. (Lock, 1994). Así, en el presente estudio fitoquímico preliminar se utilizó el método de Miranda $ Cuellar, (2002), donde la extracción de los metabolitos sigue un orden de polaridad ascendente; debido a que las células de donde se los ha de extraer, constituyen sistemas hidrofílicos internos, donde se encuentran los primeros, inmersos dentro de una vesícula, que consta de una membrana lipofílica. Cuando se pulveriza la droga, se rompen las paredes y membranas celulares, dejando libres las vesículas que almacenan a los metabolitos. Es así, que se partió con solventes de polaridad creciente (etér etílico, etanol y agua) puesto que el éter etílico, al ponerse en contacto con la droga pulverizada, va a difundirse fácilmente por la membrana vesicular, disolviéndola a su paso y extrayendo los principios activos de polaridad semejante (lipofílicos); este solvente, no extrae aquellos metabolitos secundarios unidos no covalentemente a sistemas hidrofílicos (proteínas, péptidos) en el citoplasma expuesto; sino que se repele con estos últimos. (Miranda é Cuéllar, 2002). El etanol, como solvente de polaridad intermedia, extrae los metabolitos afines; su labor se ve facilitada por la secuencia del procedimiento: el éter etílico ya disolvió las membranas vesiculares, tal es así que 21 (1): Enero - Junio, 2014 solo se remite a romper las interacciones que mantienen atraídos (no unidos) a los principios activos, hacia los sistemas hidrofílicos. Finalmente, el agua extrae los principios activos más hidrosolubles, debido a su elevada polaridad, esta es capaz de extraerlos en sus formas ionizadas, situación que escapa a las particularidades de los solventes anteriores. (Marcano é Hasegawa, 2002) En la tabla 1 y 2se observan los resultados del tamizaje fitoquímico realizado a las hojas, flores y frutos de las especies S. multifidum Lam. y L. lycioides, notándose una gran variedad de metabolitos, entre ellos alcaloides, los cuales se encontraron más abundantes en las hojas de ambas especies. Para la identificación de estos, se realizaron ensayos con los reactivos de Dragendorff, Mayer € Wagner, los que produjeron con las sales de estos compuestos, precipitados de color rojo anaranjado, blanco lechoso (Miranda metabolitos y marrón respectivamente $ Cuéllar, 2000). Estos secundarios se encuentran distribuidos en mayor cantidad en especies del género Solanum y también en especies del género de encontrados en estos géneros se reportan Lycianthes. Dentro los alcaloides los alcaloides esteroidales o glicoalcaloides, entre los que se incluyen solanocapsina, solacasina, solacapina, episolacapina, isosolacapina y O-metil-isosolanocapsina, solafilidina, solasodina, tomatina, chaconina y alfa solanina que han sido aislados de hojas, frutos maduros, tallos y raíces de estos géneros (Vijayan et al., 2004; Aliero et al, 2005; Coy et al., 2005; Martín., 2011; Knuthsen et al., 2009), reportándose también alcaloides tropánicos (Patterson €: OíHagan, 2002). Estos cumplen diversas funciones en las plantas, tales como defensa naturales contra animales y hongos. Asimismo, presentan una amplia gama de actividades M. Soto: Estudio fitoquímico de hojas, flores y frutos de Solanum multifidurn y Lycianthes lycioídes (Solanaceae) terapéuticas antimicrobianos, analgésicos, antiinflamatorios, diuréticos, como antioxidantes, antivirales, y antitumorales (Usubillaga et al., 1997; Vijayan et al., 2002; 2004; Aliero et al., 2006; Dongre et al., 2007; Lien et al., 2012). Otros metabolitos encontrados en los órganos de las especies en estudio son los compuestos fenólicos, los cuales se evidenciaron con la aparición de color verde al reaccionar con tricloruro férrico (Miranda $8 Cuellar, 2002). secundarios engloban a todas aquellas Estos metabolitos sustancias que poseen varias funciones fenol, y cumplen diversas funciones en las plantas, como defensa contra herbívoros o patógenos, además, en particular como soporte mecánico, en la atracción de polinizadores, y dispersantes de frutos, así como, reducen el crecimiento de las plantas competidoras próximas. Dentro de este grupo se evidenció a los flavonoides, los cuales dieron reacción positiva con el reactivo de Shinoda dando coloraciones de anaranjado a rojo en la fase amílica (Miranda $ Cuellar, 2000). Los flavonoides son los metabolitos que dan coloraciones a las plantas por eso son considerados pigmentos naturales, encontrándose generalmente en las flores, frutos y hojas fundamentalmente en forma de glicósidos, lo que les infiere una alta solubilidad en agua y disolventes polares, la cual se incrementa por la alta polaridad de sus estructuras (Lock, 1994; Miranda € Cuellar, 2002). Los flavonoides protegen a las células de exceso de, radiación ultravioleta, que se acumulan en las capas epidérmicas de las hojas y tallos, además de ser moduladores del trasporte polar de auxinas. Los flavonoides, han sido empleados para la reducción de la fragilidad capilar, protección frente a estados tóxicos agudos, en terapéutica estrogénica e inflamatoria por su acción similar a la cortisona. Además, son usados como antioxidantes, antivirales, antidiarreicos, antihelmínticos y citostáticos (Kuklinski, 2000; Lock, 1994; Martínez, 2005). Asimismo, se evidenció la presencia de antocianidinas, dando una coloración rojo a marrón en la fase amílica, estos son un tipo de flavonoides responsables de la mayoría de los colores rosa, rojo, morado y azul en las plantas y se encuentran acumulados en las vacuolas de la célula. Debido a que colorean flores y frutos, las antocianinas son muy importantes en la atracción de animales para la polinización y la dispersión de las semillas. Estos metabolitos, han sido reportados como anticancerígenos, antitumorales, antiinflamatorios y antidiabéticos (Garzón, 2008; Martínez, 2005). Por otro lado, se encontró catequinas en el extracto etanólico de los órganos de las especies estudiadas, las cuales dieron una mancha verde carmelita a la luz ultravioleta, indicándonos un ensayo positivo. Estos metabolitos, también son un tipo de flavonoide y presentan propiedades antioxidantes, antidiabéticas, antiinflamatorias, inmunoestimulantes (Miranda é Cuellar, 2001; Martínez, 2005). Cabe recalcar, que sobre las especies en estudio, no se reportan datos de su composición química; sin embargo, los resultados obtenidos coinciden con los reportados para otras especies del género Solanum y Lycianthes. Como por ejemplo: compuestos fenólicos, flavonoides en S. lycopersicum (Tokusoglu et al., 2013), S. quitoense (Gancel et al., 2008), S. tuberosum (Peña, 2013), S. sessiliflorum (Cardona, 2011), S. validi ( ,2006), L. marlipoensi (Guo € Li, 2011), L. biflora (Yang € Zhao, 2012) y antocianidinas en S. melongena . (1 4 (Sadilova, 2006) y S. nigrum (Ramos et al. 2000). Asimismo, estos metabolitos 21 (1): Enero - Junio 2014 | 95 M. Soto: Estudio fitoquímico de hojas, flores y frutos de So/anum multifidum y Lycianthes lycioídes (Solanaceae) poseen variada actividad como antioxidantes, biológica hipolipemiantes y antiagregante plaquetario (Palomo et al, 2010). Otro compuesto fenólico encontrado, son los taninos, los cuales dieron precipitado blanco al reaccionar con gelatina. Estos metabolitos secundarios son de sabor amargo, astringentes, que precipitan las proteínas y alcaloides. Los taninos están ampliamente distribuidos especies de plantas, donde juegan un papel importante para disuadir a los animales en muchas de su consumo y también en la regulación del crecimiento vegetal y se encuentran en hojas, brotes, semillas, raíces, tallo y tejidos de diversas plantas. Aunque siempre se han considerado como perjudiciales, diversos estudios muestran sus beneficios a pequeños dosis como antivirales, antibacterianos y antiparasitarios (Gonzáles, et al., 2001; Valencia, 1995). Por otro lado, las lactonas y cumarinas, sólo se evidenciaron en las hojas, flores y frutos de la especie S. multifidum, las cuales reaccionaron con Baljet dando coloración roja. Asimismo, al comparar con otras especies del género Solanum se han encontrado que S. macranthum y S. americanum presentan lactonas terpénicas y lactonas sesquitérpenicas que le confieren actividades insecticidas (Hernández et al., 2010; Chang, 2013). De igual manera, también se reportan la presencia de cumarinas (esculetina, esoescopoletina) en la especie de Solanum validinervium (Suarez et al., 2006). Con respecto a la esculetina, se han reportado en investigaciones, que posee efectos estrogénicos y que, puede ser utilizada en terapia de reemplazo hormonal en mujeres posmenopáusicas (Orozco et al., Respecto a los triterpenos y esteroides, 21 (1): Enero - Junio, 2014 estos se han identificado en todos los órganos de las especies en estudio, los cuales dieron reacción positiva con el reactivo de Liebermann-Burchard dando coloraciones de rojo (triterpenos) y color azul verdoso (esteroides). Los esteroides biogenéticamente están relacionados a los triterpenos. Los esteroides son compuestos fundamentales en la estructura vegetal. Existen investigaciones donde reportan que el género Solanum presenta 5 triterpenos: lupeol, acetato de lupeol, a-amirina, P-amirina y acetato de P-amirina y dos esteroides sitosterol y estigmasterol (Pereira, 2000). Asimismo, se reportan glicósidos esteroidales (P-solamargina, solasonina y a, P-solansodamina) (Saijo et al., 1982). Las saponinas son glicósidos, de ambos triterpenos y esteroles, este metabolito secundario también se ha encontrado en las hojas y flores de S. multifidum y L. lycioides. Son un grupo amplio distribuido en sustancia vegetales, así llamadas por su capacidad para formar espuma con el agua. Estas son poderosas surfactantes, causan hemólisis y sonp ji venenosas para los peces, pero sin efectos tóxicos para los hombres al ser ingeridos. Tienen actividades antiinflamatorias, antialérgicas antivirales y moluscosidas (Lacaille-Dobous € Wagner, 1996). Las saponinas esteroidales, son materia inicial para la preparación de varios productos muy potentes y ampliamente usados como productos farmacéuticos, entre ellos: cortisona, anticonceptivos, estrógenos, testosterona. Estas saponinas esteroidales se encuentran ampliamente distribuidas en la familia Solanaceae (Martínez, 2001; Coutinho, 2009). Por otro lado, también se evidencia la presencia de aceites y grasas en las hojas, flores y frutos de las especies en estudio. Estos, se identificaron mediante M. Soto: Estudio fitoquímico de hojas, flores y frutos de So/anum multifidumn y Lycianthes lycioídes (Solanaceae) el ensayo de Sudan III dando coloración roja, estos metabolitos, se encuentran en las partes aéreas de las plantas superiores, que incluyen hojas, tallos, flores y frutos, que están cubiertas completamente, con excepción de la apertura estomática, de una membrana contínua lipídica extracelular denominada cutícula (Pighin et al., 2004; Cameron et al., 2006; Jeffree, 2006). El ensayo para azúcares reductores resultó positivo dando precipitados de color rojo ladrillo al reaccionar con Fehling. Estas, se encontraron en todos los órganos de las especies en estudio, siendo de mayor intensidad en los frutos de L. lycioides. Por otro lado, para la identificación de los aminoácidos, se realizó la reacción con la ninhidrina. La ninhidrina, es un poderoso agente reactivo, reacciona con todos los aminoácidos formando un compuesto complejo, dando una coloración que varía de azul a violeta intenso. Este metabolito, se encontró en todos los órganos de las especies en estudio. Ambos metabolitos, son también reportados en otras investigaciones de la familia Solanaceae. (Navarro kz Suárez, 2010; Pérez-Colmenares éz Rojas-Fermenin, 2013). Grupos de metabolitos secundarios como cardenólidos, quinonas, resinas y mucílagos no fueron detectados en el presente estudio. Conclusiones Las hojas, flores y frutos de las especies S. multifidum Lam. y L. lycioides. evidencian la presencia de una gran variedad de metabolitos como, alcaloides, compuestos antocianidinas, fenólicos, flavonoides, catequinas, taninos, triterpenos y esteroides, azúcares reductores, aceites y grasas, aminoácidos, hojas y flores de ambas especies y lactonas saponinas sólo en y cumarinas sólo en los tres órganos de la especie de S. multifidum Lam. En ninguno de los órganos evaluados se encontró la presencia de cardenólidos, quinonas, resinas y mucílagos. Literatura citada Aliero, A. A.; D. S. Grierson é A. J. Afolayan. 2005. Chemical and nutrient characterization of Solanum pseudocapsicum berries. Afr. J. Biotechnol. (Ke- nia). 4 (11): 1300-1303. Bennet, J. 2008. Revision of So/anum section regman- dra (Solanaceae).Edinburgh Journal of Botany. 65 (1): 69-112. Bohs, L. 2005. Major clades in Solanum based on ndhF sequences. Pp. 27-49 /n R. C. Keating, V. C. Ho- llowell, 8 T. B. Croat (eds.), A festschrift for William G. D'Arcy: the legacy of a taxonomist. Monographs in Systematic Botany from the Missouri Botanical Garden, Vol. 104. Missouri Botanical Garden Press, St. Louis. Cameron, K. D.; M. A. Teece € L. B. Smart. 2006. In- creased accumulation of cuticular wax and expres- sion of lipid transfer protein in response to periodic drying events in leaves of tree tobacco. Plant Phy- siol. 140: 176-183. Cardona, J. 2011. 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Soto: Estudio fitoquímico de hojas, flores y frutos de Solanum multifidumn y Lycianthes lycioídes (Solanaceae) MATERIAL VEGETAL 50 g Extraer con 150 mL de éter etílico por ¡ión durante 48 horas a temperatura ambiente | FILTRAR | | EXTRACTO ETÉREO RESIDUO SÓLIDO Medir volumen y calcular Pesar y secar concentración Extraer con 3 veces el peso del residuo en volumen con etanol de 70% GL por maceración durante 48 horas FILTRAR | ] | RESIDUO SÓLIDO - EXTRACTO ETANOLICO Pesar y secar T Medir volumen y calcular concentración Extraer con 3 veces el peso del residuo en volumen con agua destilada por maceración | FILTRAR | | | RESIDUO SÓLIDO EXTRACTO ACUOSO Pesar y secar Medir volumen y calcular concentración ESQUEMA L. Extracción sucesiva del material vegetal para la aplicación de técnicas de tamizaje fitoquímico 21 (1): Enero - Junio 2014 | 101 M. Soto: Estudio fitoquímico de hojas, flores y frutos de So/anum multifidum y Lycianthes lycioídes (Solanaceae) 4d + + + [9 Ud JBZIJP9I Y SIUOLDIBIY “IN VINANOSA seuojoe SVNIGINVIDOLNV (S9ProuoA8[ 1) (soprogoumary) canta CRUARED Hd OAVSNI VUONIHS VNIYJGIHNIN 4d OAVSNA JANTVA HA OAVSNA . JU OAVSNA 4 OAVSNA een uz 4d OAVSNA “uz uz uz uz L | Tu z | || (saproreoTy) j (saproa]sg YIDVH A YINDVM (sopH9uape)) Sedo) £ souadio1111) (S9JOJIMPAI YIAVIA HAJOUNADV YA (sourue J, K sa]0u9 +) AYVHIANA SOILoNZ y) 4d SOAVSNA AAA HA OAVSNA YD YALNAOa 300 -NVIAJIgarT ONITH4A SVNINO4LVO 4d OAVSNA IC OAVENA 41d OAVSNA 4d OAVSNA aa sauorJod £ ua qu 9 uz uz OAWVSNA TUZ “uz TU Z UT | | | ] | SANOIDOVYA NA YIAIAIA | | | ODITIONVIA OLOVALXA | ODIHO 1919 DP OJ98.YXO [9 UN IBZIJLII Y SIUOLIIPIY “H VINANOSA (Sapro.19]84- souadI9]11]) (SPULIBUIn; (sesero AY VHIANA K seuoyoe]) (sapro]eo[y) L sajooy) -NNVIAYIgarT LArTVg YAIDVH A JINDVM YIAVÍIA NVans Hd OAVSNA Hd OAVSNA 44 SOAVSNA 4d OAVSNA TUS TUS (sauoroJod £ u3 OPIpIAIp) JUST TUS ] | SINOIDOV YA NA YIUTAIO | OOMIONVIA OLOVALX4A 21 (1): Enero - Junio, 2014 102 M. Soto: Estudio fitoquímico de hojas, flores y frutos de Solanum multifidumn y Lycianthes lycioídes (Solanaceae) | EXTRACTO ACUOSO | | DIVIDIR EN FRACCIONES | 5 mL en 3 porciones 2 mL 2 mL ENSAYO DE ENSAYO DE DRAGENDORFF, SHINODA ESPUMA MAYER Y WAGNER (S . y (Flavonoides) aponinas (Alcaloides) 2mL 2 mL 10mL ENSAYO DE ENSAYO DE 2mL podas GELATINA MUCILAGOS CLORURO FÉRRICO (Azúcares Reductores) (Taninos) ESQUEMA IV. Reacciones a realizar en el extracto acuoso 21 (1): Enero - Junio 2014 | 103 104 M. Soto: Estudio fitoquímico de hojas, flores y frutos de Solanum multifidum y Lycianthes lycioídes (Solanaceae) Tabla 1 Tamizaje fi mico dela hoja A fito de Sa], AA T Metabolitos Ensayo Extracto Extracto Extracto etéreo etanólico acuoso H Alcaloides Dragendorff ++ + + O H+- + + H+ + + Mayer ++ + + ++ + + Ho + + Wagner + + + ++ + + Hito + + Compuesto Tricloruro A E 5 E us fenólicos Férrico Flavonoides Shinoda Ho ++ ++ + + l Antocianidinas E Ba E Catequinas Catequinas ll 5 ES Taninos Gelatina-sal + + H ctonas y Baljet + + + + + + cumarinas Triterpenos y Lieberman- H+ + + ++ + + Esteroides Cardenólidos Kedde ñ i F Quinonas Borntráger - - - Saponinas Espuma + + a ++ En 3 Azúcares Fehling + + + ab AS + Reductores Aceites y Sudan III + + + grasas Aminoácidos Ninhidrina + + + Resinas Resinas E E - Mucílagos * E > H: Hoja; F: Flor; Fr: Fruto (-) Ausencia; 1 Tabla 2. Tamizaje fitoquímico de la hoja, flor y fruto de Lycianthes lycioides (L.) Hassl. Metab etéreo etanólico acuoso H F Fr H F Fr H F Fr Alcaloides Dragendorff ++ + + ++ + + ++ + + Mayer + + $0: BRE E + Ho + + Wagner ++ + +: E + E ++ + + Compuesto Tricloruro EE, + ++ + + fenólicos Férrico Flavonoides Shinoda + A + EE Antocianidinas + + + Catequinas Catequinas E E de Taninos Gelatina-sal ES ed me actonas y Baljet - - - - - 5 cumarinas Triterpenos y Lieberman- ++ + ++ ++ + ++ Esteroides ard Cardenólidos Kedde 5 ñ Ñ Quinonas Borntráger 5 » - Saponinas Espuma + ad - ++ + A Úúcares Fehling + HE + + + ++ Reductores Aceites y Sudan II + + + grasa: Aminoácidos Ninhidrina Bs Ad Resinas Resinas - y 2 Mucílagos - - A H: Hoja; F: Flor; Fr: Fruto (-) Ausencia; 1 derad bund: | 21 (1): Enero - Junio, 2014 Arnaldoa 21 (1): 105 - 118, 2014 ISSN: 1815-8242 Patrones Electroforéticos de proteínas solubles de semillas de Prosopis pallida y Prosopis juliflora “algarrobos” de la Costa del Departamento de La Libertad, Perú Electrophoretic patterns of soluble proteins from seeds ot Prosopis pallida and Prosopis juliflora “carob” of the Coast Department of the Liberty, Peru E a > | ¡Doris Mercado Paredes, Carlos Nomberto Rodríguez £.Carlos León Torres "Facultad de Ciencias Biológicas. Universidad Nacional de Trujillo-Perú. Doris _ mpb0Ohoimail.com; unicarlosohotmail.com; cartaviolabsohotmail.com Cecilia Betzabebardales Vásquez Facultad de Ciencias. Universidad Privada Antenor Orrego. Trujillo-Perú cbardalesvdipao.edu.pe a 21 (1): Enero - Junio 2014 | 105 D. Mercado ef al; Patrones electroforéticos de proteinas de semillas de +osgo/s paloa y Prosooís jullora, La Libertad, Perú Resumen e te trabajo fue determinar P. El foréti Gel de Poliacrylamid de las prot escala (embrión) de Prosopis pallida (Humb. Bonpl. €: ex Willd.) Kunth “algarrobo” y Prosopis juliflora (Sw.) DC. “algarrobo” de la Costa del Departamento La Libertad, Perú, con la finalidad de comprobar, si los caracteres fenotípicos externos, mantienen su diferencia a nivel de fenotipos moleculares. Para tal efecto, las muestras fueron sometidas a electroforesis en placa vertical y buffer Tris- Fuana e de E pH..89, E dsd tiempo 6 horas lográndose 14 fracciones en ambas especies y a la lectura d la más de 20 fracciones en cada especie, las cuales igual te son coincidentes. Por lo cual, concid eramos que bajo las condiciones del presente trabajo, Prosopis pallida y Prosopis juliflora son la misma especie, queda la posibilidad que estudios a nivel de secuenciación de bases del DNA demuestren lo contrario. Palabras clave: Patrones electroforéticos, proteínas, Prosopis pallida, Prosopis juliflora, Departamento La Libertad, Perú. Abstract The purpose of this study was to determine Gel Electrophoretic patterns of soluble proteins Poliacrylamida seed (embryo) of Prosopis pallida (Humb. Bonpl. $: ex Willd.) Kunth “carob” and Prosopis juliflora (Sw.) DC. “carob”, of the Coast Department of the Liberty, Peru, in order to check whether external phenotypic characters maintain their difference molecular level phenotypes. To this end the samples were subjected to electrophoresis in a cantilever and Tris-Glycine buffer 0.05 M. pH. 8.3, T8 * C, 6 hours while achieving 14 fractions in both species and computerized densitometry fractions over 20 species which are also coincident. Therefore we believe that under the conditions of this study, Prosopis pallida and Prosopis juliflora are the same species, the possibility remains that level studies of DNA base sequencing prove otherwise. Key words: Electrophoretic patterns, proteins, Prosopis pallida, Prosopis juliflora, the Liberty Department, Peru. Introducción forma, pubescencia y espacios que separan , los folíolos como caracteres taxonómicos El género Prosopis que abarca unas 28- ebro dia Ñ muy [ guir lasespecies. 45 especies para el mundo, con unas 5-6 P p . ” o Igualmente, las Mores hermafroditas, frutos especies de ellas citadas para el Perú, está o ] Ñ en legumbres modificadas, generalmente distribuido por todas las regiones áridas : ; o do j A carnosas e indehiscentes y muy variables y semiáridas de América, Asia y Africa; - : j en forma, tamaño y color, complementan teniendo a la Argentina como su centro . ] : j los caracteres usados mayormente por la de polimorfismo muy particular y propio ] taxonomía clásica u ortodoxa (Burkart, (Vilela, 1998). 1952; Díaz, 1995). Entre las características que permiten y A o ] j ] Por otro lado, las especies del género delimitar las especies, del género Prosopis se . qe Prosopis, representan recursos naturales citan: al hábito de porte variado, que va de Ñ ] : renovables elementales y fundamentales arbóreo a arbustivo, pudiendo llegar hasta Wi sobre todo para el desarrollo del poblador 20 m de altura y 2 m de diámetro; las ramas Ñ á , rural de la Costa Norte y ciertos valles con espinas o sin ellas, u otras especies con la presencia de púas orig alo largo de las ramas; las hojas bipinnadas, A ea Occidentales e Interandinos del Perú, por células y no e 11 y 1: : y r , % Ñ Recursos Forestales, forrajeros, energéticos alternas cuando jóvenes, y con tamaño, 106 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 D. Mercado e%a/: Pat lectroforéticos de protei na camillac A D, y alimenticios; además, de constituirse en excelentes fijadores del suelo evitando la erosión. Igualmente, es importante recalcar, que por crecer en suelos marginales en condiciones de extrema aridez, sumados a los múltiples beneficios que brindan, constituyen una alternativa promisoria para la rehabilitación a bajo costo de las grandes extensiones de la región de la costa (Aldave $ Mostacero, 1988; Aguirre, 1989). También, debe hacerse de conocimiento que la determinación de las especies, está basada fundamentalmente en los caracteres foliares, florales, del fruto, y del hábito; caracteres fácilmente observables y medibles tanto en el campo como en el laboratorio. Otros autores, además consideran las características de adaptación al medio; las que analizadas y una vez determinada su constancia, pueden tomarse como caracteres igualmente Taxonómicos. A pesar de todo esto, la determinación de especies a través de caracteres morfológicos únicamente aún sigue teniendo serias limitaciones. Por lo que, resulta muy aconsejable se tomen en cuenta otros caracteres más constantes (Barriga, 1988; Vilela € Palacios, 1998). Las especies del género Prosopis, han sido durante muchos años objeto de discusión y duda respecto a su verdadero status taxonómico. Es así, que se proporcionan diversos nombres que aparentemente corresponden a las especies que habitan en la Costa peruana, sin embargo, las muestras de Prosopis denotan diferencias morfológicas, algunas de las cuales coinciden con las descripciones específicas de las obras consultadas y otras no (Ferreyra, 1987). El Departamento de La Libertad posee varias comunidades de “algarrobales” de Virú, Pacasmayo, San Pedro de Lloc, y Chepén, ubicados en las Provincias rosopís palica y Prosoo'rs julítora, La Libertad, Perú. considerados actualmente comunidades relictos por la explotación indiscriminada a la que han sido expuestas, por lo que, requieren de una investigación urgente en varios aspectos, entre los que estarían la determinación taxonómica de sus especies para luego emprender estudios de evaluación y conservación que conlleven a preservar y proteger estas escasas y dispersas comunidades; pues, los estudios que se conocen hasta hoy, sólo están referidos a inventarios florísticos generales sin dilucidar los problemas taxonómicos del género, puesto que, no han llegado a delimitar en forma detallada los taxa pertenecientes a cada bosque (Ferreyra, 1979; 1987; Sánchez, 1984; Rodríguez, 1996). Afortunadamente, la evolución actual de las técnicas empleadas en estudios de la Biodiversidad, desde la sistemática basada en la morfología, hasta el análisis molecular fino de proteínas y ácidos nucleicos pasando por el análisis cromosómico, hacen posible vislumbrar y asegurar que la determinación de las especies se harán con mayor precisión, las que sin duda, dilucidarán las controversias actuales (Parra € Ortiz, 1993; Salas, 1997). E + + 1] y f zas + ] atécnite en gel de Poliacrylamida, que posee un gran poder de sensibilidad y que ofrece una gran ventaja para diferenciar especies estrechamente emparentadas dentro de un género o una familia, está al alcance de los métodos taxonómicos, (Canchachí, 1977). En nuestro medio, la técnica de electroforesis es todavía de poco uso para la sistemática de especies tanto vegetales como animales. Sin embargo, se han efectuado ya trabajos empleando la técnica electroforética en gel de poliacrylamida para obtener electroforéticos de patrones proteínas de semillas tales como: Lupinus mutabilis 21 (1): Enero - Junio 2014 | 107 na camillac A D, Miri: D. Mercado ef al: Pat lectroforéticos de protei rosopís palioa y Prosoo'rs julítora, La Libertad, Perú. “chocho”, Hordeum vulgare “cebada”, Phaseolus vulgaris “fréjol” Capsicum annuum “ají”, proteínas de la harina de “quinua”, “cañihua” y “soya”. Así como, proteínas solubles de “camarón” de río y “monengue” (Olivera 8: Arrascue, 1971; Canchachí éz Arellano, 1974; 1977; Cortez, 1979; Salas, 1997; Chávez, 1997). La interpretación y el valor de la técnica electroforética en gel de poliacrylamida, radica en que, las proteínas de una especie representan una expresión fenotípica a nivel molecular, las que pueden ser separadas en un sistema electroforético, debido a su peso molecular, carga eléctrica entre otros. Constituyéndose por ende, en marcadores de biodiversidad, debido a que la variación de los patrones electroforéticos pueden ser comprendidos en términos genéticos y moleculares, por lo cual, son ampliamente aceptados como una fuente de datos valiosos en evolución, sistemática y genética (Salas, 1997). La sobre la taxonomía de las especies del género revisión bibliográfica, Prosopis, nos permite aseverar que los autores aún no se ponen de acuerdo en determinar si son especies diferentes, o que las diferencias fenotípicas que presentan sólo son consecuencia de los factores 1 1 en las regiones 1 I donde se desarrollan. Por todo lo manifestado en los párrafos anteriores y, con el fin de contribuir a dilucidar estas controversias taxonómicas, se proyectó este trabajo, con la finalidad de establecer patrones electroforéticos en gel de las poliacrylamida de proteínas solubles de las semillas de Prosopis pallida (Humb. Bonpl. $ ex Willd.) Kunth y Prosopis juliflora (Sw.) DC. y así, determinar si en verdad son especies diferentes debido a que mantienen sus características diferenciales fenotípicas 108 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 a nivel molecular, o no. Es decir, determinar hasta qué punto sigue teniendo vigencia el Método Ortodoxo o clásico en la determinación taxonómica, y Cual, sería realmente el aporte o el papel que jugaría la técnica electroforética en la taxonomía. Material y métodos Material Biológico. Extracto crudo de proteínas de embriones de semillas de Prosopis pallida (Humb. Bonpl. $: ex Willd.) Kunth y Prosopis juliflora (Sw.) DC. de la costa del Departamento de la Libertad, Perú (Fig. 1,2,3,4). Métodos: Obtención del embrión: De las vainas de “algarrobo” son extraídas las semillas las cuales mediante acción manual se les elimina el pericarpio, quedando los cotiledones (Fig. 7.) los cuales contienen el embrión, el cual es separado utilizando un estilete (Fig. 5. 6.). Extracción de proteínas: Se empleó 100 mg de embriones y se procedió a la obtención de las proteínas empleando 10 ml de solución extractora (68mMTris-CH pH 8.0;5DS 1%; Glicerol 1% y 2-Mercaptoetanol 4%) en un mortero por 20 minutos, el sobrenadante es tratado con 1 ml de acetona helada, dejándose en reposo por media hora, centrifugado en las mismas condiciones, el precipitado es re suspendido con 0,5 ml de buffer de corrido Tris- Glicerina 0.05M de pH 8.3. Esta solución, se guarda en congelación para ser empleada en los corridos electroforéticos, previa diálisis por 24 horas en el buffer de corrido. Muestra de corrido: Del sobrenadante se toma 0.01 ml al cual se le adiciona dos gotas de glicerina y una gota de azul de bromofenol; de esta mezcla, se toma 0.03 ml para cada corrido electroforético. nda camillac A D, D. Mercado e%a/: Pat lectroforéticos de protei 7 Fig. 1. Árbol de Prosopis Fig. 3. Inflorescencia y hoja de Prosopis pallida rosopís palica y Prosoo'rs julítora, La Libertad, Perú. Fig. 2. Frutos y semillas de Prosopis N a a Fig. 4. Inflorescencia y hoja de Prosopis juliflora Fig. 5. Cotiledón con embrión en su integridad Técnica de corrido electroforético de proteínas en gel de poliacrylamida en placa: Esta técnica se basa en la migración de las proteínas en un campo eléctrico el cual utiliza como soporte un gel, (Poliacrylamida, Fig. 7). La preparación del gel de corrido involucra la preparación de soluciones Stock, que tienen la siguiente preparación (Davis, 1964): Fig. 6. Embrión aislado de Prosopis Stock A: HCI 1N (48 ml); Tris (36,68); Temed (6,23 mi); Agua destilada (100 mi); pH:S/9. Stock B: Hcl 1N; Tris (5,98 g); Temed (0.46 mg); Agua destilada (100m); pH : 6,7. Stock C: Acrylamida (28 g); Bis (07,35 g); Agua destilada (100 m]). Stock D: Acrylamida (10 g); Bis (2,58); 21 (1): Enero - Junio 2014 | 109 D. Mercado ef al: Pat lectroforéticos de protei na camillac da O, Agua destilada (100 ml). Stock E: Riboflavina (0,004 g); Agua destilada (100 mi). Stock F: Sucrosa (40 g); Agua destilada (100 mi). Preparación del gel corrido: La placa del corrido, está constituida por dos tipos de geles: el gel de concentración y el gel de resolución a una concentración de 7% y 25% respectivamente. Cada uno de ellos, tienen una composición diferente que se consigue utilizando las soluciones stock como se indica a continuación: Gel de Concentración: Stock “B” 0,5 ml.; Stock “D” 1,0 ml.; Stock “E” 0,5 ml. Gel de Resolución: Stock “A” 1,5 ml; Stock “C” 3,0 ml. Agua Destilada 1,5 ml. Persulfato de Amonio 6,0 ml. Buffer de corrido: Se utilizó como buffer de corrido el Tris-Glicina de 0.005M, el cual es repartido en ambas celdas de la cámara de corrido (Superior e inferior). El proceso de la electroforesis se realiza a 8 * C en refrigeración, con una intensidad de 2 miliamperios por muestra, por un período de tiempo de 5 horas, al término del cual se corta el circuito eléctrico. Fig. 7. Perfiles electroforéticos de Prosopis pallida y P. rosopís palica y Prosoo's julídora, La Libertad, Perú. Revelado de las proteínas: En esta fase de la electroforesis, se procedió en primer término a la extracción del gel de la cámara de corrido, separando el gel de la placa de vidrio mediante el flujo de agua corriente y colocado en un recipiente, en el cual se adicionó una solución fijadora de proteínas constituida por el azul; de Coomassie al 1% en ácido acético, por 14 minutos; al término de este tiempo se recuperó el fijador y se procedió al decolorado del gel, para lo cual se utilizó una solución de metanol, ácido acético glicerol, agua destilada, (120: 20: 280 mi) respectivamente (Hussain, 1986) hasta que se apreció la aparición de bandas azules que reflejaron la presencia de proteínas. Determinación del Rf.: Luego del revelado de las bandas proteicas se procede a la medición de la longitud de desplazamiento del colorante marcador (ABF), este dato nos da el valor de un frente. Luego se procede a determinar el ] Ar] proteicas separadas en el medio de soporte, tales medidas constituyen individualmente otro frente. La proporción entre la distancia de cada una de las bandas proteicas con el desplazamiento del marcador es lo que constituye la razón proporción de “frentes” 'S ») Buffer Tris-Glicina 0.005 M, pH 8.3 110 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 D. Mercado e/a/: Pat a as nda camillac A D, Miri: rosopís palica y Prosoors julítora, La Libertad, Perú. Gráfico 1. Proteinogramas de P. pallida y P. juliflora (-) Gráfico. 2. Densiometría de P. pallida pen, y se designa representativamente (Rf.). Este es constante para cada sustancia en un solvente dado y bajo las mismas condiciones (Gráfico 1, 2, 3) Tratamiento estadístico: Con los valores obtenidos del Rf. Se obtuvo el promedio aritmético y la desviación estándar de cada una de las bandas de proteína de Prosopis pallida (Humb. Bonpl. € ex Willd.) Kunth y Prosopis juliflora (Sw.) DC. en estudio (Steel € Torrie, 1985.) Resultados En la determinación de los perfiles electroforéticos en gel de poliacrylamida de proteínas de Prosopis pallida y Prosopis juliflora, las características cualitativas de los electroforegramas presentan un número de 14 fracciones según la resolución óptica de la vista humana (Gráfico 1; Fig. 7). Teniendo en cuenta, la distancia de corrido en el gel de resolución desde el polo negativo al polo positivo de 60 mm para Prosopis pallida y de 59 mm para Prosopis juliflora la mitad de la longitud del gel de resolución y el tiempo de recorrido (6 horas) demuestra, que existe fracciones de migración rápida que se desplazan más allá del límite medio (56 mm) y fracciones de migración lenta que alcanzan una migración máxima de 28 mm para Prosopis pallida y Prosopis juliflora respectivamente. 21 (1): Enero - Junio 2014 | 111 Perú. Prosoo/s fulitora, La Libertad Vir. 1U9UPlO PAmua y = DO Dat Ir D. Mercado e/ dl. : [eN Y [o [e H (52) 00 a) < NS [a + <p Ne) a) ¡[A [eN + [») LO ES SE [e IS [a x: [e LO [a (49) [e [e A A a) ¡[e A AN (e) [al [a al [a LO 0) [e [») a] LO [e [e [e] AN ON < DR o Ds ÁH 00 o (59) No) ¡SS (a) ¡SS N No) o 00 oO LO S 00 LO — o o eN [49] o LO a) (99 (un) o A o o N A o LO 00 o o 00 No) o o Y (49) o o "“lalol|=[|ifo|niol|ao si A A A A A A | No] Ño) [on o Bs <Q 00 a) < Is o + < Ñe a) LO A LO o LO BS SE o + A X o LO [e] 109] o [a A A o [eN No] a] o LO 0] o o 00 No o o = (a9] ¡a o [a] a] [eN <— [o o Ly, 152] 00 o o 00 ¡5 o 129) [eN LO o 0] [a] LO o 00 LO SS o e ¡eN 158] o a IS o INS cm A o (99) LO HH o [al o al o LO 0,0) o o Aa LO ¡a o AH|NA|a—eFpio| o pan o]o eprureAÁmerod ap 193 U9 SIS9IOJOMII]S JUETPaAUI SOPrUaIO YIUNA (PITIM Xa 29 duog quin) vp1]¡vd sidoso1¿g ap SIUOMIPAJ SE] IP Fe] DP SIIOJEA :L VIAVL 21 (1): Enero - Junio, 2014 112 Perú. lora, La Libertad, Y PrOSOOIS fill Miri: ua 1U9UPIO PA D camillac A Dat r D. Mercado e%a/: ez6'0 0060 | ZIZ'0 0090 000 | OSO] £€8e0 L9c'0 ZIcO| 0STrO £80'0 0S0'0| ZIO00| €s0'0 09 e£6'0 £880| ZIZO 009'0 000 | 0OSrO0| £€8e0 L9T'0 ZIcO| 0STrO £80'0 0S0'0| ZIO00| £€200 61 056'0 e880| ZIZO 009'0 eeS0O | OSO] £€8€'0 e8sci0 eeco| Z9T'0 £80'0 0S0'0 | €200| ZLO'0 8T 056'0 £880| 00Z'0 009'0 eesg0O| 0OSrvO0| 00y'0 2870 eeco| Z9r'0 00FO| Z900| €s00| ZI00| ZI 056'0 £880| 00Z'0 +L90 ees0O| Z970| 0070 2870 eeco| 4950 00rO| Z900| £€s00] ZI1O'0 91 e£6'0 2980| 00Z'0 e£90 ZISO| Z9Y0| 0070 L9c'0 ¿ICO | 0STrO 00rO| Z900| £€sc00] ZI1O'0 sr e£6'0 2980 | 00Z'0 e£90 ZISO| Z9VO0| £se0 L9c'0 ¿ICO | 0STrO 00rO| Z900| 0S00]| £€20'0 DI e26'0 2980 eEL'0 190 ZISO| Z9VO0| E€sc0 L9T0 ZIZO0| 0STO 00rO| Z900| 0S0'0| 200 eL 2960 058'0 AYAN ¿19'0 ee O] OSO] £€8e0 280 eeco| Z9T'0 00rO| Z900| 0S0'0]| £€£0'0 cr 2960 098'0 170 190 eegO| OSO] LZIvO e8t0| ¿eec0O] Z9L'O £80'0 0S0'0| 200 | ZLO'O TT 9560 0980 | 00Z'0 e290 eeO| OSO] LITO e8T70 eeco| 950 £80'0 0S0'0| 200 | ZLO'O OT e26'0 0580 | 00Z'0 e£90 000 | Z970| ZIVO 008'0 OSO | ero £80'0 0S0'0 | €2z00| ZLO'0 6 e£6'0 e£80| 00Z'0 ee90 000| Z9YO0| 00y'0 00€'0 050] €zrro £80'0 0S0'0| 200 | ZLO'O 8 056'0 e£80| 00Z'0 2190 000| Z9rO0| 00y'0 00€'0 050] €srrOo 00r"O £800 | 0S0'0 | €20'0 L 056'0 e£80| ZIZO 0090 eesO| 0S7r0| 0070 e8TO ZIcO| 0STrO 00r"O £800| ZIO00| €20'0 9 056'0 980| ZIZO 009'0 eegO| OSO] £€8c0 e8T70 ¿ICO | 0STrO 00T"0 £800| ZIO00| €20'0 S 056'0 L980| ZIZ'0 0090 eES0O| Z9VO0| £€8e0 2830 ZIZO| 0STO 00T'0 es00 | €200| ZLO'0 v 2960 2980 eEL'0 ¿19'0 ZISO| Z9VO0| £se0 280 ZIcO| 950 00FO| Z900| €s00] ZI1O'0 € 2960 0S8'0 ¡ATAN ¿190 Z¿ISO| Z9YO0| 0070 ¿930 eeco| 950 e800| Z900| €s00]| ZI10'0 rá 2960 098'0 170 ¿190 ZISO| Z9Y0| 00170 L9T'0 eeco| 9T'0 £800| Z900| €c00]| ZI1O'0 T eprure[Á1DerTog ap [93 US SISIIOJO1JDI]9 IJURTPaAVI SOPTUIO “DA (MS) 110/fyn! sidoso1¿ AP SIUOLIDPAJ SE] IP “Fel IP SILOJLA :Z VIAVL 113 21 (1): Enero - Junio 2014 | D. Mercado ef al: Pat lectroforéticos de proteinas de semillas de %ros00/s palioa y Prosooís julíora, La Libertad, Perú. TABLA 3: Valores de Rf. de las diferentes fracciones protéicas de los electroforegramas de Prosopis juliflora (Sw.) DC. los valores representan los promedios de veinte repeticiones xO S I 0.023 0.008 II 0.033 0.010 II 0.064 0.012 IV 0.092 0.008 v 0.155 0.012 vI 0.228 0.012 vu 0.279 0.011 VIII 0.394 0.012 IX 0.459 0.008 Xx 0.519 0.013 XI 0.615 0.013 XII 0.715 0.014 XII 0.861 0.018 XIV 0.948 0.013 TABLA 4: Valores de Rf. de las diferentes fracciones protéicas de los electroforegramas de Prosopis pallida (Humb. Bonp. €: ex Willd.) Kunth los valores representan los promedios de veinte repeticiones Xx S I 0.024 0.009 II 0.045 0.008 TI 0.078 0.009 IV 0.096 0.008 v 0.163 0.007 vI 0.226 0.008 vu 0:293 0.012 vr 0.403 0.012 IX 0.469 0.008 Xx 0.512 0.013 XI 0.624 0.017 XII 0.756 0.013 XIII 0.843 0.011 XIV 0.953 0.012 114 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 na camillac A D, Miri D. Mercado e%a/: Pat lectroforéticos de protei En la Fig. 7, se muestra dicho aspecto, ambas muestras presentan fracciones de desplazamiento lento correspondientes a las fracciones l, IL, III IV, V, VL VIL, VIIL IX, y las fracciones X, XI, XII, XIII y XIV de desplazamiento rápido. Corroborando estos hechos, consecuentemente los valores de medición relativa (Rf.), (tabla 1 y II) calculados en base a una mayor o menor distancia de desplazamiento en un mismo tiempo, existe una relación directa, entre las dimensiones reales de las distancias recorridas por cada banda de proteína y la medición relativa que son características para cada fracción de proteína del electroforegrama. Estos valores calculados en ambas muestras son muy similares tal como se puede apreciar en las tablas III y IV. Las lecturas de los electroforegramas al densitómetro computarizado nos muestra un mayor número de fracciones (> 20) en cada una de las muestras, como lo demuestran las gráficos 2 y 3; pero, como puede apreciarse los picos del gráfico, son coincidentes para cada fracción proteica en ambas especies. Discusión Según los resultados obtenidos en el presente trabajo, se demuestra, que bajo condiciones experimentales de laboratorio, los extractos de proteínas solubles de embriones de semillas de Prosopis pallida (Humb. Bonp. é ex Willd.) Kunth y Prosopis juliflora (Sw.) DC. presentan, una marcada similitud en el número de fracciones proteicas. Asimismo, la determinación del Rf. nos muestra, que el número de fracciones de migración lenta y rápida son similares. Este resultado, se asemeja a los resultados encontrados por Parra éz Ortiz, (1993) al analizar proteínas de semillas de rosopís palica y Prosoo'rs julítora, La Libertad, Perú. variedades de Zea mays “maíz”. Los diferencia marcada en el número de resultados, no reflejan una fracciones proteicas en las especies en estudio (Prosopis pallida y Prosopis juliflora), esto podría deberse en parte, al tipo de muestra empleada para el presente trabajo, el embrión, el que ha sido empleado en su estado de latencia, estado en que es probable no se encuentren manifestadas las proteínas que podrían dar las características fenotípi ias d a especie. Como se y y y y conoce, los fenotipos pueden ser producidos por sistemas genéticos diferentes (sistemas poligénicos), los cuales tienen la capacidad de responder adaptativamente frente a un amplio rango de variaciones de factores ambientales (Kirpichnikov, 1973; Vilela € Palacios, 1998). El embrión es el primer estado de un organismo y muchos de los cambios fenotípicos se dan en el transcurso de desarrollo y dichos cambios operan a nivel molecular (proteínas) estarían correlacionadas con la las cuales intensa organogénesis de un organismo completo (Duke €z Pantelouries, 1963). Debemos considerar, que el establecimiento de los modelos electroforéticos de los constituyentes proteicos de un organismo, pueden variar dependiendo de qué parte se toma para el estudio, como el caso particular del presente estudio (embrión). El número de fracciones que muestra la lectura densitométrica y, que no se aprecian ópticamente en los electroforegramas, puede deberse a la baja concentración de proteínas presentes en la muestra de corrido. Existe la posibilidad de una mejor extracción de proteínas, logrando una mejor 21 (1): Enero - Junio 2014 | 115 na camillac A D, D. Mercado ef al: Pat lectroforéticos d tel nitidez de las fracciones, sin embargo, el número de estas es la misma en ambas muestras. Por los resultados obtenidos, podemos afirmar que, bajo las condiciones del y Prosopis julifiora son la experimentales presente trabajo Prosopis pallida misma especie; dejando la alternativa que posteriores trabajos a nivel de secuenciación del DNA demuestren lo contrario. Conclusiones e Los electroforegramas de las proteínas de embrión de Prosopis pallida (Humb. Bonp. $ ex Willd.) Kunth, y Prosopis juliflora (Sw.) DC, muestran que son la misma especie. e La poliacrylamida, electroforesis en gel de permite determinar “3 = presenci a y pequeñas de proteínas. e La técnica de electroforesis, puede ser aplicada en la caracterización y sistematización de vegetales en las primeras etapas de desarrollo Literatura Citada Aguirre, A. 1989. 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Mercado ef al: Pat 118 | foréticos de proteinas de semillas de Prosopís pallida y Passiflora juliflora, La Libertad, Perú. 21 (1): Enero - Junio, 2014 Arnaldoa 21 (1): 119 - 126, 2014 ISSN: 1815-8242 Used Ethnobotany of medicinal plants by inhabitants of Al-Mafraq, Jordan Uso Etnobotánico de las plantas medicinales por los habitantes de Al-Mafraq, Jordania SALEH AL-QURAN Dept.of Biology, Mutah University, Karak, Jordan salquran9gmail.com 21 (1): Enero - Junio 2014 | 119 Al-Quran: Used Ethnobotany of medicinal plants by inhabitants of Al-Mafraq, Jordan Abstract All medicinal plants showed the therapeutic effects as analgesic/stimulant by the inhabitants of Al-Mafraq in the northern parts of Jordan during March 2011 to May 2013 were recorded and listed with full information. A total of 42 plant species belonging to 22 families are identified which are being used by the people of the study area. Data collected absolutely as the outcome of the methodology relied predominantly on qualitative tools such as informal meetings with the local people, open discussions and observation, which enabled the presentation of accurate account of knowledge routed via oral sources. The medicinal plants investigated are divided into eight main categories relative to their own mechanism of effect. The present study provides baseline data on internal therapeutic properties of native medicinal wild plants that can be more protected from over exploitation from one side, and further investigated by pharmaceutical industry for screening new active compounds from another side. Key words: Ethnobotany, medicinal plants, uses, Al-Mafraq, Jordan. Resumen Todas las plantas medicinales mostraron fectos t éuticos como analgésicos / estimulantes en los habitantes de Al-Mafrag, en la región norte de flama durante el periodo de marzo 2011 a mayo 2013, según se registra con información detallada. Un total de 42 especies de plantas pertenecientes a 22 familias han sido identificadas, las cuales son de uso de los pobladores del área de estudio. Los datos han sido colectados mediante una metodología basada predominantemente en herramientas cualitativas, tales como reuniones informales con los pobladores locales, discusiones abiertas y observación, lo cual permite la presentación de un registro preciso de conocimientos provenientes de fuentes orales. Las plantas medicinales investigadas se dividen en 8 categorías principales de acuerdo a sus mecanismos de efecto. El presente estudio brinda una línea base de datos sobre las propiedades terapéuticas internas de las plantas silvestres medicinales nativas que pueden ser mejor protegidas de la sobreexplotación, por un lado, e investigadas con mayor profundidad por la industria farmacéutica para detectar nuevos componentes activos, por otro lado. Palabras clave: Etnobotánica, plantas medicinales, usos, Al-Mafraq, Jordania. Introduction This topographical diversity of Jordan, a : which creates varied ecological conditions Jordan territories are located in the ía e ! . : , within a limited area contributes to this center of the middle east between longitudes 350 40' and 390 E and between latitudes 290 30” and 340 N with total area estimated in approximately of 90 thousands of square wealth of plant diversity especially at the level of plant genera and species, so Jordan is of great interest because it is the meeting 1eil , icndi de a se place of the Mediterranean, Irano-turanian, ilometers, extending in the transition Ñ . . ] 5 , h Saharo-arabian regions and the Nubo- region the middle east countries, Syria and nd Leb , h1 sacarla sudanian regions. Because Jordan is situated ebanon from north, Iraq and Saudi Arabia . . . A A at the junction of these different phyto- south and Palestine from the west. Jordan SA OO O 0 , Ñ Afro-subtropical and Mediterranean, it acts generally exhibited the climate of desert or semi-desert with an arid climate, with few A d of Asia, Africa and Europe, so the flora large natural wetlands, (Al-Eisawi, 1982, Pp 2012; Al-Eisawi et al., 1998; Friedman et al., 1986; Al-Quran, 2009; Zohary, 1973; Zohary $ Feinbrun-Dothan ,1962-1988). includes a mixture of these elements together extending from: Juniperus phoenicia, Cupressus sempervirens, Pinus halepensis, Quercus calliprinos to Ziziphus spina-christi 120 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 Al-Quran: Used Ethnobotany of medicinal plants by inhabitants of Al-Mafraq, Jordan (Friedman et al.,1986; Heinrich, 2000; 2002; Karim € Al-Quran, 1988; Al-Eisawi, 1982; Al-Quran, 2005; 2007; Zohary, 1973). Indigenous remedies now days occupying a good position since it is safe and inexpensive, which gives it popularity among both rural and urban areas. So the information about ethnic groups or indigenous traditional medicine has played a vital role in the discovery of active constituents from medicinal plants. The study area is located within Al- Mafraq territories at an elevation of 600 m above sea level. This area is dominated by ledit and semi arid habitat since it isinfluenced by the westerly fronts' currents associated with winter precipitation and the easterly desert climate, so the cold winter is the general climate. The mean annual precipitation is of 3530 mm in winter while the spring months tend to be wetter with average precipitation not exceeding 200 mm. The mean summer temperature is 30 -C while 6-15 -C is the average winter temperature (Al-Genidi, 1992; Lemon et al., 2003; Jones € Clarke, 1990). The main aim of the present study was to document the indigenous therapeutic uses of the investigated medicinal plants used as internal therapeutic effects by the local people living in this area for which no literature is still available concentrating on this special issue. Material and methods The researcher methodology relied predominantly on qualitative tools such as informal meetings with the local people, open discussions and observation, which enabled account of knowledge routed via oral sources (Al-Quran, 2009). The study area is located within Al-Mafraq region which the presentation of accurate is dominated by Mediterranean habitat from one side, and the semi arid habitat from other side, so the cold winter and the semi arid summer is the general climate. The vegetation cover is mainly of saharo- arabian type dominated by desert plants like Anabasis articulata, Artemisia herba alba, Noea mucronata, Chenopodium species, Salsola species, Sueda species and Zilla spinosa AN 11 tard [ fwild medicinal plants that classified and identified were constructed in form of table containing the relevant information. The survey was unique and conducted during the period from march 2011 to may 2013 from four sites of the study area depending on collection of voucher specimens, identifying and classifying of these edible plant specimens. The field work is including also in addition to the field observation, the photographing of the specimens in the field directly. The four study sites were conveniently selected based on vegetation cover and altitudes, transect walks were carried out with local people for collection of correct species with their original habitat. Collected data was also cross checked in different areas from local informants either by showing the plant specimen or telling local names to the informants Specimens were identified with the help of available literature (Al-Quran, 2005; 2007;2009). Results All results wild medicinal plant species are listed with full concerning the information mentioning scientific names; family; local names; parts used; method of administration (Table 1). Discussion Internal therapeutic effects of plants is too broad with some times contradictory concepts, beyond them many therapeutic 21 (1): Enero - Junio 2014 | 121 Al-Quran: Used Ethnobotany of medicinal plants by inhabitants of Al-Mafraq, Jordan effects are categorized especially for intestinal colic, abdominal inflammation, hypoglycemic, haemostatic, remedy for dissolving the urinary stones, in hepatic and billary diseases, as anti diarhoeal, anti diabetic, cathartic, for gastric and intestinal ulceration, for amenorroea, as cardiac tonic, for fluid retention, for jaundice, as styptic, for spleen, gastric, hepatic and renal disorders, cholagogue, as anthelmintic, for heart attack, stopping bleeding of pulmonary and uterine origin, as antiepileptic, antitussive, emollient for intestinal mucosa, hypnotic, for urinary, bladder and kidney inflammations, anti dysenteric, antispasmodic, for diabetic, emmenagogue. In the present analysis, biliary stones, anti leucorrhoea and 42 plant species belonging to 22 families have been documented for their internal therapeutic uses. All of the investigated species were wild. The most commonly reported Liliaceae, Labiatae, Rosaceae, Compositae, families were: Graminae, Leguminosae and Umbelliferae. The plant parts used ranged from leaves (20), bulbs (2), whole plant (2), aerial parts(10), fruits (6), and vegetative parts (1). The method of administration falls into seven categories; paste, cream, juice (syrup), cooked as food, mixed with dairy products, pickled and decoction. The soaking in hot or warm water either for fresh or dried specimens. Although this knowledge is well-known, but some plant indigenous type of species are still not known especially with regard to the internal therapeutic properties. The therapeutic use of plant species reported with internal uses properties is rarely reported specifically as in this report. So, screening for active chemical constituents from these investigated wild medicinal plants is considered the major step towards establishing a good knowledge 122 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 base. Further more; testing their biological activities against infectious organisms is the ultimate need in order to establish scientific ground for searching new active compounds. Present investigation provides baseline information to screen out biological activities of these valuable plants in order to develop new analgesic and stimulant medicines from plant origin. The mechanism of plant effect as analgesic and stimulant is varied among the plants, (1) some plants have showed activity against intestinal colic, intestinal ulceration and intestinal disorders like Aaronsohnia factorovskyi Warb. et Eig, Achilleae tomentosa L., Cyperus longus L., Matricaria chamomilla L., Malva sylvestris L. and Pulicaria dysenterica L. (2) Some medicinal plants have used for hepatic disorders like Chenopodium album L. and Linaria cymbalaria Mill. (3) Some medicinal plants are anti diabetic and hypoglycemic like Artemisia herb-alba L., Sarcopoterium spinosa (L.) Spach. and Citrullus colocynthis (L.) Sch. (4) Some medicinal plants investigated used for abdominal inflammations, fluid retention, urinary and gastric disturbances and for jaundice like Althaea rosea (L.) Cav., Ecballium elaterium (L.) A. Rich., Onopordum acanthium L., Oxalis corniculata L., Polygonum persicaria L., Teucrium polium L. and Spartium junceum L. (5) some medicinal plants have expectorant effect in amenorrhoea as emmenagogue, leucorrhoea as leucogogue, cholorrhoea as cholagogue like Heliotropium europaum L., Rubia tinctorum L., Sorbus aucuparia L. and, Desmostachya bipinnata (L.) Stapf (6) some medicinal plants have direct stimulation effect on heart as cardio tonic like Digitalis purpurea L., Lallemantia iberica Al-Quran: Used Ethnobotany of medicinal plants by inhabitants of Al-Mafraq, Jordan (M. B.) Fish, Scilla autumnalis L. and Urginea martitma Barker (7) some plants are haemostatic, anti diarrhoeal, antiepileptic, anti dysenteric and stops bleeding of internal organs like Capsella L., Arundo donax L., Chenopodium album L., Cistanche tubulosa Schwi, Ecballium elaterium (L.) A. Rich., Lamium amplexicaule L., Leontice leontopetalum L. and Senecio vernalis L. bursa-pastoris (8) some plants are used for renal calculi or stones, renal disorders, biliary stones, biliary disorders and bladder disorders like Galium aparine L. Herniaria hirsuta L., Linaria cymbalaria Mill., Matricaria chamomilla L., Ononis spinosa L., Onopordum acanthium L. , Plantago lanceolata L. and Sarcopoterium spinosa (L.) Spach. Literature cited AL-Eisawi, D. M. 1982. 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'¡dejs . o A , , SUP] pue s1may IPUTUILIO) sser3 edny |, ” zL 2AUY D[S SY USAL] “PIXNLOS “PAIHE O (TD) vqyuuidig vhyovisomso q pl uUOpe.139n A [eugsaqur pue syjred 9Arejo3oA area deJadÁ) adnIpy “1 sn$uo] sniadAo) “TI 91.9seg JOH papasu IPIeyjeo ; EN ñ : rsasuaym ajsed uns se use) “paxeos “paq |: omeqerpnuy spoos SLODe qna) ajdde 1019 | “ys (1) si4uhoojoo sn] po OL , a [2904 Herp quUy juerd aJOUM IPLIDRYIULOIO IAPIVIOOIG IMUDS 1SONQNI IYIUVISIO) 6 34] UL USAR] [eo pue [009 “paxeos “ysa14 : aa La SIAPO aeooerpodoua uy Je “1 ny umipodouar a 31H JUO USALI [LIO pue TOO) “paxeos “ysa1g | pue onedog ul 1 p 49 a! ral P 19 8 sauojs Áreurn dd ZutArossIip syred [eLo y aeysodulo,) Axmejua7) “] SIJUJIS]OS VIANVJUI) Ll 3UIL] JUO USALI [LIO pue [OO “paxeOS “YS31H i j ¡ : es 103 Ápauay E aa a PISOUIPH S)M14 IPIJNID pasmde7) "71 s1107sud-vs1nq v]Jasdvo) “9 apo 9AIsuoHodÁH jueld aJ0yM aeo0eIadÁ) poom ULIOM *] xVUOp Opunay “G au JUO USAR] [LIO pue TOO “paxeOs “ySa14 y il onu A¡8o0d A syred [eLo aeyisoduro 00M UJSYMOS POr *] 1Q/9-99Y VISIMI]A ; oy] UL USAR] [910 pue 100) “paxeos “yso1y j I y 31e0 [0LIO y Y DPP ymos p]olH “1 0q]0-9494 VISTA Y v Ape ccoo e SI9MO]] PUR SIALO ILIDPAJe MO][8UL aso AR) (7) vasos va, E au] UO USE] Je1O pue [000 “paxeos “panq | ¡e urumopay BP 1 TEM tl pl INMI uv € dd IO) [eunsaju S9OALO aeysoduo 1OJ[! *] USOJUAUIO] IVA] YO : QUIN DUO USAR) [e10 PUR 00) “paxeos “parig [[O9 Teupsa3uT 1 Y D HOJA “1 107 1 ava po y C as "9109 [eunsajur syred [ento aeyisoduo A[FUOUILYI MOT[A SP EM, Ñ au JUO USAR] [LIO pue [OO “paxeos “ysa14 dd aii ia e ) E A HPA 1A3s0010J9wÍ VIUYOSUOIVY E ÁmIxoj] jo asnexaq so3esop [peuus Átaa UL U9)8] ¿SN SI0e:9X3 juejd auos :u0yuaye S9S(] [euaJu] pas Mea Árruey SJULLU UOUIUIO) somads jue] pes F UO Pe astunpy UONe.ISIUMIPe pue sasn [euzojur *pasn y1ed OX9UY 11m aA1MMaAdeaT TmTa JT. 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Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú Resumen Se presenta una lista anotada de 527 especies de plantas leñosas arbóreas en cinco parcelas permanentes de 1.0-ha a través de la gradiente altitudinal desde los 250 a 2230 m en la Reserva Comunal El Sira, ubicada entre las regiones de Ucayali, Huánuco y Pasco, en la Selva Central del Perú. Palabras clave: Parcelas permanentes de árboles, Reserva Comunal el Sira, Perú. Abstract We present an annotated list of 527 species of woody trees in five plots of 1.0-ha recorded along an altitudinal gradient from 250 to 2230 m in the Communal Reserve Sira, located between the regions of Ucayali, Huanuco and Pasco in Peru central jungle region. Key words: Tree plots, Communal Reserve Sira, Peru. Introducción La Reserva Comunal El Sira, se encuentra entre las regiones Ucayali, Huánuco y Pasco, Perú. Sus dimensiones alcanzan 180 km de largo y 85 km de ancho y abarca una superficie protegida de 616,413 hectáreas. Posee una cordillera cubierta de bosques aislados naturalmente entre los ríos Ucayali, Tambo, Pachitea y Pichis. El estudio y la conservación de la biodiversidad de los bosques tropicales del Perú, considerando aspectos de protección del clima, tiene como propósito principal establecer la línea base para un sistema de monitoreo del impacto de los cambios climáticos en la biodiversidad protegida en la Reserva Comunal El Sira; para aportar estrategias nacionales y globales de mitigación y adaptación al cambio climático. Bajo este marco, uno de los objetivos principales es, el de establecer un sistema de monitoreo de la biodiversidad y el clima y poder dar un seguimiento a los cambios que se producirán en el futuro, tanto en los bosques de la llanura amazónica como en los bosques transicionales y bosques montanos, por lo que, es de indispensable importancia el establecimiento de parcelas permanentes de monitoreo a través de gradientes altitudinales y estudios asociados a los 128 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 flujos del carbono. Los bosques andinos particularmente los montanos, pre-montanos y amazónicos constituyen el mayor reservorio mundial de carbono, y son excepcionalmente ricos en especies, alta biodiversidad, alto nivel de endemismos, especies con rangos estrechos de distribución. Ellos están bajo presión por la tala, la conversión y la explotación de los recursos naturales. Se enfrentan a un clima más cálido y un ambiente cambiante. Debido a la gran escala de la Amazonía, estos factores tienen el potencial de modificar significativamente la carga global de gases de efecto invernadero (CO,, CH,) en la atmósfera, la química atmosférica de la tierra, el clima y la biodiversidad total del planeta. La Amazonía, es potencialmente la región más importante del planeta, para el ciclo del carbono unido al sistema climático que afecta a toda la vida. Estudios recientes sobre el análisis espacial de las amenazas a la Amazonía (Malhi et al., 2009 Zelazowski et al. 2011; Feeley et al., 2012) han puesto de relieve y asignan el riesgo relativo de las diferentes regiones de la Amazonía al cambio climático, y las comparan con la amenaza de la deforestación. Esto, permite A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú la identificación de las zonas vulnerables y la priorización en la planificación de la conservación para facilitar la migración y, dispersión de especies vulnerables a regiones más húmedas y frías. Estos estudios, también han destacado la importancia de las regiones montañosas como los Andes, como un refugio potencial en un mundo que se calienta. Parcelas permanentes a través de gradientes en los andes, como la que podemos observar en el Parque Nacional de Manú, Yanachaga Chemillen y ahora la Reserva Comunal El Sira, vienen a constituir laboratorios naturales para el cambio climático. Metodología El área de estudio está restringida a la región de Huánuco, específicamente la Reserva Comunal El Sira, se encuentra en la Provincia de Puerto Inca, el Distrito de Yuyapichis. Este primer catálogo incluye las especies de árboles que fueron colectados en las cinco parcelas permanentes de 1.0-ha instaladas entre el 2010 y 2011 en la Reserva Comunal El Sira. Todas las especies citadas, tienen como referencia el número de colecta y el colector en este caso el Biólogo Luis Valenzuela Gamarra. Además, se incluye el les ¡ : A: 1 Las parcelas permanentes, están ubicadas en el denominado Transecto Yuyapichis en las coordenadas UTM: RCSO1: S 0524855 W 8953153 a los 845 msnm (Bosque de transición), RCS02: S 0527913 W 8957465 a los 1391 msnm (Bosque montano), RCS03: S 0529019 W 8958479 a los 1568 msnm (Bosque nublado), RECS04: S 0531260 W 8958205 a los 2230 msnm (Bosque esclerófilo), RESO05: S 0507707 W 8936908 a los 251 msnm (Bosque de llanura amazónica). Las en forma aleatoria utilizando mapas parcelas, fueron establecidas proporcionados por el proyecto “Conservación de la Biodiversidad en los Bosques Tropicales del Perú, considerando aspectos de protección del clima” ECOSIRA (Fig. 1). Este proyecto es coordinado por GIZ-SERNANP-MINAM, en la Reserva Comunal El Sira. Los árboles citados en el presente catálogo, corresponden a los inventarios de los árboles de cinco parcelas permanentes de 1.0-ha, protocolos de la Red Amazónica de Inventarios Forestales (RAINFOR), www. rainfor.org; establecidas siguiendo los http: / /www.geog.leeds. ac.uk/ projects /rainfor/pages/manuals eng.html). Según esta metodología, se incluyen todos los individuos mayores e iguales a 10 cm de diámetro a excepción de la parcela 04 entre los 2230 msnm, donde se incluyeron también individuos mayores e iguales a 5 cm de diámetro ya que se trata de un bosque esclerófilo con alta densidad de árboles pequeños. Resultados Nuestros resultados preliminares de la flora arbórea de la Reserva Comunal El Sira indican que está compuesta por 527 especies, distribuidas en 211 géneros y 76 familias. Este número de especies es considerablemente alto, para un área pobremente explorada y colectada florísticamente, además que los resultados solo corresponden a las cinco parcelas permanentes de 1.0-ha, sobre un total de 3054 colecciones botánicas realizadas el 2011. Otro aspecto importante que se debe de mencionar es que, en base a las 527 especies registradas, 249 (47.25%) están identificadas hasta el nivel de especie, 52 (9.87%) definidas como vel sp. aff. (especie a fin) o cf. (confrontar con) y 226 (42.88%) solamente identificadas a nivel de género; lo que nos demuestra que el conocimiento de los árboles a nivel específico es menos 21 (1): Enero - Junio 2014 | 129 A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú del 50%. Aunque, es una cifra inicial alentadora, también evidencia nuestro escaso conocimiento de la flora arbórea y la flora en general de esta área muy biodiversa. De acuerdo a la identificación y revisión de las colecciones botánicas la parcela ubicada a los 251 m, el Bosque Amazónico en el Área de Conservación Privada Panguana, como se puede observar en la fig.1, es la más conocida florísticamente. Esto se debe a estudios previos de parcelas establecidas en la llanura Amazónica, tanto en norte de la Amazonía Peruana (Loreto) y el Sureste de la Amazonía Peruana (Madre de Dios). La mayor similaridad florística se da con las parcelas permanentes establecidas en el Parque Nacional Yanachaga Chemillen ubicadas en la región Pasco en la selva central de Perú, que están localizadas también a través de una gradiente altitudinal entre los 400 y 3200 msnm. Cabe destacar, que la parcela 01 que se encuentra a partir de los 845 msnm su composición florística es mucho más compleja para su identificación, ya que, es una altitud de transición entre el llano amazónico hacia los bosques pre-montanos, una apreciación previa, nos resulta en una mezcla compleja, y florísticamente es mucho más importante, ya que se puede observar especímenes no registrados anteriormente, un potencial para el registro de especies nuevas y endémicas para el área, por lo que, resulta de prioridad posteriores exploraciones en estas altitudes y obtener material botánico fértil (flores y frutos), ya que nunca antes se han desarrollado colecciones botánicas intensivas. Las siguientes parcelas permanentes (02, 03 y 04) entre los 1391, 1568 y 2230 msnm respectivamente, son las menos florísticamente, el conocidas mayor 130 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 porcentaje solo está identificado a nivel de género, ya que no se cuenta con colecciones identificadas de referencia previas en el área O áreas adyacentes como el Parque Nacional Yanachaga Chemillen y la Reserva Comunal Yanesha. De acuerdo a lo que afirman los autores, van der Werff £ Consiglio (2004), la zona entre los 1500 y 3500 msnm es la menos conocida florísticamente y, no solo el estrato herbáceo y arbustivo es un potencial de descubrimiento de especies nuevas, sino también, en el estrato arbóreo, como se puede observar con las especies nuevas para Lauraceae y Araliaceae reportados en el Catálogo de los Árboles y Afines de la Selva Central del Perú (Monteagudo éz Huamán, 2010). Cabe mencionar que la parcela 04 a los 2230 msnm, fue establecida en un bosque esclerófilo, siendo una de las primeras parcelas permanentes en este tipo de bosque en el Perú, por lo que, el conocimiento botánico y florístico es muy pobre. Otro aspecto, que es determinante para que la identificación a nivel de especies sea aún menor al 50% es que, más del 96% de las colecciones botánicas en parcelas permanentes en bosques de selva baja, pre- montano y montano son estériles (sin flor o fruto). Uno de los aspectos puntuales y, que nos está permitiendo la elaboración de esta serie de catálogos de árboles y afines tanto para la Selva Central del Perú, La Reserva Comunal Yanesha (Valenzuela et al. en preparación), de (Valenzuela et al. en preparación) y como Santuario Histórico Machupicchu ahora para la Reserva Comunal el Sira, es la necesidad crucial de hacer colecciones de todos los individuos que fueron plaqueados y medidos en la fase de instalación de las parcelas permanentes y también en la colección de los nuevos individuos mayores e iguales a 10 cm de diámetro (reclutas) A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú que entran en las remediciones de parcelas con largos procesos de monitoreo. Esta información, de la biodiversidad de cada parcela a nivel de familia, género y especie, nos va proporcionar una mejor calidad en las estimaciones de la biomasa y carbono almacenado en los bosques tropicales, a la vez, del estudio futuro si la biodiversidad de los árboles puede ser afectada por eventos de sequías y cambio climático. Adicionamos información referida a las parcelas permanentes. La tabla 1 incluye información sobre los diferentes tipos de bosque, número de especies, área basal y biomasa. Como se puede observar en la tabla, se puede destacar particularmente la disminución de especies a través de la altitud, más algunas variables como el área basal y la biomasa aérea desde el llano amazónico y los bosques pre-montanos y montanos revisten una importancia de reservorio de carbono en estos bosques. .- Se muestra la información de las diferentes variables de las 05 parcelas permanentes de 1.0-ha, a través de la Tabla 1 gradiente altitudinal Parcela Tipo de Altitud m Individuos Familias Especies Área Basal Biomasa Bosque m?-ha Ton/ha RCS-05 Bosque de 251 623 50 208 23.23 228.10 Llanura Amazonica RCS-01 Bosque de 845 649 48 155 27.15 286.13 Transición RCS-02 Bosque 1391 764 41 135 25.53 260.59 Montano RCS-03 Bosque 1568 734 36 83 31.65 224.37 Nublado RCS-04 Bosque 2230 482 20 42 4.54 21.64 Esclerófilo Más información sobre de cálculos de biomasa, carbono, tasas de mortalidad, tasas de reclutamiento, tasas de recambio, diversidad y composición florística de las parcelas permanentes de la Reserva Comunal El Sira, están ahora disponibles en línea en la base de datos Forest-Plots.net (Lopez-Gonzalez et al., 2011): http:/ /www. forestplots.net/ Este primer catálogo de los árboles y afines de la Reserva Comunal El Sira, contribuye con dos registros de especies nuevas para el Perú, Bonyunia pulchra Ricketson, J. R. Grant € Liesner (Loganiaceae) y Welfia alfredii A. J. Hend. 8 Villalba descritas y que fueron antes registradas (Arecaceae), recientemente para la región de Amazonas y Huánuco, Pasco y Ucayali respectivamente. También, se incluyen una especie nueva para la ciencia, aun no publicada que se indica con (n. sp.); aunque algunas están indicadas con un nombre en los herbarios, por razones obvias, estos nombres no se incluyen en la lista hasta que sean formalmente Tachigali (Fabaceae), (com pers H. van der Werff). publicadas; 01 De las 527 especies de árboles, al menos 13 especies están presentes con más de una categoría infra específica, estas son: Euterpe precatoria var. precatoria (Arecaceae); Protium divaricatum subsp. divaricatum (Burseraceae); Caryocar glabrum subsp. glabrum (Caryocaceae); Hevea guianensis var. guianensis (Euphorbiaceae); Diplotropis purpurea var. purpurea (Fabaceae); Cabralea 21 (1): Enero - Junio 2014 | 131 A. Monteagudo ef al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú Peligroso 1570 m Bosque de nubes le. IA 1 s Pi | 150m dl 255 m (Y Huangana2 429 qe ; 1.0-ha a través de la as Aces el arduo a de establecimiento, A medición, colección y herborización, realizado en los diferentes campamentos establecidos en el Transecto Yuyapichis entre el 2010 y 2011. canjerana subsp. canjerana (Meliaceae); Brosimum acutifolium subsp. acutifolium (Moraceae); Richeria grandis var. grandis (Phyllanthaceae); Chrysophyllum sanguinolentum subsp. spurium (Ducke) T. D. Penn., Micropholis guyanensis subsp. Sarcaulus — brasiliensis (Sapotaceae); gulanensis subsp. guianensis (Urticaceae); Leonia glycycarpa var. glycycarpa (Violaceae). guyanensis, subsp. brasiliensis Pourouma Nuevas adiciones a nivel de la flora arbórea de la Selva Central con respecto al catálogo de Monteagudo € Huamán del 2010, incluyen las siguientes 60 especies: Guatteria hyposericea Diels vel sp. aff., Oxandra riedeliana R. E. Fr. (Annonaceae); Aspidosperma spruceanum Benth. ex Mull. Arg. (Apocynaceae); Dendropanax arboreus 132 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 (L.) Decne. € Planch., Schefflera patula (Rusby) Harms (Araliaceae); Astrocaryum chambira Burret (Arecaceae); Cordia bicolor A. DC. (Boraginaceae); Protium robustum (Swart) D. M. Porter vel sp. aff. (Burseraceae); Anthodiscus pilosus Ducke (Caryocaraceae); Hirtella elongata Mart. $ Zucc. vel sp. aff. (Chrysobalanaceae); Tovomita laurina Planch. € Triana (Clusiaceae); Weinmannia cochensis Hieron (Cunoniaceae); Alchornea latifolia Sw. vel sp. aff., Sapium stylare Múll. Arg. vel sp. aff. (Euphorbiaceae); Abarema floribunda Barneby € J. W. Grimes, Apuleia leiocarpa (Vogel) J. F. Macbr., Inga stipularis DC. vel sp. aff., Ormosia amazonica Ducke, Ormosia (Spruce ex Benth.) larecajana Rudd, Parkia igneiflora Ducke, Pseudopiptadenia suaveolens (Miq.) J. W. Grimes, Swartzia cuspidata Spruce ex Benth. A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú vel sp. aff., Tachigali chrysophylla (Poepp.) Zarucchi € Herend. vel sp. aff. (Fabaceae); Vismia amazonica Ewan, Vismia macrophylla Kunth arboreum (Hypericaceae); (Benth.) Beilschmiedia sulcata (Ruíz $ Pav.) Kosterm. Hyptidendron Harley (Lamiaceae); vel sp. aff., Nectandra viburnoides Meisn. vel sp. aff., Pleurothyrium intermedium (Mez) Rohwer vel sp. aff., (Lauraceae); Eschweilera gigantea (R. Knuth) J. F. Macbr., Gustavia hexapetala (Aubl.) Sm., Lecythis pisonis Cambess. (Lecythidaceae); Bonyunia pulchra Ricketson, J. R. Grant é Liesner (Loganiaceae); Quararibea wittii K. Schum. $ Ulbr. (Malvaceae); Miconia elaeagnoides Cogn. (Melastomataceae); Trichilia poeppigú C. DC. (Meliaceae); Brosimum acutifolium subsp. acutifolium, Ficus nymphaeifolia Mill., Ficus paraensis (Miq.) Mig. vel sp. aff., Maquira coriacea (H. Karst.) C. C. Berg, Gaudich., pileata W. C. Burger (Moraceae); Virola flexuosa A. C. Sm., Virola mollissima (Poepp. ex A. DC.) Warb. vel sp. aff. (Myristicaceae); Myrsine umbellata Mart., Stylogyne ambigua (Mart.) Mez vel sp. aff. (Primulaceae); Piper Sorocea guilleminiana Sorocea arboreum Aubl. (Piperaceae); Coccoloba mollis Casar (Polygonaceae); Elaeagia karstenii Standl., Semaphyllanthe megistocaula (K. Krause) L Anderson, Schi ly | lioid (Standl.) Kainul. €: B. Bremer (Rubiaceae); Zanthoxylum ekmani (Urb.) A. H. Liogier (Rutaceae); Talisia cerasina (Benth.) RadIk. vel sp. aff. (Sapindaceae); Pouteria aubrevillei Bernardi vel sp. aff., Pouteria cladantha Sandwith, Pouteria vernicosa T. D. Penn. vel sp. aff. (Sapotaceae); Solanum lepidotum Dunal (Solanaceae); Urera caracasana (Jacq.) Gaudich. ex Griseb. (Urticaceae); Paypayrola longifolia Tul. vel sp. aff., Paypayrola grandiflora Tul. (Violaceae). Por lo tanto, la flora arbórea de la Selva Central del Perú, ahora se incrementa a 1468 especies. Las comparaciones que podemos hacer con otras floras o flórulas de regiones más cercanas como con las 1408 especies de árboles para la Selva Central del Perú (Monteagudo $ Huamán, 2010), las 1208 especies de árboles para la Flórula de las Reservas Biológicas de Iquitos (Vásquez, 1997), las 529 especies de árboles para la Flórula de la Reserva Ecológica Inkaterra, Madre de Dios, Perú (Valenzuela et al., 2007) y las 1278 especies de Flora del Río Cenepa, Amazonas, Perú (Vásquez et al., 2010), que viene a constituir una de las floras más diversas descritas hasta la fecha y la más diversa también para la flora arbórea Peruana; una comparación a escala más regional se puede hacer con las 696 especies de árboles para la Flórula del Parque Nacional Amacayacu, Amazonas, Colombia (Rudas, et al., 2005), las 1123 especies de árboles reportadas para la Flora de la Reserva de Ducke, Manaus, Brasil (Ribeiro et al., 1999) y las 1661 especies de árboles reportadas ultimamente en el Primer Catálogo de la Flora de Acre, Brasil (Daly € Silveira, 2008). Como se puede observar, todas las floras o flórulas son más diversas en árboles que las de la Reserva Comunal el Sira, cabe indicar, que las demas áreas aledañas tanto del Perú como de otros paises sudamericanos, tienen muchos más años de trabajo de campo, amplio trabajo de identificaciones en los herbarios y exploraciones botánicas. Por otro lado, como se mencionó anteriormente, en árboles para la Selva Central del Perú (Monteagudo € Huaman, 2010), el número de árboles del presente catálogo de la Reserva Comunal el Sira, solo se puede comparar marginalmente con las 6350 especies de árboles que son descritas para el Perú (Pennington, Reynel € Daza, 2004). En este catálogo se incluye los helechos arborescentes de Cyatheaceae y las palmeras de Arecaceae, porque son plantas 21 (1): Enero - Junio 2014 | 133 A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú suficientemente altas y evidencian un tallo principal indudablemente leñoso. Pero, como este es el primer reporte de la flora arbórea de la Reserva Comunal El Sira, aún no se incluyen las especies de árboles cultivados e introducidos que se encuentran en las zonas de amortiguamiento de la Reserva. A continuación, se presenta la lista anotada de las especies arbóreas registradas hasta la fecha en la Reserva Comunal El Sira en la Selva Central del Perú. Primero se presentan las Pteridophyta y luego las Angiospermae, dentro de este grupo mayor estan en orden alfabético las familias, luego los géneros y las especies; las especies nuevas están al final de cada género. En cada registro por especie se incluyen 3 líneas: en la primera línea está el nombre científico, resaltado en negrita, en la segunda línea va el estado de la especie (e.g. nativo) y a continuación se anota la altitud o el rango donde ha sido encontrada, y en la tercera línea se anota el nombre del colector con el respectivo número de registro de colección. Las especies están adscritas a las familias reconocidas en el APG II (2003), APG II (2009) y Stevens (2001); los géneros están adscritos a las familias que se indican en Brummitt (1992) y Mabberley (1998). El herbario donde se encuentran depositadas las colecciones es: el Herbario Selva Central, Oxapampa (HOXA). Por otro lado no hemos considerado oportuno indicar los sinónimos de las especies porque consideramos que no es relevante en este contexto y que actualmente pueden ser consultados fácilmente a través del internet, en caso que se necesite profundizar en el estudio. EL CATÁLOGO PTERIDOPHYTA 134 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 CYATHEACEAE Kaulf. Cyathea sp. (parcela 2, árbol N* 888) Nativo. 1200-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17594 Cyathea sp. (parcela 3, árbol N* 1705) Nativo. 1300-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18383 Cyathea sp. (parcela 4, árbol N* 2549) Nativo. 2000-2230 m. L. Valenzuela, et al. 16944 ANGIOSPERMAE ACHARIACEAE Harms Lindackeria paludosa (Benth.) Gilg Nativo. 250-300 m. L. Valenzuela, et al. 19136 ACTINIDIACEAFE Gilg 6: Werderm. Saurauta laevigata Triana « Planch. Nativo. 500-2500 m. L. Valenzuela 18211 ANACARDIACEAE Lindl. Tapirira guianensis Aubl. Nativo. 350-2000 m. L. Valenzuela, et al. 16708 Tapirira obtusa (Benth.) D. J. Mitch. Nativo. 850 m. L. Valenzuela, et al. 16601 Thyrsodium herrerense Encarn. Nativo. 800 m. L. Valenzuela, et al. 18972 ANNONACEAE Adans. Annona sp (parcela 5, árbol N* 3222) A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú Nativo. 210-500 m. L. Valenzuela, et al. 18737 Cremastosperma sp. (parcela 2) Nativo. 320 m. L. Valenzuela, et al. 17523 Guatteria guentheri Diels Nativo. 250-500m. L. Valenzuela, et al. 19226 Guatteria hyposericea Diels vel sp. aff. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18693 Guatteria megalophylla Diels Nativo. 350-500 m. L. Valenzuela, et al. 18719 Guatteria sp. (parcela 1, árbol N* 272) Nativo. 400-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16736 Guatteria sp. (parcela 2, árbol N* 684) Nativo. 400-1000 m. L. Valenzuela, et al. 17554 Guatteria sp. (parcela 3, árbol N* 1928) Nativo. 400-1000 m. L. Valenzuela, et al. 18610 Oxandra acuminata Diels Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19009 Oxandra major R. E. Fr. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18853 Oxandra riedeliana R. E. Fr. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18808 Oxandra xylopioides Diels Nativo. 350-500 m. L. Valenzuela, et al. 18796 Porcelia sp. (parcela 5, árbol N* 3279) Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18810 Rollinia sp. (parcela 3, árbol N* 1802) Nativo. 1000-2000 m. L. Valenzuela, et al. 18230 Xylopia sp. (parcela 2, árbol N* 926) Nativo. 370 m. L. Valenzuela 17821 APOCYNACEAE Adans. Aspidosperma parvifolium A. DC. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18953 Aspidosperma spruceanum Benth. ex Muúll. Arg. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18856 Lacmellea peruviana (Van Heurck € Mull. Arg.) Markgr. Nativo. 400-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17700 Tabernaemontana sp. (parcela 5, árbol N* Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18780 AQUIFOLIACEAE DC. ex A. Rich. llex gabrielleana Loizeau $ Spichiger Nativo. 800-1400 m. 21 (1): Enero - Junio 2014 | 135 A. Monteagudo ef al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú L. Valenzuela, et al.16422 llex laurina Kunth Nativo. 800-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17735 Ilex sp. (parcela 4, árbol N* 2580) Nativo. 2200-2400 m. L. Valenzuela, et al. 17178 Ilex sp. (parcela 4, árbol N* 2637) Nativo. 2200-2400 m. L. Valenzuela, et al. 17072 Ilex sp. (parcela 4, árbol N* 2920) Nativo. 2200-2400 m. L. Valenzuela, et al. 17217 Ilex sp. (parcela 4, árbol N* 2984) Nativo. 2200-2400 m. L. Valenzuela, et al. 17374 ARALIACEAE Juss. Dendropanax arboreus (L.) Decne. é Planch. Nativo. 250-1000 m. L. Valenzuela, et al. 19057 Schefflera morototoni (Aubl.) Maguire, Steyerm. $ Frodin Nativo. 250-1000m. L. Valenzuela, et al. 19187 Schefflera patula (Rusby) Harms Nativo. 2200-2400m. L. Valenzuela, et al. 17055 Schefflera sp. (parcela 2, árbol N* 1042) Nativo. 1000-1400m. L. Valenzuela, et al. 17794 ARECACEAE Schultz Sch. 136 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 Astrocaryum chambira Burret Nativo. 250-500 m. Nota: sin colección, observado en la parcela 5 Euterpe precatoria var. precatoria Nativo. 350-1000 m. L. Valenzuela, et al. 19250 Iriartea deltoidea Ruíz €z Pav. Nativo. 250-1000 m. L. Valezuela, et al. 19001 Socratea salazarii H. E. Moore Nativo. 800-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17484 Welfia alfredii A. J. Hend. €z Villalba sp. nov. Nativo.800-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17649 Wettinia maynensis Spruce Nativo.800-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17645 BIGNONIACEAE Juss. Tabebuia capitata (Bureau € K. Schum.) Sandwith Nativo. 350-500 m. L. Valenzuela, et al. 18924 BIXACEAE Kunth Bixa orellana L. Nativo y cultivado. 250-1000 m. L. Valenzuela, et al. 19243 BORAGINACEAE Adans. Cordia bicolor A. DC. Nativo. 250-500 m. A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú L. Valenzuela, et al. 18773 Cordia lomatoloba 1. M. Johnst. Nativo. 400-1568 m. L. Valenzuela, et al. 18667 Cordia sp. (parcela 1, árbol N* 164) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16517 BRASSICACEAE Burnett Capparis schunkei J. F. Macbr. Nativo. 350-1500 m. L. Valenzuela, et al. 16495 BRUNELLIACEAE Engl. Brunellia sp. (parcela 3, árbol N* 1943) Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18622 Brunellia sp. (parcela 4, árbol N* 3056) Nativo. 2000-2300 m. L. Valenzuela, et al. 17324 BURSERACEAE Kunth Dacryodes nitens Cuatrec. vel sp. aff. Nativo. 320 m. L. Valenzuela, et al. 16675 Dacryodes sp. (parcela 2, árbol N* 655) Nativo. 500-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17475 Dacryodes sp. (parcela 5, árbol N* 3330) Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 18734 Protium altsonii Sandwith Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 16402 Protium amazonicum (Cuatrec.) Daly Nativo 350-850 m. L. Valenzuela, et al. 16376 Protium aracouchini (Aubl.) Marchand Nativo. 250-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16578 Protium divaricatum subsp. divaricatum Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19086 Protium sp. (parcela 2, árbol N* 1184) Nativo. 390-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17860 Protium nodulosum Swart Nativo. 200-620 m. L. Valenzuela, et al. 18697 Protium robustum (Swart) D. M. Porter vel sp. aff. Nativo. 200-620 m. L. Valenzuela, et al. 18699 Protium sp. (parcela 1, árbol N* 462) Nativo. 350-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16708 Tetragastris panamensis (Engl.) Kuntze Nativo. 250-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16340 Trattinnickia lawrancel vel sp. aff. Nativo. 200-600 m. L. Valenzuela, et al. 16340 CANNABACEAE Martinov Celtis schippii Standl. Nativo. 200-600 m. 21 (1): Enero - Junio 2014 | 137 138 A. Monteagudo ef al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú L. Valenzuela, et al. 18711 Trema micrantha (L.) Blume Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18831 CARDIOPTERIDACEAE Blume Dendrobangia boliviana Rusby Nativo. 200-1500 m. L. Valenzuela, et al. 16684 CARICACEAE Dumort. Jacaratia digitata (Poepp. €: Endl.) Solms Nativo. 200-600 m. L. Valenzuela, et al. 18851 CARYOCARACEAE Voigt Anthodiscus amazonicus Gleason € A.C. Nativo. 350-1400 m. L. Valenzuela, et al. 16784 Anthodiscus pilosus Ducke Nativo. 350-1000 m. L. Valenzuela, et al. 17653 Caryocar glabrum subsp. glabrum Nativo. 350-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16511 CELASTRACEAE R. Br. Cheiloclinium cognatum (Miers) A. C. Sm. Nativo. 200-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17686 Salacia sp. (parcela 1, árbol N* 208) Nativo. 500-1400 m. L. Valenzuela, et al. 16438 CHLORANTHACEAE R. Br. ex Sims | 21 (1): Enero - Junio, 2014 Hedyosmum lechleri Solms Nativo. 2000-2300 m. L. Valenzuela, et al. 117174 Hedyosmum racemosum (Ruíz $ Pav.) G. Don Nativo. 1400-1800 m. L. Valenzuela, et al. 18310 CHRYSOBALANACEAE R. Br. Couepia obovata Ducke Nativo. 350-1500 m. L. Valenzuela, et al. 16354 Hirtella bicornis Mart. € Zucc. Nativo. 350-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16744 Hirtella elongata Mart. € Zucc. vel sp. aff. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18858 Hirtella sp. (parcela 1, árbol N* 402) Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16559 Hirtella sp. (parcela 1, árbol N* 183) Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16462 Licania apetala (E. Mey.) Fritsch Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16662 Licania harlingíi Prance vel sp. aff. Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16439 Licania heteromorpha var. heteromorpha Nativo. 200-1500 m. A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú L. Valenzuela, et al. 17451 Clusia sp. (parcela 4, árbol N* 2565) Licania hypoleuca Benth. vel sp. aff. Nativo. 2100-2500 m. Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 17168 L. Valenzuela, et al. 16564 Dystovomita paniculata (Donn. Sm.) Hammel Licania macrocarpa Cuatrec. Nativo. 200-1500 m. A A A L. Valenzuela, et al. 18183 Nena Symphonia globulifera L. f. Nativo. 500-1500 m. Nativo. 200-900 ía. bra L. Valenzuela, et al. 19198 O Tovomita laurina Planch. € Triana Licania octandra (Hoffmanmns. ex Roem. é2z Schult.) Kuntze Nativo. 500-1500 m. Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al.16657 L. Valenzuela, et al. 16410 Tovomita weddelliana Planch. € Triana Licania sp. (parcela 5, árbol N* 3234) Nativo. 500-1500 m. Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16424 L. Valenzuela, et al. 18836 COMBRETACEAE R. Br. CLETHRACEAE Klotzsch Buchenavia grandis Ducke Clethra castaneifolia Meisn. Nativo. 200-500 m. Nativo. 2000-2500 m. L. Valenzuela, et al. 18929 L. Valenzuela, et al. 17170 CUNONIACEAE R. Br. CLUSIACEAFE Lindl. Weinmannta balbisiana var. balbisiana vel Chrysochlamys sp. (parcela 3, árbol N* pea 36) Nativo. 2000-2300 m. Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 17056 L. Valenzuela, et al. 18360 Weinmannia cochensis Hieron Clusia sp. (parcela 2 árbol N* 1129) Nativo. 2000-2300 m. Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17035 L. Valenzuela, et al. 18030 Weinmannia lechleriana Engl. vel sp. aff. Clusia sp. (parcela 4, árbol N* 2501) Nativo. 2000-2300 m. Nativo. 2100-2500 m. L. Valenzuela, et al. 17112 L. Valenzuela, et al. 17033 Weinmanníia sp. (parcela 4, árbol N* 2820) 21 (1): Enero - Junio 2014 | 139 140 A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú Nativo. 2000-2300 m. L. Valenzuela, et al. 17258 DIPENTODONTACEAE Merr. Perrottetia sp. (parcela 3, árbol N* 2098) Nativo. 1500-2500 m. L. Valenzuela, et al. 18507 ELAFOCARPACEAE Juss. ex DC. Sloanea floribunda Spruce ex Benth. Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16716 Sloanea guianensis (Aubl.) Benth. Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 19106 Sloanea sp. (parcela 1, árbol N* 352) Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16716 Sloanea sp. (parcela 1, árbol N* 1) Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16353 Sloanea sp. (parcela 1, árbol N* 425) Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16681 Sloanea sp. (parcela 1, árbol N* 326) Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16654 Sloanea sp. (parcela 1, árbol N* 549) Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16922 Sloanea sp. (parcelal, árbol N* 630) Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16938 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 aff. Sloanea sp. (parcela 2, árbol N* 816) Nativo. 1000-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17729 Sloanea sp. (parcela 3, árbol N* 1782) Nativo. 1300-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18425 ERICACEAE Juss. Gaultheria sp. (parcela 4, árbol N* 3045) Nativo. 2000-2300 m. L. Valenzuela, et al. 17353 ERYTHROXYLACEAE Kunth Erythroxylum citrifolium A. St.-Hil. Nativo. 350-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17602 Erythroxylum sp. (parcela 2, árbol N* 967) Nativo. 350-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17811 EUPHORBIACEAE Juss. Acalypha mapirensis Pax vel sp. aff. Nativo. 350-1500 m. L. Valenzuela, et al. 18231 Alchornea glandulosa Poepp. Nativo. 850-1500 m. L. Valenzuela, et al. 18143 Alchornea latifolia Sw. vel sp. aff. Nativo. 850-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17679 Alchornea pearcei Britton ex Rusby vel sp. Nativo. 1200-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18409 A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú Alchornea sp. (parcela 2, árbol N* 913) Nativo. 850-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17623 Conceveiba rhytidocarpa Múll. Arg. Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 18714 Conceveiba terminalis (Baill.) Múll. Arg. Nativo. 400-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16387 Glycydendron amazonicum Ducke Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 18799 Hevea gutanensis var. guianensis Nativo. 350-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16407 Mabea piriri Aubl. Nativo. 350-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16505 Mabea sp. (parcela 2, árbol N* 880) Nativo. 350-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17577 Nealchornea yapurensis Huber Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 18762 Pera bicolor (Klotzsch) Múll. Arg. Nativo. 350-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16451 Sapium glandulosum (L.) Morong Nativo. 1000-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18367 Sapium marmieri Huber Nativo. 200-600 m. L. Valenzuela, et al. 18883 Sapium stylare Múll. Arg. vel sp. aff. Nativo. 1300-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18341 FABACEAE Lindl. Abarema jupunba (Willd.) Britton éz Killip Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16609 Abarema floribunda (Spruce ex Benth.) Barneby é J. W. Grimes Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16445 Apuleia leiocarpa (Vogel) J. F. Macbr. Nativo. 200-500 m L. Valenzuela, et al. 19256 Diplotropis purpurea var. purpurea Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16382 Dipteryx alata Vogel Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 19087 Enterolobium schomburgkii (Benth.) Benth. Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 16502 Erythrina sp. (parcela 5, árbol N* 3382) Nativo. 200-500 m L. Valenzuela, et al. 19076 Inga acreana Harms Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 19454 21 (1): Enero - Junio 2014 | 141 142 A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú Inga acreana Harms vel sp. aff. Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 16903 Inga acrocephala Steud. vel sp. aff. Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 18696 Inga alba (Sw.) Willd. Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 18931 Inga capitata Desv. Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16534 Inga edulis Mart. Nativo. 200-1200 m. L. Valenzuela, et al. 18721 Inga marginata Willd. Nativo. 200-1000 m L. Valenzuela, et al. 16793 Inga ruiziana G. Don Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 18811 Inga stipularis DC. vel sp. aff. Nativo. 500-1600 m L. Valenzuela, et al. 18321 Inga thibaudiana DC. Nativo. 200-1500 m. L. Valenzuela, et al. 16832 Inga velutina Willd. Nativo. 350-2000 m. L. Valenzuela, et al. 16762 Inga sp. (parcela 2, árbol N* 669) | 21 (1): Enero - Junio, 2014 Nativo. 500-1500 m L. Valenzuela, et al. 17488 Inga sp. (parcela 2, árbol N* 992) Nativo. 500-1500 m L. Valenzuela, et al. 17684 Inga sp. (parcela 2, árbol N* 1247) Nativo. 500-1500 m L. Valenzuela, et al. 18025 Inga sp. (parcela 2, árbol N* 695) Nativo. 500-1500 m L. Valenzuela, et al. 17537 Inga sp. (parcela 2, árbol N* 944) Nativo. 500-1500 m L. Valenzuela, et al. 17646 Inga sp. (parcela 3, árbol N” 1686) Nativo. 500-1600 m L. Valenzuela, et al. 18214 Inga sp. (parcela 3, árbol N* 1571) Nativo. 500-1600 m L. Valenzuela, et al. 18575 Inga sp. (parcela 5, árbol N* 3118) Nativo. 200-500 m L. Valenzuela, et al. 18732 Inga sp. (parcela 5, árbol N* 3191) Nativo. 200-500 m L. Valenzuela, et al. 18913 Inga sp. (parcela 5, árbol N* 3344) Nativo. 200-500 m L. Valenzuela, et al. 18910 Inga sp. (parcela 5, árbol N* 3153) Nativo. 200-500 m A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú L. Valenzuela, et al. 18698 Inga sp. (parcela 5, árbol N* 3294) Nativo. 200-500 m L. Valenzuela, et al. 18898 Ormosia amazonica Ducke Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 19237 Ormosia larecajana Rudd Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16541 Ormosia sp. (parcela 1, árbol N* 138) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16509 Parkia 1gneiflora Ducke Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16555 Pseudopiptadenia suaveolens (Miq.) J.W. Grimes Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 18843 Swartzia cuspidata Spruce ex Benth. vel sp. aff. Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 18755 Swartzia polyphylla DC. vel sp. aff. Nativo. 200-5000 m. L. Valenzuela, et al. 18889 Swartzia sp. (parcela 1, árbol N* 70) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16475 Swartzia sp. (parcela 5, árbol N* 3216) Nativo. 200-5000 m. L. Valenzuela, et al. 18742 Swartzia sp. (parcela 5, árbol N* 3150) Nativo. 200-5000 m. L. Valenzuela, et al. 18703 Swartzia sp. (parcela 5, árbol N* 3527) Nativo. 200-5000 m. L. Valenzuela, et al. 18258 Swartzia sp. (parcela 5, árbol N* 3178) Nativo. 200-5000 m. L. Valenzuela, et al. 18880 Tachigali cf. chrysaloides van der Werff Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16540 Tachigali chrysophylla (Poepp.) Zarucchi $ Herend. vel sp. aff. Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 18896 Tachigali sp. (parcela 2, árbol N* 1084) Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17716 Tachigal1 sp. (parcela 5, árbol N* 3542) Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 18977 Tachigali sp. (parcela 5, árbol N* 3657) Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 18895 Tachigali sp. (parcela 1, árbol N* 404) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16607 Tachigali sp. (parcela 1, árbol N* 409) Nativo. 500-1000 m. 21 (1): Enero - Junio 2014 | 143 A. Monteagudo ef al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú L. Valenzuela, et al. 16575 Tachigali n. sp. (parcela 1, árbol N* 10) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16362 Zygia coccinea (G. Don) L. Rico Nativo. 400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18284 HYPERICACEAE Juss. Vismia amazonica Ewan Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16841 Vismia amazonica Ewan vel sp. aff. Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 19132 Vismia macrophylla Kunth Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 19055 LACISTEMATACEAE Mart. Lacistema aggregatum (P. J. Bergius) Rusby Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et a1.16348 LAMIACEAE Martinov Hyptidendron arboreum (Benth.) Harley Nativo. 1300-1500 m. L. Valenzuela, et al. 18294 LAURACEAE Juss. Aniba coto (Rusby) Kosterm. Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17805 Aniba guianensis Aubl. 144 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16665 Aniba panurensis (Meisn.) Mez Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16430 Aniba panurensis (Meisn.) Mez vel sp. aff. Nativo. 200-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17848 Aniba taubertiana Mez Nativo.200-500 m. L. Valenzuela, et al. 18788 Aniba sp. (parcela 1, árbol N* 406) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16587 Aniba sp. (parcela 1, árbol N* 399) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16678 Beilschmiedia sulcata Kosterm. vel sp. aff. (Ruíz € Pav.) Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 19234 Beilschmiedia sp. (parcela 2, árbol N* 813) Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17622 Beilschmiedia sp. (parcela 2, árbol N* 993) Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17677 Beilschmiedia sp. (parcela 2, árbol N* 1193) Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al.17995 Endlicheria ruforamula Chanderbali A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú Nativo. 200-1600 m. L. Valenzuela, et al. 16472 Endlicheria sp. (parcela 2, árbol N* 907) Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17619 Endlicheria sp. (parcela 2, árbol N* 687) Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17592 Endlicheria sp. (parcela 5, árbol N* 3308) Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 18798 Endlicheria sp. (parcela 5, árbol N* 3459) Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 19066 Licaria aurea (Huber) Kosterm. Nativo. 400-100 m. L. Valenzuela, et al. 16521 Licaria cannella (Meisn.) Kosterm. Nativo. 200-1500 m. L. Valenzuela, et al. 18050 Mezilaurus sp. (parcela 2, árbol N* 1301) Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al.18077 Nectandra cuspidata Nees $ Mart. Nativo. 350-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17823 Nectandra pulverulenta Nees Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 18938 Nectandra reticulata (Ruíz € Pav.) Mez Nativo. 350-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18374 Nectandra viburnoides Meisn. vel sp. aff. Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16424 Nectandra sp. (parcela 1, árbol N* 124) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16455 Nectandra sp. (parcela 3, árbol N* 1428) Nativo. 500-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18312 Ocotea bofo Kunth Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 19205 Ocotea cernua (Nees) Mez vel sp. aff. Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 18727 Ocotea costulata (Nees) Mez Nativo. 200-1500 m. L. Valenzuela, et al. 16335 Ocotea ovalifolia (Ruíz € Pav.) Mez Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16448 Ocotea sp. (parcela 1, árbol N* 9) Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16364 Ocotea sp. (parcela 1, árbol N* 403) Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16682 Ocotea sp. (parcela 1) Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. s/n 21 (1): Enero - Junio 2014 | 145 146 A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú Ocotea sp. (parcela 1, árbol N* 229) Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et a1.16442 Ocotea sp. (parcela 1, árbol N* 207) Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16428 Ocotea sp. (parcela 1 árbol N* 251) Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16689 Ocotea sp. (parcela 2, árbol N” 1109) Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17890 Ocotea sp. (parcela 2, árbol N* 658) Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al.17730 Ocotea sp. (parcela 2, árbol N* 1222) Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17922 Ocotea sp. (parcela 2, árbol N* 964) Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17813 Ocotea sp. (parcela 2, árbol N* 750) Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17553 Ocotea sp. (parcela 2, árbol N* 740) Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17771 Ocotea sp. (parcela 2, árbol N* 681) Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17575 Ocotea sp. (parcela 2, árbol N* 1045) | 21 (1): Enero - Junio, 2014 Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17770 Ocotea sp. (parcela 2, árbol N* 927) Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al. 18093 Ocotea sp. (parcela 2, árbol N* 652) Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17463 Ocotea sp. (parcela 2, árbol N* 968) Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17809 Ocotea sp. (parcela 3, árbol N* 1986) Nativo. 500-1600 m. L. Valenzuela, et al. s/n Ocotea sp. (parcela 3, árbol N* 1553) Nativo. 500-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18429 Ocotea sp. (parcela 4, árbol N* 2542) Nativo. 1500-2300 m. L. Valenzuela, et al. 16987 Ocotea sp. (parcela 4, árbol N* 2875) Nativo. 1500-2300 m. L. Valenzuela, et al. 17169 Ocotea sp. (parcela 5, árbol N* 3225) Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 18773 Ocotea sp. (parcela 5, árbol N* 3571) Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 19039 Ocotea sp. (parcela 5, árbol N* 3521) Nativo. 200-500 m. A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú L. Valenzuela, et al. 19134 Persea peruviana Nees Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17464 intermedium Pleurothyrium (Mez) Rohwer vel sp. aff. Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 19037 Pleurothyrium poeppigii Nees vel sp. aff. Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 18859 Pleurothyrium sp. (parcela 5, árbol N* 63) Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 18985 Pleurothyrium sp. (parcela 5, árbol N* 67) Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 18849 Sextonia sp. (parcela 5, árbol N* 3257) Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 18962 LECYTHIDACEAE A. Rich. Eschaweilera coriacea (DC.) S. A. Mori Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16487 Eschweilera gigantea (R. Knuth) J. F. Macbr. Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 18708 Eschweilera sp. (parcela 1, árbol N* 22) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16358 Eschweilera sp. (parcela 2, árbol N* 672) Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17498 Eschweilera sp. (parcela 3, árbol N* 1699) Nativo. 500-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18521 Eschweilera sp. (parcela 5, árbol N* 3143) Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 18960 Gustavia hexapetala (Aubl.) Sm. Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 18834 Lecythis pisonis Cambess. Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al. 19251 LINACEAE DC. ex Perleb Roucheria columbiana Hallier f. Nativo. 350-1500 m. L. Valenzuela, et al. 18113 LOGANIACEAE R. Br. ex Mart. Bonyunia pulchra Ricketson, J.R. Grant €z Liesner sp. nov. Nativo. 400-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16375 LORANTHACEAE Juss. Gaiadendron punctatum (Ruíz $ Pav.) G. Don Nativo. 1500-2500 m. L. Valenzuela, et al. 17147 MALPIGHIACEAE Juss. Bunchosia armeniaca (Cav.) DC. vel sp. 21 (1): Enero - Junio 2014 | 147 A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú aff. Sterculia frondosa Rich. Nativo. 700-1600 m. Nativo. 200-1000 m. L. Valenzuela, et al. 18358 L. Valenzuela, et al. 16484 MALVACEAE Adans. Sterculia peruviana (D. R. Simpson) E. L. Apeiba membranacea Spruce ex Benth. Taylor Nativo. 200-1000 m. Nativo. 200-500 m. A e L. Valenzuela, et al. 18874 Cavanillesia sp. (parcela 5, árbol N* 3215) Mana Nativo. 200-1000 m. Nativo y cultivado. 200-500 m. TS ON L. Valenzuela, et al. 18771 Ceiba pentandra (L.) Gaertn. Theobroma subincanum Mart. Nativo. 200-500 m. Nativo. 200-1000 m. E Valenzud eraie8a7 L. Valenzuela, et al. 18935 ; MELASTOMATACEAE Juss. Heliocarpus americanus L. Nativo. 200-1600 m. Graffenrieda limbata Triana vel sp. aff. L. Valenzuela, et al. 18551 id Matisia ochrocalyx K. Schum. L. Valenzuela, et al. 16556 Nativo. 200-500 m. Graffenrieda sp. (parcela 1, árbol N* 193) L. Valenzuela, et al. 19084 o Pachira insignis (Sw.) Sw. ex Savigny L. Valenzuela, ef al. 16434 Nativo. 200-500 m. Graffenrieda sp. (parcela 1, árbol N* 271) L. Valenzuela, et al. 19259 AUD Pachira sp. (parcela 2, árbol N* 803) L. Valenzuela, ef al. 16738 Nativo. 500-1000 m. Meriania hexamera Sprague L. Valenzuela, et al. 17723 A A Quararibea wittii K. Schum. € Ulbr. L. Valenzuela, et al. 18320 Nativo. 200-500 m. Meriania sp. (parcela 2, árbol N* 875) L. Valenzuela, et al. 18840 Nay o 00014000, Sterculia apeibophylla Ducke L. Valenzuela, et al. 17487 Nativo. 200-500 m. y Miconia chrysophylla (Rich.) Urb. vel sp. aff. L. Valenzuela, et al. 19218 Nativo. 500-1000 m. 148 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú L. Valenzuela, et al.16748 Miconta elaeagnoides Cogn. Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al.16691 Miconia punctata (Desr.) D. Don ex DC. Nativo. 350-2000 m. L. Valenzuela, et al. 16355 Miconía sp. (parcela 1, árbol N* 602) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16923 Miconia sp. (parcela 1, árbol N* 604) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16860 Miconia sp. (parcela 1, árbol N* 112) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, ef al.16394 Miconta sp. (parcelal, árbol N* 142) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al.16535 Miconíia sp. (parcela 2, árbol N* 1068) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al.17953 Miconíia sp. (parcela 2, árbol N* 676) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al.17465 Miconia sp. (parcela 2, árbol N* 1299) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et a1.18082 Miconia sp. (parcela 2, árbol N* 680) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17578 Miconia sp. (parcela 2, árbol N* 654) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17439 Miconia sp. (parcela 2, árbol N* 1279) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17916 Miconia sp. (parcela 2, árbol N* 1071) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et a1.18085 Miconta sp. (parcela 3, árbol N* 1436) Nativo. 1400-1700 m. L. Valenzuela, et al.18382 Miconíia sp. (parcela 3, árbol N* 1440) Nativo. 1400-1700 m. L. Valenzuela, et al. 18377 Miconíia sp. (parcela 3, árbol N* 1539) Nativo. 1400-1700 m. L. Valenzuela, et al. 18243 Miconia sp. (parcela 3, árbol N* 1434) Nativo. 1400-1700 m. L. Valenzuela, et al. 18373 Miconia sp. (parcela 3, árbol N* 1448) Nativo. 1400-1700 m. L. Valenzuela, et al. 18391 Miconia sp. (parcela 3, árbol N* 2131) Nativo. 1400-1700 m. L. Valenzuela, et al. 18592 Miconta sp. (parcela 3, árbol N* 1751) Nativo. 1400-1700 m. L. Valenzuela, et al. 18240 Miconta sp. (parcela 3, árbol N* 1891) 21 (1): Enero - Junio 2014 | 149 150 A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú Nativo. 1400-1700 m. L. Valenzuela, et al. 18672 Miconta sp. (parcela 4, árbol N* 2503) Nativo. 2100-2300 m. L. Valenzuela, et al. 17129 Miconta sp. (parcela 4, árbol N* 2516) Nativo. 2100-2300 m. L. Valenzuela, et al. 17062 Miconia sp. (parcela 4, árbol N* 2639) Nativo. 2100-2300 m. L. Valenzuela, et al. 17101 Miconia sp. (parcela 4, árbol N* 2863) Nativo. 2100-2300 m. L. Valenzuela, et al. 17013 Miconia sp. (parcela 4, árbol N* 3075) Nativo. 2100-2300 m. L. Valenzuela, et al. 17390 Miconia sp. (parcela 4, árbol N* 2694) Nativo. 2100-2300 m. L. Valenzuela, et al. 17084 Miconta sp. (parcela 4, árbol N* 2816) Nativo. 2100-2300 m. L. Valenzuela, et al. 17279 Miconta sp. (parcela 4, árbol N* 2582) Nativo. 2100-2300 m. L. Valenzuela, et al. 17191 Mouriri grandiflora DC. Nativo. 200-500 m. L. Valenzuela, et al.18741 Mouriri myrtifolia Spruce ex Triana Nativo. 200-500 m. | 21 (1): Enero - Junio, 2014 L. Valenzuela, et al.18883 Mouriri nigra (DC.) Morley vel sp. aff. Nativo. 500-1500 m. L. Valenzuela, et al.17487 Tibouchina lepidota (Bonpl.) Baill. Nativo. 2100-2300 m. L. Valenzuela, et al. 17411 Topobea multiflora (D. Don) Triana Nativo. 350-2000 m. L. Valenzuela, et al. 17428 Topobea sp. (parcela 2, árbol N* 666) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 17483 MELIACEAE Juss. Cabralea canjerana subsp. canjerana Nativo. 250-1400 m. L. Valenzuela, et a1.18018 Cedrela sp. (parcela 2) Nativo. 500-1400 m. L. Valenzuela, et al. s/n Guarea gomma Pulle Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18729 Guarea grandifolia DC. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19232 Guarea kunthiana A. Juss. Nativo. 250-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18361 Guarea pterorhachis Harms Nativo. 250-500 m. A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú L. Valenzuela, et al. 18841 Guarea sp. (parcela 2, árbol N* 747) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17562 Guarea sp. (parcela 3, árbol N* 1457) Nativo. 1000-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18299 Trichilia micrantha Benth. Nativo. 250-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16432 Trichilia poeppigúi C. DC. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18726 Trichilia solitudinis Harms Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18725 MONIMIACEAE Juss. Mollinedia ovata Ruíz € Pav. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18692 MORACEAE Link Batocarpus costaricensis Standl. 8: L.O. Williams Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18824 Brosimum acutifolium subsp. acutifolium Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19248 Brosimum alicastrum Sw. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19209 Brosimum gutanense (Aubl.) Huber Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19188 Brosimum lactescens (S: Moore) Cc.cC. Berg Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18797 Brosimum lactescens (S. Moore) Cc.C. Berg vel sp. aff. Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16471 Brosimum parinarioides Ducke Nativo. 250-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17736 Brosimum rubescens Taub. Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16809 Castilla ulei Warb. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19060 Clarisia biflora Ruíz € Pav. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19104 Clarisia racemosa Ruíz « Pav. Nativo. 250-5000 m. L. Valenzuela, et al. 18982 Ficus cuatrecasana Dugand Nativo. 1200-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18347 Ficus gutanensis Desv. ex Ham. Nativo. 500-1400 m. L. Valenzuela, et al. 16357 21 (1): Enero - Junio 2014 | 151 A. Monteagudo ef al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú Ficus nymphaeifolia Mill. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19111 Ficus paraensis (Miq.) Miq. vel sp. aff. Nativo. 1000-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18215 Ficus sp. (parcela 2, árbol N* 1217) Nativo. 500-1400 m. L. Valenzuela, et al. 18167 Ficus sp. (parcela 3, árbol N* 1493) Nativo. 1000-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18546 Helicostylis scabra (J. F. Macbr.) C. C. Berg Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18918 Helicostylis tomentosa (Poepp. éz Endl.) Rusby Nativo. 500-1400 m. L. Valenzuela, et al. 16371 Maquira coriacea (H. Karst.) C. C. Berg Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16392 Maquira calophylla (Poepp. $: Endl.) C. C. Berg Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18728 Morus insignis Bureau Nativo. 1000-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18408 Perebea angustifolia (Poepp. € Endl.) C. C. Berg Nativo. 250-500 m. 152 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 L. Valenzuela, et al. 19030 Perebea gutanensis Aubl. Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 17546 Poulsenia armata (Miq.) Standl. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18829 Pseudolmedia laevigata Trécul Nativo. 250-1500 m. L. Valenzuela, et al. 17660 Pseudolmedia laevis (Ruíz € Pav.) J. F. Macbr. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18683 Pseudolmedia macrophylla Trécul Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18920 Sorocea guilleminiana Gaudich. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18940 Sorocea pileata W. C. Burger Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18830 MYRISTICACEAE R. Br. Iryanthera juruensis Warb. Nativo. 350-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16395 Iryanthera laevis Markgr. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18736 Iryanthera paraensis Huber A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú Nativo. 350-850 m. L. Valenzuela, et al. 17531 Osteophloeum platyspermum (Spruce ex A. DC.) Warb. Nativo. 350-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16343 Otoba sp. (parcela 1, árbol N* 576) Nativo. 350-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16897 Virola calophylla (Spruce) Warb. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18818 Virola elongata (Benth.) Warb. Nativo. 350-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16461 Virola flexuosa A. C. Sm. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19072 Virola mollissima (Poepp. ex A. DC.) Warb. vel sp. aff. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19042 Virola multinervia Ducke Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18981 Virola pavonis (A. DC.) A. C. Sm. Nativo. 350-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16813 Virola sebifera Aubl. Nativo. 250-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16352 Virola sp. (parcela 1, árbol N* 560) Nativo. 350-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16830 Virola sp. (parcela 2, árbol N* 974) Nativo. 350-1400 m. L. Valenzuela, et al. 18061 Virola sp. (parcela 2, árbol N* 668) Nativo. 350-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17496 PRIMULACEAE Batsch ex Borkh Ardisia sp. (parcela 1, árbol N* 641) Nativo. 500-1000 m L. Valenzuela, et al. 16933 Cybianthus sp. (parcela 4, árbol N* 2530) Nativo. 2000-2300 m L. Valenzuela, et al. 17017 Myrsine umbellata Mart. Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17831 Stylogyne ambigua (Mart.) Mez vel sp. aff. Nativo. 350-500 m. L. Valenzuela, et al. 18430 MYRTACEAE Adans. Eugenia florida DC. Nativo. 250-1600 m. L. Valenzuela, et al. 17440 Eugenia sp. (parcela 1, árbol N* 85) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16491 Eugenia sp. (parcela 1, árbol N* 45) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16383 21 (1): Enero - Junio 2014 | 153 A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú Eugenia sp. (parcela 2, árbol N* 1073) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17725 Eugenia sp. (parcela 2, árbol N* 1133) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 18035 Eugenia sp. (parcela 2, árbol N* 792) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17674 Eugenia sp. (parcela 2, árbol N* 697) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17540 Eugenia sp. (parcela 2, árbol N* 1270) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17884 Eugenia sp. (parcela 2, árbol N* 945) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17639 Eugenia sp. (parcela 3, árbol N* 1464) Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18282 Eugenia sp. (parcela 3, árbol N* 1846) Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18548 Eugenia sp. (parcela 3, árbol N* 1425) Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18327 Eugenia sp. (parcela 4, árbol N* 2659) Nativo. 2000-2300 m. L. Valenzuela, et al. 17091 Eugenia sp. (parcela 5, árbol N* 3407) 154 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19125 Myrcianthes sp. (parcela 4. árbol N* 2558) Nativo. 2000-2300 m. L. Valenzuela, et al. 17024 Myrciaria sp. (parcela 2, árbol N* 819) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17503 Myrciaria sp. (parcela 2, árbol N* 1164) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 18181 Mygciaria sp. (parcela 4, árbol N* 2510) Nativo. 2000-2300 m. L. Valenzuela, et al. 17053 NYCTAGINACEAE Juss. Neea divaricata Poepp. éz Endl. Nativo. 250-1400 m. L. Valenzuela, et al. 16501 Neea divaricata Poepp. £z Endl. vel sp. aff. Nativo. 250-1400 m. L. Valenzuela, et al. 16751 Neea macrophylla Poepp. € Endl. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18748 Neea sp. (parcela 1, árbol N* 196) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16498 OCHNACEAE DC. Cespedesia spathulata (Ruíz «€ Pav.) Planch. Nativo. 500-1000 m. A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú L. Valenzuela, et al. 16420-B Ouratea sp. (parcela 1, árbol N* 48) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16473 Quiina florida Tul. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19208 Quiina obovata Tul. Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16763 OLACACEAE Mirb. ex DC. Aptandra tubicina (Poepp.) Benth. ex Miers Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18713 PENTAPHYLACACEAE Engl. Preziera sp. (Parcela 4, árbol N* 2871) Nativo. 2000-2300 m. L. Valenzuela, et al. 17019 Ternstroemia sp. (Parcela 4, árbol N* 28399 Nativo. 2000-2300 m. L. Valenzuela, et al. 17238 PHYLLANTHACEAE Martinov Hieronyma duque Cuatrec. Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18224 Hieronyma oblonga (Tul.) Múll. Arg. Nativo. 350-2000 m. L. Valenzuela, et al. 16467 Hieronyma sp. (Parcela 2, árbol N* 938) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17820 Richeria grandis var. grandis Nativo. 850-1500 m. L. Valenzuela, et al. 16667 PICRAMNIACEAE Fernando € Quinn Picramnta sellowii Planch. Nativo. 390-3500 m. L. Valenzuela, et al. 18279 PIPERACEAE C. Agardh Piper arboreum Aubl. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19096 POLYGALACEAE Hoffmanmns. € Link Monnina sp. (Parcela 4, árbol N* 2557) Nativo. 2000-2300 m. L. Valenzuela, et al. 17027 POLYGONACEAE Juss. Coccoloba mollis Casar Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et a1.18523 RHIZOPHORACEAE Pers. Sterigmapetalum obovatum Kuhlm. Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16749 RUBIACEAE Juss. Agouticarpa sp. (Parcela 2, árbol N* 804) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17474 Alibertia sp. (Parcelal, árbol N* 49) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16443 21 (1): Enero - Junio 2014 | 155 A. Monteagudo ef al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú Amaioua corymbosa Kunth Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16742 Bathysa obovata K. Schum. ex Standl. vel sp. aff. Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16735 Bathysa sp. (Parcela 2, árbol N* 688) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17598 Bathysa sp. (Parcela 3, árbol N* 1447) Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18258 Bathysa sp. (Parcela 3, árbol N* 1722) Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18219 Chomelia sp. (Parcela 3, árbol N* 1470) Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18287 Cinchona pubescens Vahl vel sp. aff. Nativo. 2000-2300 m. L. Valenzuela, et al. 17123 Cinchona sp. (Parcela 4, árbol N* 2545) Nativo. 2000-2300 m. L. Valenzuela, et al. 16948 Coussarea sp. (Parcela 5, árbol N* 3346) Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18690 Durota hirsuta (Poepp.) K. Schum. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19131 156 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 Elaeagia karstenii Standl. Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18407 Elaeagia mariae Wedd. vel sp. aff. Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17533 Elaeagía pastoensis L. E. Mora Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17469 Elaeagía sp. (Parcela 2, árbol N* 970) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17818 Elaeagía sp. (Parcela 3, árbol N* 1989) Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18476 Elaeagía sp. (Parcela 3, árbol N* 1789) Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18445 Faramea sp. (Parcela 1, árbol N* 140) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16538 Faramea sp. (Parcela 2, árbol N* 1202) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 18139 Faramea sp. (Parcela 3, árbol N* 1847) Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18535 Faramea sp. (Parcela 5, árbol N* 3629) Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18961 Guettarda crispiflora Vahl vel sp. aff. A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et a1.18385 Ixora sp. (Parcela 1, árbol NC, 66) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16477 Ladenbergia amazonensis Ducke Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16591 Ladenbergía sp. (Parcela 2, árbol N* 703) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17607 Parachimarrhis sp. (Parcela 3, árbol N* Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18362 Posoqueria coriacea M. Martens kz Galeotti Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18443 Psychotria sp. (Parcela 2, árbol N* 661) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17444 Psychotria sp. (Parcela 3, árbol N* 1645) Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18271 Psychotria sp. (Parcela 3, árbol N* 1577) Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18357 Psychotria sp. (Parcela 4, árbol N* 2605) Nativo. 2000-2300 m. L. Valenzuela, et al. 16995 Remijia chelomaphylla G. A. Sullivan Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16336 Schizocalyx sterculioides (Standl.) Kainul. $ B. Bremer Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18227 Semaphyllanthe megistocaula (K. Krause) L. Anderson Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18735 Simira sp. (Parcela 5, árbol N* 3232) Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18892 Tocoyena williamsii Standl. Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18309 RUTACEAE Juss. Zanthoxylum ekmani (Urb.) A. H. Liogier Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19015 Zanthoxylum sp. (Parcela 1, árbol N* 245) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16504 Zanthoxylum sp. (Parcela 5, árbol N* 95) Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18923 Zanthoxylum sp. (Parcela 5, árbol N' 3522) Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et a1.19133 SABIACEAE Blume 21 (1): Enero - Junio 2014 | 157 A. Monteagudo ef al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú Meliosma herbertii Rolfe Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16360 SALICACEAE Mirb. Banara guianensis Aubl. Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18446 Casearia sp. (Parcela 2, árbol N* 781) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17454 Lunania parviflora Spruce ex Benth. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18704 Tetrathylacium macrophyllum Poepp. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18754 SAPINDACEAE Juss. Allophylus excelsus (Triana € Planch.) Radlk. vel sp. aff. Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18232 Cupania latifolia Kunth Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18395 Matayba arborescens (Aubl.) Radlk. Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16379 Matayba sp. (Parcela 2, árbol N* 421) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17435 Matayba sp. (Parcela 3, árbol N* 1555) 158 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18449 Talisia cerasina (Benth.) RadIk. vel sp. aff. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18928 SAPOTACEAE Juss. Chrysophyllum sanguinolentum spurium (Ducke) T. D. Penn. subsp. Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16346 Chrysophyllum venezuelanense (Pierre) T. D. Penn. Nativo. 910 m. L. Valenzuela, et al. 19191 Ecclinusa lanceolata (Mart. € Eichler) Pierre Nativo. 250-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16732 Manilkara bidentata (A. DC.) A. Chev. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18687 Micropholis egensis (A. DC.) Pierre Nativo. 250-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16414 Micropholis guyanensis subsp. guyanensis Nativo. 500-1400 m. L. Valenzuela, et al. 16553 Micropholis venulosa (Mart. € Eichler) Pierre Nativo. 250-1400 m. L. Valenzuela, et al. 16928 Pouteria aubrevillei Bernardi vel sp. aff. A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16739 Pouteria bangii (Rusby) T. D. Penn. vel sp. aff. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18844 Pouteria caimito (Ruíz 6: Pav.) Radlk. vel sp. aff. Nativo. 500-1400 m. L. Valenzuela, et al. 16374 Pouteria cladantha Sandwith Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19245 Pouteria cuspidata (A. DC.) Baehni Nativo. 250-1400 m. L. Valenzuela, et al. 16499 Pouteria durlandii (Standl.) Baehni vel sp. aff. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18838 Pouteria gutanensis Aubl. Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16726 Pouteria reticulata (Engl.) Eyma vel sp. aff. Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16683 Pouteria torta subsp. glabra T. D. Penn. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18743 Pouteria trilocularis Cronquist Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18691 Pouteria vernicosa T. D. Penn. vel sp. aff. Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17616 Pouteria sp. (Parcela 1, árbol N* 64) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16435 Pouteria sp. (Parcela 1, árbol N* 56) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16478 Pouteria sp. (Parcela 1, árbol N* 60) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16433 Pouteria sp. (Parcela 1, árbol N* 111) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16398 Pouteria sp. (Parcela 1, árbol N* 62) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16474 Pouteria sp. (Parcela 1, árbol N* 7) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16369 Pouteria sp. (Parcela 1, árbol N* 589) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16857 Pouteria sp. (Parcela 1, árbol N* 265) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16768 Sarcaulus brasiliensis subsp. brasiliensis Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18802 21 (1): Enero - Junio 2014 | 159 A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú SIMAROUBACEAE DC. Simaba guianensis Aubl. Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17706 Simarouba amara Aubl. Nativo. 250-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16934 SIPARUNACEAE (A. DC.) Schodde Siparuna decipiens (Tul.) A. DC. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19127 SOLANACEAE Adans. Cestrum megalophyllum Dunal Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18307 Solanum lepidotum Dunal Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18369 Solanum sp. (Parcela 3, árbol N* 1646) Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18272 STAPHYLEACEAE Martinov Staphylea occidentalis Sw. Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18356 STYRACACEAE Dumort. Styrax vilcabambae (D. R. Simpson) B. Walln. Nativo. 2000-2300 m. L. Valenzuela, et al. 16998 SYMPLOCACEAE Degsf. 160 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 Symplocos quitensis Brand Nativo. 2000-2300 m. L. Valenzuela, et al. 16990 THEACEAE Mirb. Gordonia fruticosa (Schrad.) H. Keng Nativo. 2000-2300 m. L. Valenzuela, et al. 17311 ULMACEAE Mirb. Ampelocera edentula Kuhlm. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18832 URTICACEAE Juss. Cecropia angustifolia Trécul Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al.18217 Cecropia membranacea Trécul Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16690 Cecropia sciadophylla Mart. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19804 Cecropia sp. (Parcela 3, árbol N* 1416) Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18306 Cecropia sp. (Parcela 3, árbol N* 1494) Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18578 Cecropia sp. (Parcela 5, árbol N* 3396) Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19246 Cecropia sp. (Parcela 5, árbol N* 3387) A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19253 Coussapoa sp. (Parcela 1, árbol N* 12) Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16344 Coussapoa sp. (Parcela 2, árbol N* 1008) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17766 Pourouma bicolor Mart. Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16829 Pourouma bicolor Mart. vel sp. aff. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18966 Pourouma cecropiifolia Mart. Nativo. 250-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17673 Pourouma gutanensis subsp. guianensis Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19012 Pourouma gutanensis Aubl. vel sp. aff. Nativo. 500-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16356 Pourouma minor Benoist Nativo. 250-1000 m. L. Valenzuela, et al. 16415 Pourouma mollis Trécul Nativo. 500-100 m. L. Valenzuela, et al. 16611 Pourouma mollis subsp. triloba (Trécul) C. C. Berg € Heusden Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18969 Pourouma sp. (Parcela 2, árbol N* 671) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17726 Urera baccifera (L.) Gaudich. ex Wedd. Nativo. 1400-1600 m. L. Valenzuela, et al. 18350 Urera caracasana (Jacq.) Gaudich. ex Griseb. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18958 VIOLACEAE Batsch Leonia glycycarpa var. glycycarpa Nativo. 500-800 m. A. Gentry, D. Smith éz N. Jaramillo 41657 Paypayrola longifolia Tul. vel sp. aff. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18763 Paypayrola grandiflora Tul. Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 19098 Rinorea sp. (Parcela 5, árbol N* 3322) Nativo. 250-500 m. L. Valenzuela, et al. 18837 VOCHYSIACEAE A. St.-Hil. Vochysia sp. (Parcela 2, árbol N* 958) Nativo. 1000-1400 m. L. Valenzuela, et al. 17802 Agradecimientos 21 (1): Enero - Junio 2014 | 161 A. Monteagudo et al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú Los autores expresan su agradecimiento a la Fundación Moore, por brindar la subvención económica para este estudio dentro del proyecto RAINFOR (Red Amazónica de Inventarios Forestales), Garden (MO), al Herbario Selva Central, al Missouri Botanical Oxapampa (HOXA), por el acceso a las colecciones; al proyecto “Conservación de la Biodiversidad en los Bosques Tropicales del Perú, considerando aspectos de protección del clima” ejecutado por GIZ - SERNANP - MINAM, en la Reserva Comunal El Sira, a la Dra. Lily Rodríguez Bayona por todo el apoyo en las diversas coordinaciones de apoyo administrativo y logístico, al Servicio Nacional de Áreas Naturales Protegidas por el Estado (SERNANP), por las facilidades brindadas al concedernos las respectivas autorizaciones de investigación en la Reserva Comunal El Sira, al Jefe de la Reserva Comunal el Sira Luis Saavedra, por todo el apoyo y las coordinaciones en las diversas expediciones, a los integrantes de ECOSIRA, a los asistentes de campo, Alex Gonzáles C., Edwin Díaz Rivera, Walter Villegas P., Ten Domínguez Pizango de la Comunidad Nativa de Tahuantinsuyo, a los Bachilleres en Biología Amador Pfuro Tapia de la Universidad Nacional de San Antonio Abad del Cusco y Din Heredia Huarino de la Universidad Nacional de San Agustín de Arequipa y muy especialmente a los 40 porteadores de las diferentes comunidades y alrededores de Yuyapichis, también un agradecimiento especial a Erika Fernández Jiménez, Thania Carhuaricra Espinoza, César Augusto Rojas Tello del Herbario (HOXA) por toda la labor de secado, montaje y almacenamiento de las colecciones. Literatura citada APG, IL. 2003. An update of the Angiosperm Phylogeny Group classification 162 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 for the orders and families of flowering plants: APG IL. Bot. Jour. of the Linnean Society, 141: 399-436. APG, IL 2009. Angiosperm An update of the classification for the orders and families of Phylogeny Group flowering plants: APG !-The Angiosperm Phylogeny Group-The Linnean Society of London, Botanical Journal of the Linnean Society, 161: 105-121 Baker, T. R.; O. L. Phillips; Y. Malhi; S. Almeida; L. Arroyo; A. Di Fiore; T. Erwin; T.J. Killeen; S. G. Laurance; W. F. Laurance; S. L. Lewis; J. Lloyd; A. Monteagudo; D. A. Neill; S. Patiño; N. C. A. Pitman; M. J. N. Silva €: R. Vásquez. 2004. Variation in wood density determines spatial patterns in Amazonian forest biomass. Global Change Biology 10 (5): 545-562. doi:10.1111/j.1365- 2486.2004.00751.x Brako, L. € J. L. Zarucchi. 1993. Catalogue of the Flowering Plants and Gymnosperms of Peru. Monogr. Syst. 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Ortiz- 21 (1): Enero - Junio 2014 | 163 A. Monteagudo ef al.: Árboles de la Reserva Comunal El Sira, Perú Gentry. 2005. Flora Vascular de la selva central del Perú: Una aproximación de la composición florística de tres Áreas Naturales Protegidas. Arnaldoa. 12 (1-2): 112-125. Vásquez, M. R. 1997. Flórula de las reservas biológicas de Iquitos, Perú. Monogr. Syst. Bot Missouri Bot. Gard. 63: 1-1046. Vásquez, M. R.; R. Rojas € H. van der Werff. 2010. Flora del Río Cenepa, Amazonas, Perú. Monogr. Syst. Bot Missouri Bot. Gard. 114 W3TROPICOS. 2006. Missouri Botanical Gardens VAST (VAScular Tropicos) nomenclatural database and associated authority files. Published on the Internet httpmobot.mobot.org/W3T/ Search/vast.html [accessed May-July 2006]. Zelazowski, P.; Y. Malhi; C. Huntingford; S. Sitch « J. B. Fisher. 2011. Changes in the potential distribution of humid tropical forests on a warmer planet. 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Resumen En el bosque seco de la Reserva Natural “La Ceiba” (RNLC), cantón Zapotillo, provincia de Loja, ubicada entre 386 y 415 m de altitud y en las coordenadas 80%15'34,06'"W y 4%13'42,69”S, se estableció una parcela permanente de 100 x 100 m, con 25 subparcelas de 20 x 20 m. En cada sub parcela, se registraron todos los individuos > 5 cm de diámetro a la altura del pecho (DAP). Se registran 28 especies de árboles, 8 arbustos, 9 hierbas y 4 epífitas. Se inventariaron 1 057 individuos/ ha, 956 son árboles no ramificados y 101 se ramifican. Los árboles presentan un área basal de 26,73 m?/ha y un volumen de 169,41 m*/ha. Las familias más diversas son Fabaceae, Bombacaceae, Mimosaceae y Caesalpiniaceae. Las especies con mayor IVIE son: Simira ecuadorensis, Tabebuia chrysantha, Ceiba trichistandra y Cordia macrantha. El perfil estructural de un transecto de 10 x 100 m, demuestra que el estrato superior está representado por Tabebuia chrysantha, Terminalia valverdeae y Piscidia carthagenensis, el estrato codominado por Bursera graveolens, Citharexylum quitense y Erythroxylum glaucum, y el estrato suprimido por Simira ecuadorensis y Prockia crucis. Se registraron 13 especies endémicas que son compartidas con Perú. La composición florística y las características estructurales determinan un buen estado de conservación del bosque. Palabras clave: B decíd región Tumbesina, composición florística, parcela permanente. 1 Abstrac In the dry forest of the nature reserve “La Ceiba” (RNLOC), Zapotillo, province of Loja, located between 386 and 415 m above sea level and at coordinates 80% 15/34, 06” W and 4* 13'42, 69 “S, established a permanent plot of 100 x 100 m, with 25 subplots of 20 x 20 m. In each subplot were all individuals > 5 cm diameter at breast height (DBH). He recorded 28 species of trees, 8 shrubs, 9 herbs and 4 epiphytic. An inventory of 1057 individuals/ha, 956 trees are not branched and 101 branch. Trees have a basal area of m?/ha 26,73 and 169,41 m*. TI tdi famili Fab Bombacaceae, Mimosaceae and Caesalpiniaceae. Species with greater IVIE are: Simira ecuadorensis, Tabebuia chrysantha, Cordia macrantha and Ceiba trichistandra. The structural profile of a transect of 10 x 100 m, shows that the top tier is represented by Tabebuia chrysantha, Terminalia valverdeae and Piscidia carthagenensis, stratum codominado by Bursera graveolens, Citharexylum quitense and suppressed stratum by Erythroxylum glaucum, Simira ecuadorensis and Prockia crusis. There were 13 endemic species are shared with Peru. The floristic composition and structural characteristics determine a good state of preservation of the forest. acaana Key words: dry deciduous forest, Tumbesine region, floristic composition, permanent plot. Introducción en América del Sur, el área restante se : encuentra casi en partes iguales en América Los bosques secos son formaciones a ' a del Norte y Central, África y Eurasia, con vegetales donde la precipitación anual Ej ES E Ñ una proporción pequeña (3,8%) en Australia fluctúa entre 350-800 mm con una h : : y el Sudeste de Asia. En el norte y centro de temporada seca de al menos cinco a seis NN ; o. : América, se extienden desde México hasta meses (Pennington et al., 2000), y al menos Ñ o. . o . ] ñ Costa Rica. En sur América en la franja el 75% de las especies pierden sus hojas ) e del Océano Atlántico, estos bosques son durante la estación seca (Lozano, 2002). Se estima que existen 1 048 700 km? de bosque seco tropical que están distribuidos en las tres regiones tropicales. Más de la mitad del área (54,2%) se encuentra 166 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 frecuentes en Venezuela y Brasil y, hacia el océano Pacífico en Ecuador, Perú y Chile. Los bosques secos también se encuentran dispersos en muchos valles montanos tropicales (Gunter et al., 2011; Lamprecht, Z. Aguirre es a/: Composición florística, estrucutra y endemi n Zapotillo, Loja, Ecuador. 1990; Janzen, 1988; Murphy éz Lugo, 1986). En Ecuador, los bosques secos forman parte de la región Tumbesina (Ecuador- Perú) y abarcan aproximadamente 135 000 km? ubicados desde Manabí hasta la costa norte de Perú, desde O hasta 1000 m de altitud. Considerada una zona de importancia biológica por su elevado número de especies endémicas de flora (Madsen et al., 2001) y por la existencia de fauna única (Stattersfield et al., 1998). Estos bosques se encuentran amenazados por la ampliación de la frontera agrícola, sobrepastoreo, extracción de maderas valiosas e incendios forestales, que reducen la superficie de estos ecosistemas. Pese a esto, Neill (2000) manifiesta: ”... que en el suroccidente de Loja, en los Cantones de Macará y Zapotillo, están presentes los mejores remanentes de este ecosistema.” Para conocer mejor la estructura y estado de conservación del bosque seco se instaló una parcela permanente de una hectárea en la Reserva Natural “La Ceiba”, donde se determinó la composición florística, estructura y endemismo, información útil para conocer la dinámica de este ecosistema e impulsar futuros trabajos de conservación. Material y métodos Metodología Zona de estudio La investigación se realizó en una parcela permanente de una hectárea en la Reserva Natural “La Ceiba” (RNLOC), en el sector Balsa Real, cantón Zapotillo, provincia de Loja (NCI, 2009). Con una variación altitudinal de 386 y 415 m, tiene una extensión de 10 000 ha. Limita al norte con la comunidad de Revolcaderos, al sur la hacienda Romeros, al este la cordillera de Cabeza de Toro y al oeste la quebrada ol! Ú Pilares. Aspectos ecológicos Esta zona registra una precipitación total anual de 510,8 mm, distribuidos en un periodo de 2 a 3 meses, generalmente en febrero, marzo y abril; la temperatura media anual es de 24,9C (Cañadas, 1983). Según Sierra et al. (1999), la zona de estudio pertenece a la formación de bosque deciduo de tierras bajas y, según Cañadas (1983) es bosque seco tropical. Métodos Composición y diversidad florística Con una brújula y piola nylon, se estableció la parcela permanente de 1 ha (100 x 100 m) con mojones de 1 m en las esquinas. Se subdividió en 25 sub parcelas de 400 m? (20 x 20 m), donde se midieron los individuos mayores o iguales a 5 cm de diámetro a la altura del pecho (DAP). Los tallos fueron etiquetados con placas metálicas y marcados con un código numérico a la altura de 1,45 m. Los arbustos y hierbas se registraron en 9 sub parcelas de 25 mM? (5x 5 m) y 1 n*Y (1 x 1 m) anidadas. También, se inventariaron las epífitas 1 + vasculares. Se muestras botánicas de las especies para su identificación en el Herbario “Reinaldo Espinosa” de la Universidad Nacional de Loja. Cálculo de parámetros estructurales Se utilizaron las fórmulas planteadas por Cerón (1993); Aguirre € Aguirre (1999);Moreno (2001). 21 (1): Enero - Junio 2014 | 167 Z. Aguirre e/a/: Composición florística, estrucutra y endemismo en una parcela de bosque seco en Zapotillo, Loja, Ecuador. Dado namas Número de individuos porespecie Total del área muestreada Número de individuos porespecie Densidad Relativa (DR)% = x100 Número total de individuos Área basal de la especie Dominancia Relativa (DmR) % = x100 Área basal de todas las especies OS Número de cuadrantes en que está la especie 100 Número total de cuadrantes evaluados Frecuencia Absoluta de la especie x100 Frecuencia Relativa (Fr) % = - ; Sumatoria Total de las Frecuencias Absolutas Indice Valor Importancia (IV) % = (DR E EN y FR) Diversidad Relativa (Dr) 9% = Número de especies de la familia ¡op Total de especies Para determinar la diversidad alfa se utilizó el índice de Shannon, usando las fórmulas: Índice de diversidad Shannon (H?) Índice de equitatividad de Shannon (E) Hg H'=-) Pix(LnPi E=-=-— 2 ) H max Cálculo de parámetros dasométricos Los individuos mayores o iguales a 5 cm de DAP, se agruparon en 8 clases diamétricas. Para calcular el factor de forma se seleccionó al azar tres (3) árboles por clase diamétrica, los cuales fueron medidos en pie en secciones de 1,5 m. El volumen de los árboles se calculó con la fórmula de Smalian: Área Basal (G) m': G =((DAP” /100)x 0,7854) z 3, Volumen del árbol (Va) m”: Va= Go+ Gl a Gl + G2 La G2+...Gn Al, z 2 2 Volumen del cilindro (Vc) mé: Ve=GxH Factor de forma Va t= Ve Volumen Total (VT) m': VT=GxHxf Resultados Composición florística Se registraron 49 especies incluidas en 49 géneros y 37 familias, de los cuales, 28 son mayores o iguales a 5 cm de DAP incluidos en 28 géneros y 19 familias; el estrato arbustivo contiene 8 especies de 8 géneros y 7 familias; el estrato herbáceo registró 9 especies de 9 géneros y 9 familias; se complementa el registro florístico con 4 especies de epífitas dentro 168 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 Z. Aguirre e/a/: Composición florística, estrucutra y endemismo de 4 géneros y dos familias (anexo 1) Diversidad relativa por familia n Zapotillo, Loja, Ecuador. Fabaceae es la familia más diversa con 4 especies (14,29%), seguida de Bombacaceae y Mimosaceae con 3 especies (10,71 %), Caesalpiniaceae y Rubiaceae con dos especies (7,14%). En el estrato arbustivo, Euphorbiaceae es la más diversa con dos especies (25%). En el estrato herbáceo las 9 familias registran 1 especie (11,11%). En las epífitas vasculares, Bromeliaceae es la más diversa con 3 especies (75%). Parámetros estructurales En el cuadro 1, se presentan los parámetros ecológicos del estrato arbóreo del bosque. Familia Nombre Científico ed ma Lei Md dede Ind./ha| (%) | (%) | (%) | (%) Rubiaceae Simira ecuadorensis (Standl.) Steyerm. 379 |35,86| 6,32 | 10,29 | 17,49 Bi ¡ Tabebuia chrysantha G. Nicholson 164 |15,552|16,81|10,29 | 14,21 Boml Ceiba trichi lra (A. Gray) Bakh. 6 0,57 |132,01| 2,06 | 11,54 B Cordia macrantha Chodat 167 |15,80| 6,72 | 9,05 |10,52 Comt Terminalia valverdeae A. H. Gentry 56 5,30 |11,10| 7,41 | 7,93 Fabaceae Piscidia cart! Jaca. 54 5,11 | 4,48 | 6,58 | 5,39 Fl ti Prockia crucis P. Browne ex L. 54 5,11 | 1,57 | 8,23 | 4,97 Vervenaceae Citharexylum quitense Spreng. 51 4,82 | 0,99 | 8,64 | 4,82 Erytl | Erythroxylum glaucum O. E. Schulz 33 3,12 | 1,65 | 6,58 | 3,79 Bixaceae Cochlospermum vitifolium (Willd.) Spreng. 20 1,89 | 3,39 | 4,53 | 3,27 Fabaceae Geoffroea spinosa Jaca. 11 1,04 | 4,07 | 4,12 | 3,08 Nyctagi Pisonia aculeata L. 10 0,95 | 1,01 | 3,70 | 1,89 Bomt Eriotheca ruizii (K. Schum.) A. Robyns 6 0,57 | 2,58 | 2,47 | 1,87 Fabaceae Erythrina velutina Willd. 7 0,66 | 1,99 | 2,47 | 1,71 Burseraceae Bursera graveolens (Kunth) Triana €: Planch. 11 1,04 | 1,48 | 2,47 | 1,66 C Ipini Caesalpinia glabrata Kunth 5 0,47 | 1,02 | 2,06 | 1,18 Salacia sp. 2 0,19 | 0,93 | 0,82 | 0,65 Fabaceae Mac! millei Stanal. 3 0,28 | 0,23 | 1,23 | 0,58 Sapind Allophylus sp. 3 0,28 | 0,04 | 1,23 | 0,52 C Ivul Ipomoea pauciflora O'Donell 2 0,19 | 0,77 | 0,41 | 0,46 Mimosaceae Albizia multiflora (Kunth.) Barneby € J. W. Grimes 2 0,19 | 0,29 | 0,82 | 0,44 Pol Coccoloba sp. 2 0,19 | 0,22 | 0,82 | 0,41 Miioéstane pei mangense (Jacq.) Britton > 0,19 | 0,07 | 0,82 | 0,36 Boml Cavanillesia platanifolia (Bonpl.) Kunth 2 0,19 | 0,06 | 0,82 | 0,36 Caesalpiniaceae | Senna mollissima (Humb. €: Bonpl. ex Willd.) H. S. Irwin €: Barneby 2 0,19 | 0,03 | 0,82 | 0,35 Ri Ziziphus thyrsiflora Benth. 1 0,09 | 0,15 | 0,41 | 0,22 Rubiaceae Randia sp. 1 0,09 | 0,03 | 0,41 | 0,18 Mi Leucaena trichodes (Jacq.) Benth. 1 0,09 | 0,01 | 0,41 | 0,17 tal 100 | 100 | 100 | 100 O D= Densidad; DR= Densidad Relativa; DmR=Dominancia Relat Valor de Importancia. va; Fr=Frecuencia Relativa; IVi=índice 21 (1): Enero - Junio 2014 | 169 Z. Aguirre e/a/: Composición florística, estrucutra y endemismo en una parcela de bosque seco en Zapotillo, Loja, Ecuador. Las especies con mayor IVIE son: Simira ecuadorensis (17,49%), Tabebuia chrysantha (14,21%), Ceiba trichistandra (11,54%) y Cordia macrantha (10,52%) debido a la abundancia, dominancia y frecuencia relativa. El resto d tiene valores del TVIE inferiores a 7,93%. El estrato arbustivo se encuentra representado por 8 especies, con 218 individuos en un área de 225 mY, Croton sp. y Rauvolfía tetraphylla son las más abundantes. El herbáceo está constituido por 9 especies con 330 individuos en un área de 9 nY, siendo: Ruellia geminiflora, Gaya sp. y Panicum trichoides las dominantes. En las epífitas vasculares se identificaron 4 especies con 575 individuos en los 25 árboles seleccionados, donde las más representativas fueron: Vriesea espinosae y Racinaea multiflora. Diversidad alfa del bosque El índice de diversidad de Shannon, muestra que, para los individuos mayores o iguales a 5 cm de DAP, la diversidad tiene un valor de 0,31. Para el estrato arbustivo un valor de 0,24. Y el estrato herbáceo 0,31, que significa una diversidad baja según Valle (2001). Estructura del bosque Se contabilizaron 1 057 individuos/ ha. Las 28 especies totalizan un área basal de 26,73 m?/ha y un volumen de 169,41 m*/ha (anexo 2). En la figura 1, se muestran las 5 especies que contienen el mayor volumen del bosque. Los árboles se agrupan en 8 clases diamétricas y demuestran que el bosque ha soportado alteraciones por explotación de madera, las tres primeras clases diamétricas son más abundantes (95,05 %). La distribución diamétrica del bosque no muestra la forma de “J” invertida, demostrando que el bosque está formado 170 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 por individuos jóvenes y delgados. La figura 2 muestra la distribución diamétrica de los individuos evaluados. Endemismo Se identificaron 13 especies endémicas compartidas entre Ecuador y Perú, que representan el 26,53% del total de las especies encontradas. Discusión Composición florística Se en el estrato arbóreo, esta riqueza es menor a registraron 28 especies la registrada por Aguirre et al. (2001) y Guamán Granda (2006) que es de 36 y 33 especies respectivamente en la misma zona geográfica. Y similar a Bustamante (2009) en “Laipuna” donde reporta 24 especies. En el estrato arbustivo se registraron 8 especies, riqueza similar encontraron Granda é Guamán (2006) con 9 especies. En relación a las epífitas vasculares se encontraron 4 especies, siendo más diversa comparada con los resultados de Granda €: Guamán (2006) que identifican una sola especie. Una de las razones para que exista mayor diversidad en el bosque de la Reserva “La Ceiba” es el buen estado de conservación que presenta, debido a la baja intervención antrópica y las acciones de conservación desarrolladas por las comunidades locales. Diversidad Alfa del bosque La diversidad florística de la parcela en la Reserva “La Ceiba” según el índice de Shannon tiene un valor de 0,31 en el estrato arbóreo, que sugiere una diversidad baja. Granda € Guamán (2006) registran un valor de 0,42 que indica una diversidad de magnitud media. La diferencia se debe, a la abundancia registrada entre las parcelas de “Algodonal” y La “Ceiba” es mayor, ya que este índice toma en cuenta el número total Z. Aguirre e/a/: Composición florística, estrucutra y endemism n Zapotillo, Loja, Ecuador. 76,57 Volumen m* y Área Basal m? =O=Volumen (V) —o= Área Basa (G) 2 NO E 0 0 JJ 00 0 000000000 0 | | cristand 7. cnn same Gi tr e T yaverde? ESPECIES cnacrantns Fig. 1. Volumen y área basal de las especies registradas en la parcela “La Ceiba”, con DAP mayores o iguales a 5 cm. 719 | Il 111 IV Clases diamétricas VI Vil Fig. 2. Curva de la estructura diamétrica de la parcela una hectárea en la “La Ceiba”. de individuos observados. Diversidad de familia Las familias: Mimosaceae, Caesalpiniaceae y Bombacaceae presentan mayor número de especies, corroborando lo manifestado por Gentry (1995), que indica que las leguminosas son el grupo Fabaceae, mejor representado en los bosques secos neotropicales. Aguirre € Delgado (2005) mencionan a Bombacaceae como la familia de mayor importancia y dominancia en los bosque secos de la región Tumbesina en comparación con otros bosques del mundo. En otros estudios Aguirre et al. (2001), Granda €: Guamán (2006) reportan a Fabaceae y Mimosaceae entre las familias más diversas de la zona. Parámetros estructurales Simira ecuadorensis y Tabebuia chrysantha son ecológicamente más importantes 21 (1): Enero - Junio 2014 | 171 Z. Aguirre e/a/: Composición florística, estrucutra y endemismo en una parcela de bosque seco en Zapotillo, Loja, Ecuador. Cuadro 2. Especies endémicas registradas en la parcela permanente de la Reserva Natural “La Ceiba”. Endemis Familia Nombre Científico Nombre Común mo Bombacaceae Erythrina velutina Willd. “Pasallo” EyP Bombacaceae Ceiba trichistandra (A. Gray) Bakh. “Ceibo” EyP Boraginaceae Cordi. tha Chodat “Laurel Negro” EyP Cactaceae Cereus diffusus (Britton €: Rose) Werderm. “Cardo” EyP Combretaceae Terminalia valverdeae A. H. Gentry “Guarapo” EyP “Samba Samba” / Convolvulaceae lpomoea pauciflora M. Martens €: Galeotti EyP “Borrachero” Erythroxylaceae Erythroxylum glaucum O. E. Schulz “Negro” EyP Flacourtiaceae Prockia crucis P. Browne ex L. “Manzano” EyP Mimosaceae Albizia multiflora (Kunth.) Barneby €: J. W. Grimes “Angolo” EyP Mimosaceae Pithecellobium excelsum (Kunth) Mart. “Chaquiro” EyP Polygonaceae Coccoloba ruiziana Lindau “Añalque” EyP Rubiaceae Simira ecuadorensis (Standl.) Steyerm. “Guápala” EyP Verbenaceae Citharexylum quitense Spreng. “Café de Montaña” EyP E y P= Ecuador y Perú. por su alta densidad, pero, especies Según Contento (2000); Granda é como Ceiba trichistandra, pese a tener baja densidad, individuos con mayor área basal; en el es dominante por registrar caso de Cordia macrantha, no obstante su alta densidad, se ubica en cuarto lugar por presentar individuos con menor área basal. Al comparar, con otras parcelas permanentes (Granda € Guamán, 2006) en La “Ceiba” y “Algodonal”, registran las mismas especies entre las más importantes, (2009) Erythrina mientras que Bustamante en Laipuna-Macará registra a velutina y Ceiba trichistandra como las más importantes; esto, puede ser debido a las condiciones ambientales, fisiografía y grados de alteración antrópicas a las que están sometidos las áreas en comparación, lo que influye en que ciertas especies sean abundantes y dominantes en un lugar. Estructura del bosque 172 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 Guamán (2006) y Bustamante (2009) los árboles que conforman este tipo de bosque, son mayormente delgados y escasos individuos de gran tamaño que se encuentran dispersos; esta característica, es típica de los bosques intervenidos, lo cual se confirma en este estudio; observando que la mayor cantidad de individuos se agrupa en las tres primeras clases diamétricas entre 5 y 30 cm de DAP. Esto permite aseverar, que estos Hee fueron sometidos a proceso ya e ión maderera y conversión de uso, [of lo cual es ratificado por Lamprecht (1990) que indica que la distribución diamétrica en bosques jóvenes y en recuperación no presenta la tendencia de “J” invertida. Parámetros dasométricos En la parcela del bosque de “La Ceiba” el área basal y volumen es mayor a lo reportado por Aguirre et al. (2001); Granda Z. Aguirre e/a/: Composición florística, estrucutra y endemism n Zapotillo, Loja, Ecuador. $ Guamán (2006); Bustamante (2009). Los resultados de este estudio, demuestran una recuperación del bosque, esto puede ser: por el mayor número de individuos/ha de Simira ecuadorensis, Tabebuia chrysantha, Cordia macrantha; por la presencia de árboles con mayor área basal y altura especialmente de Ceiba trichistandra, Geoffroea spinosa, Terminalia valverdeae y Erythrina velutina y, posiblemente el factor más decisivo sea la declaratoria de veda de 1981. Endemismo El endemismo florístico de estos bosques es muy importante por estar en el corazón del centro de endemismo tumbesino, donde se comparten especies endémicas con el Perú. Estos bosques son un referente de los bosques secos del Ecuador, debido a su buen estado de conservación, datos que demuestra la importancia biológica de esta zona como una ecoregión que hay que conservar, lo cual es compartido también por Neill (2000); Aguirre et al. (2001). Conclusiones o La riqueza florística del bosque seco de la Reserva Natural “La Ceiba” es de 49 especies dentro de 48 géneros y 32 familias. Las familias más diversas son: Fabaceae, Caesalpiniaceae y Rubiaceae. Bombacaceae, Mimosaceae, o Las especies con mayor índice valor de importancia ecológica son: Simira Tabebuia chrysantha, Ceiba trichistandra y Cordia macrantha. ecuadorensis, o El área basal de las especies de la parcela es 26,70 m?/ha y el volumen es 169,35 m/ha; las especies que más aportan son: Tabebuia chrysantha, Terminalia valverdeae y Cordia macrantha. o La mayoría de árboles se agrupan en las tres primeras clases diamétricas, que determina una distribución diamétrica sin la tendencia de “J” invertida, indicando que este bosque joven en proceso de recuperación. o La estructura vertical de la parcela del bosque de la Reserva “La Ceiba”, es uniforme con individuos que alcanzan alturas de 5 a 18 m,; diferenciando tres estrato, las especies Tabebuia chrysantha, Terminalia valverdeae y Piscidia carthagenensis dominan el dosel superior. En el estrato codominado y suprimido sobresalen Prockia crucis y Simira ecuadorensis. o El endemismo sigue el patrón sugerido para los bosques secos tropicales, con un endemismo compartido de la Región Tumbesina entre Ecuador y Perú. Literatura citada Aguirre, Z.; E. Cueva; B. Merino; W. Quizhpe € A. Valverde. 2001. Evaluación ecológica rápida de la vegetación en los bosques secos de “La Ceiba” y “Cordillera Arañitas”, provincia de Loja, Ecuador. Pp. 15-35. En Vásquez M. A.; M. Larrea; L. Suárez éz P. Ojeda (eds.). Biodiversidad en los Bosques Secos del Sur-Occidente de la Provincia de Loja. EcoCiencia, Ministerio del Ambiente, Herbario LOJA y Proyecto Bosque Seco, Quito. Ecuador. Aguirre, Z. € N. Aguirre. 1999. Guía práctica para realizar estudios de comunidades vegetales. Herbario Loja + 5. Departamento de Botánica y Ecología de la Universidad Nacional de Loja. Loja - Ecuador, 30 p. 2005. estado de Aguirre, Z. € L. P. Kvist. Composición florística y conservación de los bosques secos del sur- occidente del Ecuador. Lyonia 8 (2): 41-67. 2005. secos de Aguirre, Z. € T. Delgado. Vegetación de los bosques 21 (1): Enero - Junio 2014 | 173 Z. Aguirre e/a/: Composición florística, estrucutra y endemismo en una parcela de bosque seco en Zapotillo, Loja, Ecuador. Cerro Negro-Cazaderos, Occidente de la Provincia de Loja. En: Vásquez, M. A.,; J. F. Freile 8z L. Suárez. (Eds.). Biodiversidad en los bosques secos de la zona de Cerro Negro-Cazaderos, occidente de la Provincia de Loja: un reporte de las evaluaciones ecológicas y socioeconómicas rápidas. Pp. 9-24. EcoCiencia, MAE y Proyecto Bosque Seco. Quito, Ecuador. Cerón, M. C. 1993. Manual de botánica ecuatoriana, sistemática y métodos de estudio. Ediciones Abya-Ayala. Quito, Ecuador. 315 p. Cañadas, L. 1983. El Mapa Bioclimático y Ecológico del Ecuador. MAG-PRONAREG. Quito - Ecuador. Editores asociados. 210 p. R. 2000. Estudio de la composición florística y Contento, regeneración natural forestal del bosque seco en la “Ceiba Grande”, cantón Zapotillo. Tesis Ing. For. Loja, Ecuador. Universidad Nacional de Loja Área Agropecuaria y de Recursos Naturales Renovables. p 72. Gentry, A. H. 1995. Diversity and floristic composition of neotropical dry forests. In: S. H. Bullock; H. A. Mooney éz E. Medina. (eds) Seasonally dry tropical forests. Cambridge University Press, Cambridge. Granda, V. € S. Guamán. 2006. Composición florística, estructura, endemismo y etnobotánica de los bosques secos “Algodonal” y “La Ceiba” en los cantones Macará y Zapotillo de la provincia de Loja. Tesis Ing. Forestal. Universidad Nacional de Loja. Área Agropecuaria y de Recursos Naturales Renovables. Loja- Ecuador. 224 p. Gunter, S.; M. Weber; B. Stimn € R. Mosandl. 2011. Silviculture tropics. Center of live and food Sciencies in the Weihenstephan. Tecnische Universitat 174 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 Munchen. Munich, Germany. ISSN. 1614- 9785. 547 p. HERBARIO LOJA, UNISIG, CINFA. 2001, Zonificación y determinación de los tipos de Bosques seco en el suroccidente de la provincia de Loja. Informe Final. Herbario Loja-Proyecto Bosque Seco, Universidad Nacional de Loja, Ecuador 144 pp. Janzen, D. H. 1988. Tropical dry forests. The most endangered major tropical ecosystem. Pp. 130-137 En: E. O. Wilson (ed.), Biodiversity. National Press, Washington D.C. Academy Lamprecht, H. 1990. Silvicultura en los trópicos. Trad. Antonio Carrillo. República Federal Alemana. (GT'Z) GmbH. 335 p. Lozano, P. 2002. Los tipos de bosque en el sur de Ecuador. Pp 29-49 En: Aguirre, Z; J. E. Madsen, E. Cotton éz H. Balslev (eds). AbyaYala, Botánica Autroecuatoriana. Quito. Madsen, J. E.; R. Mix «€ H. Balslev. 2001. Flora of Puna Island. Plant resources on a Noetropicalislan. Aarhus University Press, Aarhus. 289 p. Moreno, C. E. 2001. Métodos para medir la biodiversidad. M € T-Manuales y Tesis SEA, vol.I. Zaragosa, España. 84 p. Murphy, P. éÍ A. E. Lugo. 1995. Dry forests of Central America and the Caribbean. En: Bullock, S. H.; H. A. Mooney $ E. Medina. (Eds.), Seasonally Dry Tropical Forests. Pp. 9-34. Cambridge University Press, Cambridge. Naturaleza y Cultura Internacional. 2009. Reserva Natural “La Ceiba”. Loja, Ecuador. Disponible en wwwdarwinnet. org/1_4.htm. Consultado 22 de febrero 2013. Neill, D. 2000. Observations on the conservation status of Tropical Dry Forest in Z. Aguirre e/a/: Composición florística, estrucutra y endemisn the Zapotillo Area, Loja.www.mobot.org/ MOBOT/research/Ecuador/Zapotillo. Pennington, R. T.; D. E. Prado éz C. A. Pendry. 2000. Neotropical seasonally dry forests and quaternary vegetation changes. Journal of Biogeography 27: 261-273. (Ed.): 1999. Preliminar de un Sistema de Clasificación Sierra, R. Propuesta de Vegetación para El Ecuador Continental. n Zapotillo, Loja, Ecuador. Proyecto INFAN/GRF-BIRF y EcoCiencia, Quito. 194 pp. Stattersfield, A.]J.;J.J. Crosby; A.J. Long éz D. C. Wege. 1998. Bird Life International, Conservation Series N” 7, Cambridge. Valle, C. 2011. Técnicas de Investigación en Ecología. Material de enseñanza. Colegio de Ciencias Ambientales. Universidad San Francisco de Quito. Quito, Ecuador. ANEXO Anexo 1. Especies de plantas vasculares inventariadas en la parcela permanente “La Ceiba”, Zapotillo, Ecuador. Convolvulaceae Ipomoea pauciflora M. Martens €: Galeotti amas B “Borrachero” Erythroxylaceae Erythroxylum glaucum O. E. Schulz “Negro” A Euphorbiaceae Croton sp. “Moshquera” Phyllanthus sp. “Palo Colorado” Fabaceae Erythrina velutina Willd. “Porotillo” A Galactia sp. “Albaca” H Geoffroea spinosa Jaca. “Almendro” A Machaeriu mmillei Standl. “Chicho Chicho” A Piscidia carthagenensis Jacq. “Barbasco” A Flacourtiaceae Prockia crucis P. Browne ex L. “Manzano” B Hippocrateaceae Salacia sp. “Diente” A Malvaceae Gaya sp. “Palo Negro” H Mimosaceae Albizia multiflora (Kunth.) Barneby €: J. W. Grimes “Angolo” A Chloroleucon mangense (Jacq.) Britton €. Rose “Charán Blanco” B Leucaena trichodes (Jacq.) Benth. “Chapra” B Pithecellobium excelsum (Kunth) Mart. “Chaquiro” B Nyctaginaceae Boerhavia sp. “Buenas Tardes” H Pisonia aculeata L. “Pego Pego” B Orchidaceae 21 (1): Enero - Junio 2014 | 175 Z. Aguirre e/a/: Composición florística, estrucutra y endemismo en una parcela de bosque seco en Zapotillo, Loja, Ecuador. Zelenkoao nusta (Lindl.) M.W. Chase €: N.H. Williams | “Orquídea” E Poaceae Panicum trichoides Sw. “Cachorrillo” H Polygonaceae Coccoloba ruiziana Lindau “Añalque” B Coccoloba sp. “Colorado” B Portulacaceae Talinum paniculatum (Jacq.) Gaertn. “Amapola” H Pteridaceae Adiantum raddianum C. Presl “Flor de Madre” H Rhamnaceae Ziziphus thyrsiflora Benth. “Ebano” A Rubiaceae Randia aculeata L. “Jazmín” B Randia sp. No Identificada 1! B Simira ecuadorensis (Standl.) Steyerm. “Guápala” B Sapindaceae Allophylus sp. B Solanaceae Lycianthes sp. “Palo Negro” B Verbenaceae Citharexylum quitense Spreng. “Café de Montaña” B * Forma de vida: Árbol (A), Arbusto (B), Hierba (H), Epífita (E). Anexo 2. Densidad (D), Área basal (G) y volumen (V) de los individuos > a 5 cm. de D1,30 de las especies registradas en la parcela permanente “La Ceiba”. D G V Familia Nombre Científico Nombre Común | (Ind./ha | (m?/h | (m*/h ) a) a) Ceiba trichistandra (A. Gray) |, ., Bombacaceae Ceibo 6 8,55 | 76,57 Bakh. . ] Tabebuia chrysantha G. “Guayacán Oreja de Bignoniaceae A NES 164 4,49 | 22,61 Nicholson León Terminalia valverdeae A. H. Combretaceae “Guarapo” 56 2,97 | 19,03 Gentry Boraginaceae Cordia macrantha Chodat “Laurel Negro” 167 1,80 | 8,47 Fabaceae Piscidia carthagenensis Jaca. “Barbasco” 54 1,20 | 7,09 Fabaceae Geoffroea spinosa Jacq. “Almendro” 11 1,09 | 6,34 . Cochlospermum vitifolium Bixaceae . “Polo Polo” 20 0,91 | 5,61 (Willd.) Spreng. Ñ Simira ecuadorensis (Standl.) |, , , Rubiaceae Guápala 379 1,69 | 5,09 Steyerm. 176 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 Z. Aguirre e/a/: Composición florística, estrucutra y n Zapotillo, Loja, Ecuador. Eriotheca ruizii (K. Schum.) A. Bombacaceae “Pasallo” 6 0,69 | 4,39 Robyns Fabaceae Erythrina velutina Willd. “Porotillo” 7 0,53 | 3,22 Bursera graveolens (Kunth) Burseraceae . “Palo Santo” 11 0,39 | 1,75 Triana €: Planch. Hippocrateaceae |Salacia sp. “Diente” 2 0,25 | 1,55 Erythroxylum glaucum O. E. y A Erythroxylaceae Negro 33 0,44 | 1,43 Schulz Flacourtiaceae Prockia crucis P. Browne exL. | “Manzano” 54 0,42 | 1,27 Caesalpiniaceae Caesalpinia glabrata Kunth “Charán verde” 5 0.27 | 1,16 Nyctaginaceae Pisonia aculeata L. “Pego Pego” 10 0,27 | 1,07 lpomoea pauciflora M. “Samba Samba” / Convolvulaceae , 2 0,21 | 0,79 Martens €: Galeotti “Borrachero” Verbenaceae Citharexylum quitense Spreng. | “Café de Montaña” 51 0.26 | 0,64 ] Albizia multiflora (Kunth.) a a Mimosaceae . Angolo 2 0,08 | 0,56 Barneby €. J.W. Grimes Fabaceae Machaerium millej Standl. “Chicho Chicho” 3 0,06 | 0,28 Polygonaceae Coccoloba sp. “Colorado” 2 0,06 | 0,20 Rhamnaceae Ziziphus thyrsiflora Benth. “Ebano” 1 0,04 | 0,13 Ñ Chloroleucon mangense (Jacq.) | , , a Mimosaceae . Charán blanco 2 0,02 | 0,06 Britton €. Rose Cavanillesia platanifolia . Bombacaceae “Pretino” 2 0,02 | 0,05 (Bonpl.) Kunth Sapindaceae Allophylus sp. No Identificada | 3 0,01 | 0,03 Caesalpiniaceae Senna mollissima (Humb. €: “Vainillo” 2 0,01 | 0,03 Bonpl. ex Willd.) H. S. Irwin €: Barneby Rubiaceae Randia sp. No Identificada ll 1 0,01 | 0,02 . Leucaena trichodes (Jacq.) y > Mimosaceae Chapra 1 0,003 | 0,01 Benth. Totales 1057 |26,73 | 169,4 21 (1): Enero - Junio 2014 | 177 Z. Aguirre e/a/: Composición florística, estrucutra y endemismo en una parcela de bosque seco en Zapotillo, Loja, Ecuador. 178 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 Arnaldoa 21 (1): 179 - 186, 2014 ISSN: 1815-8242 Variaciones espaciales y temporales de organismos autótrofos en el embalse La Quebrada (Córdoba, Argentina) Spatial and temporal variations of autotrophic organisms in the reservoir La Quebrada (Cordoba, Argentina) Inés Claudia Daga € Marcelo Javier Pierotto Área de Proyectos Especiales. Laboratorio de Hidrobiología. Facultad de Ciencias Exactas Físicas y Naturales. Universidad Nacional de Córdoba. Av. Vélez Sarsfield 299, CP 5000, Córdoba, Argentina. inesclaudiadagacogmail.com; marpiero2002yahoo.com 21 (1): Enero - Junio 2014 | 179 Daga á Pierotto: Variaci paciales y temp La Quebrada (Córdoba, Argentina) Resumen El presente trabajo se realizó en el embalse La Quebrada desde el verano de 2001 hasta el verano de 2012. Dicho embalse está situado en el faldeo oriental de las Sierras Chicas, 32 km al noroeste de la ciudad de Córdoba. Posee un volumen de almacenamiento de agua de 4 hn?* y es utilizado principalmente como reservorio de agua potable de poblaciones aledañas. Los estudios en la zona comenzaron luego de observarse una discoloración en sus aguas, donde la especie responsable fue Ceratium hirundinella (Dinophyceae) principal componente del fitoplancton hasta el año 2006. Durante los veranos de 2007 y 2008 Dolichospermun circinalis (Cyanobacteria) fue dominante en el embalse y al vera. te la especie más abundante fue Planktosphaeria gelatinosa (Chlorophyta) reemplazada en los veranos de 2010 y 2011 por Microcystis aeruginosa, M. wesenbergii y M. flos- aquaes (Cyanobacteria). En el último año de muestreo, el 25% de la superficie del embalse estaba cubierto con Lemna minor (Macrophyta). La Quebrada es uno de los espejos de agua más jóvenes de nuestra Provincia ya que inició su funcionamiento en el año 1975, sin embargo, el mismo tiene tendencia a eutrofizarse durante el verano con la consecuencia de la producción de florecimientos de fitoplancton en especial cianobacterias y macrófitas acuáticas. Palabras clave: floraciones algales, fitoplancton, cianobacterias Abstract This work was performed at The La Quebrada Reservoir from summer 2001 to summer 2012. This reservoir is located in the eastern foothills of the Sierras Chicas, 32 km northwest of the city of Córdoba. It has a volume storage of 4 hm3 of water and is mainly used as a potable water reservoir by nearby populations. Studies in the area started after observing a discoloration of their water, where the species responsible was the Ceratium hirundinella (Dinophyceae) main component of phytoplankton until 2006. During the summers of 2007 and 2008 Dolichospermun circinalis (Cyanobacteria) was dominant in the reservoir. The following summer the most abundant species was Planktosphaeria gelatinosa (Chlorophyta) which was replaced by the Microcystis aeruginosa, M. wesenbergii and M. flos-aquae (Cyanobacteria) during the summers of 2010 and 2011. During the last sampling year, 25% of the reservoir surface was covered by Lemna minor (Macrophyta). La Quebrada is one of the youngest water mirrors of our Province since its beginning in 1975, however it tends to eutrophicate during the summer with the result of the production of phytoplankton blooms especially cyanobacteria and aquatic macrophytes. Key words: bloom, phytoplankton, Cyanobacteria El embalse La Quebrada está localizado a 32 km al noroeste de la ciudad de Córdoba, abastece de agua potable a 50.000 habitantes. Introducción La Provincia de Córdoba está ubicada en el centro del territorio argentino, pertenece a una región semiárida y para un mayor aprovechamiento de los recursos hídricos se han llevado a cabo numerosas obras hidráulicas. La Provincia posee alrededor de veinte embalses de los cuales hoy en día algunas de ellos sufren un deterioro constante en la calidad de sus aguas interfiriendo así con los usos para los cuales fueron creados (Reyna et al., 2006). 180 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 La cuenca sufre un contínuo deterioro de sus condiciones naturales debido al sobrepastoreo, los incendios, la tala indiscriminada y el movimiento no regulado de turistas, que deriva, entre otras consecuencias, en la existencia de severos procesos de erosión de origen hídrico, potenciado por la geomorfología y el régimen climático de la zona. Gran Daga á Pierotto: Variaciones espaciales y temporales d autótrofos en La Quebrada (Córdoba, Argentina) parte de los sedimentos provenientes de la erosión van a parar al embalse, provocando una disminución de su capacidad de almacenamiento. Los sedimentos también aportan nutrientes, los cuales aceleran los procesos de eutrofización, fenómeno frecuente en embalses de la Provincia de Córdoba. El embalse La Quebrada, es uno de los espejos de agua más jóvenes de nuestra Provincia y, el corto período de tiempo transcurrido entre su creación y la presencia de floraciones, demuestra la fragilidad del mismo. El primer episodio donde se registró una floración masiva de cianobacterias fue en el otoño de 1987 a tan solo diez años de su formación (Cioccale et al., 1988). El objetivo del presente trabajo fue analizar la variabilidad estacional y temporal de los organismos autótrofos que se desarrollan en el embalse La Quebrada a lo largo de once años de muestreo. Material y métodos Los muestreos se realizaron con una frecuencia mensual, desde enero del año 2001 hasta diciembre del año 2006 y con una frecuencia estacional de enero de 2007 a noviembre de 2012. Las muestras han sido tomadas en una estación de muestreo próxima al paredón del embalse con un muestreador de profundidad tipo Van Dorn horizontal de capacidad de 2 litros de volumen de almacenado. Se tomó una muestra subsuperficial (0.30 m), una muestra en la parte media de la zona fótica y una muestra por debajo de la zona fótica. Se registraron in situ: temperatura, pH, conductividad y oxígeno disuelto a través de sensores portátiles. Las muestras fueron llevadas frescas al laboratorio para su posterior observación microscópica. Luego fueron fijadas con solución de Lugol (0,5 %) y depositadas en el herbario del Laboratorio de Hidrobiología de la Facultad de Ciencias NTA¿4 1 Exactas Físicas y dela Universidad Nacional de Córdoba, con la sigla LH (UNC) y su numeración correspondiente. Para el análisis cuantitativo se siguió el método de transectas según Villafañe é Reid (1995 modificado por Lujan et al. (2005). Los datos fueron transformados logarítmicamente (logaritmo decimal) y se refirieron a individuos por mililitro (ind.ml). Desde octubre de 2009 a junio de 2010 se recolectaron muestras para análisis de nitrógeno total, fósforo total y cálculo de biomasa fitoplanctónica, que fue determinada midiendo la concentración de clorofila a por el método espectrofotométrico (APHA, 1995). El estado trófico del embalse fue caracterizado por las concentraciones de fósforo total y clorofila a (Carlson, 1977). Los datos de cota del embalse fueron suministrados por la Cooperativa de Aguas y Servicios de la Localidad de Río Ceballos, Provincia de Córdoba. Área de estudio El embalse La Quebrada, se localiza en el centro-oeste de la Provincia de Córdoba (31? 14” S; 64? 20” O) en el faldeo oriental de las sierras chicas a 750 metros sobre el mar. Posee una profundidad máxima de 34 metros y se alimenta de los arroyos Los Hornillos y Colanchanga (Fig. 1). La construcción del dique data del año 1976 y forma parte de La Reserva Hídrica Parque Natural La Quebrada creada en 1987. 21 (1): Enero - Junio 2014 | 181 Daga á Pierotto: Variaci paciales y t les d La Quebrada (Córdoba, Argentina) . 319 le Cuenca h hidro ral Í a ¡ : A. Los Hornillos La E trar La ES “sa Que ebra Sl a 4 AL A 4 pa 1 po E fá a e A dd f e 1Km a e > id ey a ? ' ña : Pcia. Córdoba Embalse ñ La Quebrada 64 Fig. 1. Localización del embalse La Quebrada en la Reserva Hídrica Parque Natural La Quebrada Resultados El nivel de la cota del embalse La Quebrada, presentó variaciones durante los años de estudio de 33 metros registrados en el año 2001 llegó a 23 en los muestreos de 2012 (Fig. como monomíctico con un período de 2). El embalse está clasificado estratificación que se extiende generalmente desde mediados de primavera hasta comienzos de otoño. La temperatura del agua durante el invierno tuvo una media de 14”C para los años 2002 y 2004 y de 12”C para los restantes. La media de verano fue de 24” C. A partir de los 3 metros de profundidad se observó una discontinuidad térmica con variaciones de 5” C en primavera y 10” C en verano entre la superficie y el fondo. Las lecturas del disco de Secchi oscilaron Cota (metros) 5 2001 2002 2003 2004 2005 2006 2007 2008 2009 2010 2011 2012 s de muestreo Fig. 2. Variaciones de la cota del embalse La Quebrada e el año 2001 al 2012 182 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 entre 0,7 m en verano y 2,4 m en invierno. La conductividad del agua presentó valores promedios de 287,1 pS.cm*. El pH, generalmente alcalino con mediciones que fueron de 7,5 a 9,5 los registros más elevados corresponde a la zona superficial probablemente por una mayor actividad fotosintética. El oxígeno disuelto fue decreciente hacia el fondo, con un valor medio de 8,5 en la superficie, 7 a los 6 metros y 4,5 a los 20 metros. A partir del análisis cuantitativo y cualitativo de las muestras de fitoplancton se han identificado las principales especies que causan florecimientos y cómo se fueron modificando a lo largo de estos doce años de estudio. En los primeros meses de estudio la especie dominante fue Ceratium hirundinella, con densidades de hasta 27.000 ind. ml 1, que comenzaron a disminuir en otoño hasta desaparecer en invierno y reaparecer nuevamente cuando el embalse comenzó a estratificarse hacia mediados de primavera (Fig. 3). Durante el año 2002 C. hirundinella estuvo presente todo el año con una media anual de 10.000 ind. ml*. En los muestreos Daga á Pierotto: Variaciones espaciales y temporales d autótrofos en La Quebrada (Córdoba, Argentina) 5 « ú $] E E Y 2] H $ > > $ $ $ Años de muestreo Fig. 3. Abundancia de C. hirundinella durante el periodo 2001 al 2006 del año 2003 se encontraron células de C. hirundinella sólo en el mes de enero, y fueron notorios los quistes a partir del mes de febrero persistiendo todo el año con valores que oscilarron entre 25 y 40 quistes. ml”. En este año el embalse alcanzó su cota máxima de 34 m. En los muestreos correspondientes al año 2004, C. hirundinella presentó una media anual de 11.000 cel. ml”. A lo largo de los años 2005 y 2006, se registraron individuos en época estival con una abundancia promedio de 8.500 ind. ml” y 7.500 respectivamente. Las formas de resistencia, a excepción de lo ocurrido en el año 2003, estuvieron presentes hacia finales de verano. El tamaño de los individuos osciló entre 170-245 um de largo por 48-56 um de ancho y se identificaron formas con tres cuernos antiapicales, con un ángulo de separación mayor entre los cuernos en los organismos que generalmente predominaron en el verano y otras con el tercer cuerno antiapical poco desarrollado o ausente más frecuente en el invierno En cuanto a la distribución vertical, se observó en todos los muestreos, un leve aumento del número de organismos entre los tres y seis metros, desapareciendo prácticamente a partir de los quince metros, profundidad donde los quistes fueron frecuentes. A partir del verano de 2007 hasta el verano de 2011, se sucedieron en el embalse floraciones de cianobacterias y clorofitas. Durante los veranos de 2007 y 2008 la especie dominante fue Dolichospermun circinalis, reemplazada en el verano siguiente por la clorofita Planktosphaeria gelatinosa con una densidad media de 2.5000 ind. ml* Durante los veranos de 2010 y 2011 Microcystis aeruginosa, M. flos- aquae y M. wesenbergíl fueron dominantes. Desde octubre de 2009 a junio de 2010 se analizó la biomasa fitoplantónica, medida como la concentración de clorofila a. La concentración media de clorofila a fue de 17,17 mg m”, media de nitrógeno fue de 0,8 mg L* y el fósforo (P) de 4,09 mg L”* En los muestreos invernales las diatomeas forman el fitoplancton más Aulacoseira abundante predominando granulata y Cyclotella meneghiniana. A lo largo del período muestreado se destaca la primavera de 2012 donde el fitoplancton fue escaso y el 25 % del embalse estaba cubierto por la macrófita Lemna minor. Discusión y conclusiones El estudio de los organismos autótrofos del embalse La Quebrada determinó la presencia de Ceratium hirundinella como la especie dominante y responsable de floraciones en los primeros seis años de muestreo. 21 (1): Enero - Junio 2014 | 183 Daga á Pierotto: Variaci paciales y t les d En la identificada por primera vez en lagos del sur en el año 1991 (Boltovskoy, 1991) y ha tenido un comportamiento invasor hacia los cuerpos de agua ubicados al norte del territorio Argentino (Boltovskoy, 2004). En República Argentina, fue la Provincia de Córdoba está presente en la mayoría de los embalses y su máxima densidad a sido observada generalmente en el verano (Pierotto et al., 2007; Girbal et al., 2000) a diferencia de la Reserva Bermejales del sur de España (Pérez € Sánchez, 2002) y en los embalses Sumampa y Pirquitas de Catamarca (Silverio et al., 2009) donde las máximas densidades de C. hirundinella ocurren de otoño a invierno en el período de mezcla. Otro estudio realizado en el embalse de Río Tercero en la Provincia de Córdoba (Mac Donagh et al., 2005) concluyeron, que esta especie permanece durante todas las estaciones y las máximas densidades se registraron en verano. Las temperaturas óptimas, para el crecimiento de C. hirundinella para lagos templados, oscilan entre los 12” C y los 23* C (Hutchinson, 1967; Heaney, 1976; 1980). Estos valores son válidos para nuestro embalse y pensamos que la permanencia de C. hirundinella a lo largo de todo el año 2002 y la mayor parte del 2004 este dada por un aumento de 2” C en la media invernal con respecto a otros años. Las formas de resistencia o quistes, fueron evidentes hacia el final del verano, ya que aparecen generalmente cuando la población de individuos adultos decae por la disminución de intensidad luminosa, de la duración del fotoperíodo y de la temperatura (Girbal et al., 2000; Cossavella et al., 2000), a excepción del año 2003 donde fueron observados durante el verano. A comienzos del año 2003, el embalse alcanzó su cota máxima y, el ingreso de agua desde los tributarios podría haber producido el 184 | 21 (1): Enero - Junio, 2014 La Quebrada (Córdoba, Argentina) arrastre de quistes hacia la zona fótica. La ciclomorfosis es un fenómeno frecuente en Ceratium y numerosos estudios indican que estos cambios de forma están asociados con las variaciones de la temperatura (Huber-Pestalozzi, 1950) o a la disponibilidad de nutrientes (Kimmel éz Holt, 1988). En los embalses de Cuber y Gorg Blau, en Mallorca (Moyá é Ramón, 1984) observaron que en las muestras de verano las especies tenían un mayor desarrollo de los tres cuernos posteriores y aumento del ángulo de separación entre los mismos. Las muestras de finales de verano presentaban una reducción de la longitud de los cuernos, llegando el tercero de la hipoteca a ser sólo incipiente. Cambios coincidentes con nuestro trabajo. A partir del verano de 2007 hasta el 2011, con excepción del verano de 2009, C. hirundinella fue reemplazado por floraciones de aumento de materia orgánica proveniente cianobacterias, favorecidas por el de los incendios forestales ocurridos en la cuenca. La materia orgánica no solo acelera la colmatación del vaso del dique por el ingreso de un mayor volumen de sedimentos, sino también, aporta nutrientes como el fósforo y el nitrógeno considerados como factores condicionantes para el desarrollo de floraciones de cianobacterias (Huisman et al., 1999; Chen et al., 2003). La concentración de fósforo total y de clorofila a empleados para determinar el nivel trófico del embalse, nos indica que este reservorio presenta un deterioro de la calidad de las aguas. Trabajos anteriores caracterizaron al embalse como oligotrófico en invierno y mesotrófico en verano (Pierotto et al., 2003; Rincón et al., 2007) y la tendencia de pasar a un estado eutrófico ha sido acompañada por la aparición de cianobacterias. Estos resultados concuerdan Daga á Pierotto: Variaciones espaciales y temporales d autótrofos en La Quebrada (Córdoba, Argentina) con la mayoria de los estudios realizados en los embalses ubicados en la zona centro- norte de Argentina (Quiroz, 1988; Pedrozo $ Bonetto, 1991) En la primavera de 2012, la planta flotante libre Lemna minor pasó a ser el componente principal del embalse, es de rápido crecimiento y crece en aguas estancadas con altos niveles de nitrógeno y fósforo (Rook, 2002). La invasión de plantas acuáticas puede generar impactos negativos sobre la diversidad, la calidad del agua y la dinámica trófica de los ecosistemas donde se establecen (de Tezano Pinto et al., 2007). El régimen hídrico es un factor que resulta de gran importancia en las variaciones de los factores ambientales del medio en los cuerpos de agua y, por lo tanto, propicia las variaciones estructurales de la comunidad fitoplanctónica (García de Emiliani, 1979). Desde el año 2009 la zona de estudio se vió afectada por una fuerte sequía, incrementándose los incendios en la cuenca, como consecuencia, el caudal de los tributarios fue escaso y con un contenidos altos de materia orgánica favoreciendo la eutrofización. Agradecimientos Los autores agradecen a Graciela Daniele y a Florencia Soteras por la lectura crítica del trabajo y a la Cooperativa de Aguas y Servicios de la Localidad de Río Ceballos por el suministro de los datos referidos a la cota del embalse. Literatura citada APHA. 1992. Métodos Normalizados para el análisis de aguas potables y residuales, 17 ed. Díaz de Santos, Madrid. Boltovskoy, A. 1991. Colonization of freshwater bodies in Argentina and Chile by Ceratium hirundinella (Di- nophyceae). Bol. Soc. Argent. Bot. 38: 148. Boltovskoy, A. 2004. Ceratium hirundinella Schrank: un dinoflagelado invasor en lagos y embalses. Simpo- sio. XXX Jornadas Argentinas de Botánica. Rosa- rio, . 183-202. Carlson, R. E. 1977. Atrophic state index for lakes. Lim- nol. Oceanog 22: 361-369. Cioccalle, M.; M. Ferri; J. Filardo; R. Ingaramo; G. Lado; N. Montivero €: R. Morero. 1988. Estudio integral de la problemática del agua en la cuenca del Río Ceballos. Córdoba. Argentina. Inédito. Chen, Y.; B. Qin; K. Teubner € M. T. Dokulil. 2003. Long-term dynamics of phytoplankton assembla- ges: Microcystis-domination in Lake Taihu, a lar- ge shallow lake in China. Journal of Plankton Re- search, 25: 445-453. Cossavella, A.; M. Rodríguez; C. Oroná; S. Del Olmo; N. Larrosa € A. Rodríguez. 2000. Monitoreo de calidad de agua y sedimentos del embalse Los Mo- linos |, Córdoba, Argentina. |Il Taller Internacional sobre enfoques regionales para el desarrollo y la gestión de embalses de la cuenca del Río de la Pla- ta. Posadas. Misiones. de Tezanos Pinto, P; L. Allende € 1. O “Farrell. 2007. Influence of free-floating plants on teh structure of a natural phytoplankton assemblage: an experimental approach. Journal of Plankton Research. 29: 47- 56. García de Emiliani, M. O. 1979. Effects on water level fluctuations on phytoplankton in a river-foodplain lake system (Paraná River, Argentina). Hydrobilogia 57: